汪 濤,周新群,孫君社,2,張志民,2,王民敬,2,胡雪芳,2,裴海生,2,*
(1.農業(yè)農村部規(guī)劃設計研究院 農產品加工工程研究所, 北京 100121;2.農業(yè)農村部農產品產后處理重點實驗室, 北京 100121;3.貴州大學 釀酒與食品工程學院, 貴州 貴陽 550025)
黃精(Polygonatumsibiricum,PS)是我國首批進入藥食同源目錄的中藥品種,富含多糖、黃酮、多酚、蒽醌、甾體皂苷、生物堿和人體所需的多種氨基酸等重要的活性成分[1]。黃精多糖(Polygonatumsibiricumpolysaccharides,PSPs)是黃精的主要活性成分之一,具有抗氧化[2]、抗衰老[3]、抗疲勞[4]、增強免疫[5]、治療糖尿病[6]和預防老年癡呆[7]等作用。Long等[8]用生理鹽水和PSPs溶液分別處理荷瘤小鼠,發(fā)現PSPs通過激活TLR4受體來阻礙肺癌MAPK/NF-kB信號通路,發(fā)揮免疫增強作用,表明PSPs未來有可能用于預防肺癌的發(fā)生。
目前,PSPs提取技術主要集中在熱水浸提、堿提、酶解、微波和超聲波輔助提取等,但美中不足的是這些技術存在能耗大、效率低、價格昂貴和污染環(huán)境等諸多問題,最關鍵的是它們很難應用于大批量的工業(yè)化生產[9-10]。為了解決這些問題,需要開發(fā)一種新型的提取方法。低共熔溶劑(deep eutectic solvents,DESs)是由氫受體與氫供體按合適比例混合加熱形成的液態(tài)混合溶劑,其凝固點比任何一種配位劑都要低,具有不易揮發(fā)、價格低、毒性小、綠色環(huán)保、容易制備、不需要純化等優(yōu)勢,更重要的是它可以適用于工業(yè)化生產[11-14]。目前,DESs的應用主要集中在化工方面,在藥食方面相對較少。Tang等[15]應用DESs提取白柏中黃酮類化合物,與熱水浸提法相比較,黃酮類化合物槲皮素、楊梅素和穗花杉雙黃酮提取率分別增加了128.7%、111.7%和111.1%。Chanioti等[16]選取DESs中氯化膽堿- 檸檬酸(DES-CA)和膽堿氯化物- 乳酸(DES-LA)分別提取橄欖渣中酚類化合物,發(fā)現DES-CA提取的總酚含量和抗氧化活性均高于均質化、微波、超聲波和高靜水壓力輔助等提取方法。DESs除了提取黃酮、酚類物質的應用外,已有提取多糖方面的相關報道,如Saravan等[17]利用DESs結合亞臨界水提取褐藻多糖,結果表明在150 ℃、1.99 kPa,含水量70%及液料比36.81 mL/g條件下,褐藻多糖的提取率為14.93%。DESs之所以能夠增加植物活性物質溶出,可能與其自身的理化性質有關,DESs黏度低且呈弱酸性;黏度低的溶液有很好的滲透能力,再者弱酸性溶液有輔助分解植物細胞壁木質素及纖維素的作用[18]。但到目前為止,未見其應用于提取PSPs的報道。因此,本研究利用DESs提取PSPs,通過響應面分析優(yōu)化提取工藝,并通過總抗氧化能力試劑盒法、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)法和鄰苯三酚自氧化法對其抗氧化活性進行研究,以期為PSPs工業(yè)化提取和功能性研究提供理論指導。
黃精(Polygonatumsibiricum),遼寧澳地森生物工程有限公司。
氯化膽堿,上海國藥控股化學試劑有限公司;乙二醇、檸檬酸、丙三醇、尿素、草酸、濃硫酸、苯酚、鄰苯三酚、1,1-二苯基-2-苦肼基(DPPH)自由基、抗壞血酸,國藥集團化學試劑有限公司;總抗氧化能力測定試劑盒,南京建成生物工程研究所。所有試劑均為國產分析純。
UV- 1780型紫外可見分光光度計,島津儀器(蘇州)有限公司;GM- 0.5型隔膜真空泵,天津市津騰實驗設備有限公司;HWS- 26型電熱恒溫水浴鍋,蘇州江東精密儀器有限公司;RE- 52B型旋轉蒸發(fā)儀,上海上自儀轉速表儀表電機有限公司;AR223CN型電子天平,奧豪斯(常州)儀器有限公司;H1850型臺式離心機,北京普析通用儀器有限責任公司。
1.3.1PSPs提取方法與測定
熱水浸提法[19]:稱取0.2 g黃精粉(80目),在溫度80 ℃、液料比1.5 mL/g的條件下提取120 min,重復提取2次得到黃精多糖。
DESs提取法:稱取0.2 g黃精粉(80目)與DESs混勻,水浴提取。待提取結束后,加5.0 mL蒸餾水終止反應。真空抽濾,收集濾液,蒸發(fā)濃縮,加入無水乙醇至最終含量為80%,靜置醇沉2 h,7 000 r/min離心8 min得到粗多糖。
提取實驗均重復3次,采用苯酚- 硫酸法[23]測定PSPs含量。葡萄糖標準曲線:y=0.008 2x+0.028 3,R2=0.999 1。按式(1)計算PSPs提取率:
(1)
式(1)中,ρ,PSPs水溶液質量濃度,μg/mL;V,PSPs水溶液體積,mL;d,稀釋倍數;M1,樣品干質量,g。
1.3.2DESs配位劑對PSPs提取率的影響
將乙二醇- 氯化膽堿(DES-EC)、檸檬酸- 氯化膽堿(DES-GC)、丙三醇- 氯化膽堿(DES-CC)、尿素- 氯化膽堿(DES-UC)、草酸- 氯化膽堿(DES-OC)分別按氫受體與氫供體物質的量比2.0混勻,在100 ℃水浴至溶解。在溫度80 ℃、液料比20 mL/g、時間30 min條件下,按1.3.1實驗步驟分別提取PSPs并計算提取率。
1.3.3單因素實驗設計
在DESs配位劑篩選結果的基礎上,分別選取DESs配位劑物質的量比(1.0、1.5、2.0、2.5、3.0)、溫度(70、80、90、100、110 ℃)、時間(15、30、45、60、75 min)和液料比(10、20、30、40、50 mL/g)進行單因素實驗,考察各因素對PSPs提取效果的影響,按1.3.1節(jié)實驗步驟分別提取PSPs并計算提取率。
1.3.4響應面優(yōu)化試驗
在單因素實驗的基礎上,確定最適溫度,并利用響應面分析法對其余3個因素進一步優(yōu)化。根據Box-Behnken試驗設計原理,選取尿素- 氯化膽堿物質的量比(A)、時間(B)及液料比(C)3個因素為自變量,以PSPs提取率為響應值,進行三因素三水平的響應面分析,優(yōu)化PSPs的提取工藝,試驗因素與水平設計見表1。
表1 響應面試驗因素與水平Tab.1 Factors and levels of Box-Behnken design
1.3.5DESs重復利用實驗
按照1.3.1節(jié)DESs提取PSPs方法,將醇沉離心得到的上清液真空蒸發(fā)至體積不變以回收DESs,根據1.3.4得到的優(yōu)化工藝條件重復利用DESs提取PSPs,按式(1)、式(2)計算PSPs提取率和含量。
(2)
式(2)中,ρ,PSPs水溶液含量,μg/mL;V,PSPs水溶液體積,mL;d,稀釋倍數;M2,粗多糖干質量,g。
1.3.6PSPs抗氧化活性測定
(3)
式(3)中,A0,蒸餾水代替樣品的吸光度;Ax0,蒸餾水代替鄰苯三酚的吸光度;Ax,樣品的吸光度。
1.3.6.2 DPPH自由基清除率的測定
取2.0 mL不同質量濃度的PSPs與2.0 mL 0.2 mmol/LDPPH溶液混勻,暗反應30 min,蒸餾水調0,在波長517 nm處測定吸光度(Ax);同樣測定2.0 mL 0.2 mmol/L DPPH溶液與2.0 mL 體積分數70%乙醇溶液的吸光度(A0),以及2.0 mL不同質量濃度的PSPs與70%乙醇溶液的吸光度(Ax0)[21]。按式(4)計算DPPH自由基清除率。
(4)
1.3.6.3 總抗氧化能力測定
根據總抗氧化能力測定試劑盒操作步驟測定不同質量濃度的PSPs總抗氧化能力[22]。按式(5)計算PSPs的總抗氧化能力。
(5)
式(5)中,總抗氧化能力,μg/mL;V反,反應液體積,mL;V樣,取樣液體積,mL;d,稀釋倍數。
采用Design Expert 8.0.6、Origin 2017和SPSS 19對實驗數據進行處理。
DESs選擇不同的配位劑結合,可以得到具有特定理化性質的溶劑。根據配位劑的性質可以將DESs分為3種類型:I類由季銨鹽和MClx形成,該類與金屬鹵化物/咪唑鹽體系類似;Ⅱ類由水合金屬鹵化物與氯化膽堿形成;Ⅲ類由氫受體與氯化膽堿組成,氫受體通常是酰胺、羧酸或醇[11,23]。Ⅰ、Ⅱ類具有金屬離子性質,不適合在藥食方面的應用,這里主要考察Ⅲ類DESs,在此基礎上選擇乙二醇- 氯化膽(DES-EC)、檸檬酸- 氯化膽堿(DES-GC)、丙三醇- 氯化膽堿(DES-CC)、尿素- 氯化膽堿(DES-UC)、草酸- 氯化膽堿(DES-OC)作為提取PSPs的研究對象。這5種DESs按物質的量比2.0混合溶解,在溫度80 ℃、液料比20 mL/g條件下,提取PSPs 30 min,結果如圖1。DES-UC對PSPs提取效果最好,多糖提取率為15.11%。與熱水浸提得到的PSPs提取率(7.73%)進行比較,PSPs提取率由大到小依次為DES-UC、 DES-OC、 DES-CC、 DES-GC、DES-EC、熱水浸提。引起PSPs提取效果差異的原因一方面可能是DESs的理化性質,如黏度、極性和溶解度不同;另一方面可能是DESs與PSPs之間的鍵能和靜電作用[24]。根據實驗結果,選擇DES-UC作為后續(xù)的研究對象。
圖1 DESs配位劑對PSPs提取率的影響Fig.1 Effect of DESs complexing agent on extraction rate of PSPs
圖2 不同因素對PSPs提取率的影響Fig.2 Effect of different factors on extraction rate of PSPs
PSPs的單因素實驗結果見圖2。當尿素- 氯化膽堿物質的量比小于1.0時,液態(tài)DESs迅速凝固無法與黃精粉混合均勻,不利于PSPs的提取,所以選取物質的量比1.0、1.5、2.0、2.5、3.0為研究參數。由圖2(a)可知,PSPs提取率隨物質的量比的增加而減小,與DESs特定的理化性質,如酸堿度、溶解度和黏度等對黃精細胞壁的影響有關[17,25]。所以本實驗選取尿素- 氯化膽堿物質的量比1.0作為后續(xù)研究參數。
當溫度低于70 ℃時,DESs無法形成液態(tài)溶劑,所以選取溫度70、80、90、100、110 ℃為研究參數。由圖2(b)可知,PSPs提取率隨溫度的升高而降低,可能是溫度過高使PSPs發(fā)生了降解,而且溫度對DESs的黏度、導電率和酸堿度等性質也有影響。所以本實驗選取溫度70 ℃作為后續(xù)研究參數。
由圖2(c)可知在一定的時間范圍內,PSPs提取率隨時間的增加而增加;當達到一定時間后,反應體系達到平衡,PSPs提取率隨之降低,可能是提取時間過長使多糖分子發(fā)生了過度降解。PSPs提取率在60 min時達到最大值,所以本實驗選取時間60 min作為后續(xù)研究參數。
由圖2(d)可知,PSPs提取率隨液料比增加呈先增加后下降的趨勢,出現這種趨勢與DESs的作用程度、黏度有關。液料比過大時,物質間相互作用力太小,使多糖溶出率降低,且過多的溶劑體積會對后續(xù)的處理造成困難,增加了工藝的成本;液料比過小使黏度增大,多糖分子截留在DESs中,降低了PSPs提取率。液料比為20 mL/g時,PSPs提取反應體系達到平衡,提取率最大,所以本實驗選取液料比20 mL/g作為后續(xù)研究參數。
2.3.1響應面試驗設計與結果
在單因素實驗結果的基礎上,設計了三因素三水平的響應面試驗。17組試驗方案及結果見表2。
2.3.2模型建立與方差分析
表2 響應面試驗設計與結果Tab.2 Design and results of response surface experiment
表3 回歸方程的方差分析Tab.3 Analysis of variance for regression equation
2.3.3響應面分析
利用Design Expert 8.0.6軟件對表2中的數據進行二次多元回歸擬合,所得到的二次回歸方程的響應面如圖3。等高線圖可以直觀地反映自變量交互作用的顯著性,圓形表示兩者交互作用不顯著,而橢圓形則表示顯著。
由圖3可知,時間和物質的量比交互作用的等高線呈橢圓形,表明兩者交互作用對PSPs提取率有極顯著影響;從三維圖可以看出,隨物質的量比和時間的增加,PSPs提取率呈先增大后減小的趨勢。物質的量比與液料比相互作用的等高線呈橢圓形,表明兩者相互作用極顯著;從三維圖可以看出,隨物質的量比和液料比的增加,PSPs提取率呈先增加后減小的趨勢。液料比與時間相互作用的等高線幾乎呈圓形,表明兩者相互作用不顯著,這與方差分析結果一致,從三維圖可以看出,響應面曲線坡度較為陡峭,表明液料比和時間對PSPs提取率的影響均較大,隨液料比與時間的增加PSPs提取率呈先增加后減小的趨勢。
圖3 各因素交互作用對PSPs提取率的影響Fig.3 Effect of interaction of different factors on extraction rate of PSPs
2.3.4響應面模型預測值驗證
通過軟件Design Expert 8.0.6分析得到PSPs優(yōu)化提取工藝參數為物質的量比1.19、提取時間42.30 min和液料比20.75 mL/g,在此條件下PSPs提取率的預測值為18.61%。為了驗證響應面結果的可靠性,對所得優(yōu)化條件進行3組平行實驗驗證,所得PSPs提取率平均值為18.55%,與預測值接近(相對誤差為2.69%),說明該模型可以準確預測PSPs提取率,優(yōu)化工藝條件可靠,較傳統(tǒng)的熱水浸提增加了139.97%。
DESs重復使用0~5次時,PSPs提取率分別為18.81%、23.22%、23.47%、34.60%、26.23、22.34%,呈先增加后降低的趨勢;在重復使用3次時PSPs提取率達到最大(見圖4)。PSPs含量分別為43.25%、55.79%、56.97%、58.97%、63.48%、64.12%,呈現逐漸上升的趨勢,說明PSPs純度越來越高,充分體現了DESs經濟節(jié)約、綠色環(huán)保的特點。出現以上現象可能與DESs熱穩(wěn)定性差有關,不斷地高溫反復使用,使其黏度及微觀結構發(fā)生變化。在實驗過程也發(fā)現重復使用的DESs物理狀態(tài)發(fā)生了變化,在低溫下呈液體狀態(tài),較新鮮溶劑流動性更大,但具體原因還需進一步探究。
圖4 重復使用DESs對PSPs提取率及含量的影響Fig.4 Effect of reuse of DESs on extraction rate and content of PSPs
圖5 PSPs對自由基清除率的影響Fig.5 Effects of PSPs on scavenging rate of free radical
2.5.2DPPH自由基清除能力分析
在測定的PSPs質量濃度范圍內,DPPH自由基清除率與PSPs質量濃度具有量效關系,隨質量濃度的增加而增加,說明采用DESs提取的PSPs具有一定DPPH自由基清除能力,見圖6。經擬合,PSPs曲線方程為y=15.13+23.86x+8.72x2+4.86x3,R2=0.998 1,IC50=0.951 mg/mL。比較IC50可知,DESs提取的PSPs的DPPH自由基清除能力低于抗壞血酸,但顯著高于傳統(tǒng)水提醇沉法提取的PSPs的DPPH自由清除能力(IC50=19.57 mg/mL)。Zhang等[29]研究發(fā)現微波輔助處理PSPs,使其DPPH自由基清除能力增強,主要原因是清除能力最低的組分發(fā)生了降解;而DESs的性質類似于離子液,同樣具有降解活性物質的能力。另外,當PSPs質量濃度為1 g/L時,DESs提取的PSPs的 DPPH自由基清除率為52.57%,而魏煒等[30]用超高壓提取的PSPs的DPPH自由基清除率為34.14%,說明DESs對PSPs抗氧化能力有一定的提高。
圖6 PSPs對DPPH自由基清除率的影響Fig.6 Effects of PSPs on scavenging rate of DPPH free radical
2.5.3總抗氧化能力分析
在測定的PSPs質量濃度范圍內,總抗氧化能力與質量濃度具有量效關系,見圖7。隨質量濃度的增加,總抗氧化能力增加,0.2~1.0 mg/mL時總抗氧化能力增加較快;當質量濃度為1.4 mg/mL時,總抗氧化能力為241.2 μg/mL。PSPs的總抗氧化能力略低于同質量濃度的抗壞血酸,但仍具有一定的抗氧化能力。
圖7 PSPs的總抗氧化能力Fig.7 Total antioxidant capacity of PSPs