李殿明,柳兆飛,寧國蘭
肺癌是目前發(fā)病率與病死率最高的惡性腫瘤,死亡率高主要是由于絕大部分病人確診時已屬中晚期,5年生存率極低[1]。因此,肺癌的早期診斷和有效的治療方法是改善預后和提高生存率的關鍵。近年來,一些研究發(fā)現(xiàn)微小RNA(microRNA,miRNA)能調節(jié)多種腫瘤的發(fā)生、發(fā)展及轉移等[2]。循環(huán)miRNAs可作為肺癌診斷標記物[3],還可在預測腫瘤治療反應、療效評價[4]及預后[5]等方面起到重要作用。
miRNA廣泛存在于真核生物中,是一種在進化中高度保守的短鏈非編碼RNA[6]。let-7是人體內(nèi)第一個被發(fā)現(xiàn)的miRNA,包含13個成員:let-7-a-1/2/3,let-7-b,let-7-c,let-7-d,let-7-e,let-7-f-1/2,let-7-g,let-7-i,mir-98和mir-202[7]。let-7家族是目前研究最多的miRNA之一,研究[8-10]發(fā)現(xiàn)其在多種腫瘤中表達下調,可能作為癌基因或抑癌基因參與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展。關于let-7與腫瘤的研究大多集中在let-7a和let-7b上,關于let-7c的研究較少,而且let-7a1和let-7c共同在肺癌中的研究,至今未見報道。
本研究通過檢測肺癌組織、癌旁正常組織和良性肺疾病組織中l(wèi)et-7a1和let-7c基因的表達,分析兩者與肺癌發(fā)生、發(fā)展的相關性,探討其在肺癌發(fā)生中可能的分子機制。
1.1 材料
1.1.2 主要試劑 Trizol試劑 (Invitrogen公司);RNA保存液[(天根生化科技(北京)有限公司);DAB顯色試劑盒(福州邁新生物技術公司)];EB(北京天根生化科技有限公司);All-in-OneTMmiRNA qRT-PCR檢測試劑盒(廣州復能);let-7a1、let-7c基因引物、U6內(nèi)參引物(廣州復能);SuperScript Ⅲ反轉錄試劑盒(ABI-invitrogen);Sybr qPCR 試劑盒(ABI-invitrogen)。
1.1.3 主要儀器 超凈工作臺(蘇州市凈化設備有限公司);Finnpipette各型移液器(芬蘭ABI-invit rogen);7500型PCR儀(美國 ABI 公司);AlphaView圖像分析軟件(美國Alpha公司);Eppendor 5810R型冷凍高速離心機(德國Eppendorf 公司);瓊脂糖水平電泳槽(美國Bio-Rad公司);MK200-1型干式恒溫器(杭州奧盛儀器有限公司);XW-80A型漩渦混合器(上海醫(yī)科大學儀器廠);VCR76X5型振蕩器(海門市其林貝爾儀器制造有限公司)。
1.1.4 引物設計 PCR反應所用的下游引物為試劑盒提供的通用引物,上游引物是廣州復能基因提供的All-in-OneTMmiRNA qPCR引物;let-7a的上游引物序列號為HmiRQP0002;let-7c的上游引物序列號為HmiRQP0006;U6的上游引物序列號為HmiRQP9001。
1.2 方法
1.2.1 總RNA提取 按說明書進行,用瓊脂糖凝膠電泳鑒定總RNA的完整性,28S/18S≥2,說明RNA完整性良好(見圖1)。使用分光光度計測定樣品OD值,經(jīng)紫外分光光度儀分析OD260/OD280,OD260/OD280值均為1.8~2.0。
1.2.2 熒光定量PCR 染料法熒光定量PCR 檢測組織中miRNA表達。因成熟let-7很短,只有22 nt,而且其末端不具有mRNA所有的多聚腺苷酸尾巴,所以普通逆轉錄試劑盒中的隨機引物和Olig(dT)引物幾乎不能對其進行逆轉錄。因此,在逆轉錄前需對其尾端進行加工修飾,本研究選擇加尾法修飾進行逆轉錄,首先利用ploy(A)酶在其尾端進行加尾反應,產(chǎn)物類似mRNA,然后再利用Olig(dT)引物對其進行逆轉錄,確保熒光定量PCR的特異性。
按All-in-OneTMmiRNA qRT-PCR檢測試劑盒加尾法逆轉錄和PCR試劑盒說明書步驟進行,PCR儀器程序參數(shù)設置如下:預變性95 ℃、10 min,1個循環(huán);變性95 ℃、10 s,退火60 ℃、24 s,延伸72 ℃、34 s,共40個循環(huán)。擴增結束后直接做溶解曲線檢測 PCR 產(chǎn)物的特異性。以cDNA為模板,U6為內(nèi)對照,檢測各標本的let-7a1和let-7c的相對表達水平。
1.2.3 PCR產(chǎn)物的判定和計算 50×ROX Reference Dye是熒光定量PCR常用的DNA結合染料。因染料法與雙鏈DNA結合并不是一一對應,一旦有引物二聚體形成或非特異性擴增都將影響結果。所以通過溶解曲線分析判斷PCR反應的特異性。最終以內(nèi)參校正的相對值作為后期統(tǒng)計分析數(shù)據(jù)。
1.6 統(tǒng)計分析 數(shù)據(jù)由雙人錄入,建立數(shù)據(jù)庫,采用SPSS 16.0統(tǒng)計軟件進行數(shù)據(jù)處理,計數(shù)資料采用百分比描述,計量資料采用均數(shù)±標準差描述,構成比的比較采用卡方檢驗。
使用ABI公司的StepOnePlusTM(96孔)實時熒光PCR擴增儀進行實時熒光定量PCR反應,檢測各八連管中cDNA的Ct值(C代表熒光信號到達閾值時所需要的PCR反應次數(shù),t代表循環(huán)閾值),實驗設3個復孔,取平均值,以組織中U6的表達作為內(nèi)參進行相對定量,采用2-△△Ct值法計算2種miRNA在組織中的相對表達量。公式:△Ct=Ct(let-7)-Ct(U6),△△Ct=△Ct(實驗組織)-△Ct(對照組織)。
1.3 統(tǒng)計學方法 采用t檢驗、方差分析和q檢驗。
2.1 肺腺癌和鱗癌的病理診斷及免疫組織化學標記結果 肺腺癌病理顯示腫瘤結節(jié)狀生長,浸潤周圍肺組織;低倍鏡下癌細胞呈不規(guī)則腺管狀排列,在膠原纖維間浸潤性生長。免疫組織化學結果顯示癌細胞表達TTF1、CK7、NapsionA(見圖2)。肺鱗癌病理顯示不規(guī)則結節(jié)狀生長,與周圍肺組織界限不清;低倍鏡下癌細胞呈大小不一的巢團狀生長,可見小的角化珠及細胞內(nèi)角化,間質膠原化。免疫組織化學結果顯示瘤細胞表達p63、p40(見圖3)。
2.2 let-7a1和 let-7c基因在肺癌組織、癌旁正常組織和良性肺疾病組織中的表達的擴增曲線Line圖和溶解曲線圖 熒光定量PCR擴增曲線呈較為光滑的S型,均在30個循環(huán)以前出現(xiàn)擴增信號,結果較為可靠;由于產(chǎn)物序列不同,溶解曲線熒光信號主峰基本集中在80~90 ℃和78~88 ℃,其前有小的雜峰,考慮為復空中底物濃度過低所至引物二聚體的形成(見圖4~7)。
2.3 let-7a1和let-7c基因在肺癌組織、癌旁正常組織和良性肺疾病組織中的表達比較 肺癌組織中l(wèi)et-7a1和let-7c的相對表達量均低于癌旁正常組織和良性肺疾病組織(P<0.05);癌旁正常組織中l(wèi)et-7a1和let-7c的相對表達量均低于良性肺疾病組織(P<0.05)(見表1)。
表1 肺癌組織、癌旁正常組織和良性肺疾病組織中l(wèi)et-7a1、let-7c基因的表達比較
2.4 let-7a1和let-7c基因在不同病理類型肺癌組織中的表達比較 let-7a和let-7c基因在肺鱗癌和腺癌中的相對表達量差異均無統(tǒng)計學意義(P>0.05)(見表2);在肺鱗癌和腺癌旁正常組織中的相對表達量差異也均無統(tǒng)計學意義(P>0.05)(見表3)。
2.5 let-7a1和let-7c表達與肺癌臨床特征之間的關系分析 let-7a1表達與分化程度、吸煙和TNM分期有關(P<0.05~P<0.01),與淋巴結有無轉移無關(P>0.05)。let-7c表達與淋巴結轉移、分化程度有關(P<0.01),與吸煙、TNM分期無關(P>0.05)(見表4)。
表2 let-7a1和let-7c基因在不同病理類型肺癌組織中的表達比較
表3 let-7a和let-7c基因在不同病理類型肺癌旁正常組織中的表達比較
肺癌是發(fā)病率及死亡率最高的癌癥,2018年全球肺癌新發(fā)病例達到209萬余例,肺癌相關死亡病例高達176萬余例,同年我國統(tǒng)計數(shù)據(jù)顯示約有77.4萬的新增肺癌病例,其中69萬人死于肺癌[11]。非小細胞肺癌占肺癌的80%~90%,而小細胞癌在過去20多年里在許多國家的發(fā)病率一直在下降[12]。對于非小細胞肺癌,近年來盡管采用了手術、化療、放療、靶向治療和免疫治療等,其5年生存率僅15%[13]。靶向和免疫治療一直是肺癌領域研究的熱點,但也存在較多問題,靶向治療主要針對有EGFR、ALK、c-MET、ROS1等突變的病人,但仍有大約有一半的非小細胞肺癌病人無明確靶點,同時靶向治療耐藥不可避免;免疫治療開創(chuàng)腫瘤治療新紀元,一旦獲益可能長期生存,但獲益率僅20%左右[14],且有一定不良反應。因此,進一步闡明肺癌發(fā)展演變過程中分子機制,提高靶向和免疫治療的療效將對治療肺癌具有重大意義。
本研究通過熒光定量PCR檢測肺癌組織中l(wèi)et-7a1、let-7c的表達情況并結合臨床資料,分析其可能的分子機制。結果顯示,肺癌組織中l(wèi)et-7a1和let-7c基因表達低于癌旁組織和正常肺組織,差異有統(tǒng)計學意義;但在腺癌、鱗癌組織及其癌旁組織中表達,差異均無統(tǒng)計學意義;這與尚學芹等[15]研究結果一致,也與其在其他腫瘤組織中的表達結果一致[16-17]。但FASSINA等[18]研究認為,在腺癌組織中l(wèi)et-7a、let-7b、let-7c、let-7f、let-7g、let-7i和miR-98的表達量明顯高于鱗癌組織,考慮本研究所使用的均為手術標本,均經(jīng)嚴格的標本清洗及儲存處理,而且本研究樣本量44例高于FASSINA等研究的所采用的針吸標本組織31例,故認為本研究結果更可信。
表4 let-7a-1和let-7c基因與各臨床相關指標之間的關系
本研究結果顯示,Let-7c在肺癌組織中的表達與淋巴結轉移、分化程度有關,與ZHAO等[19]的報道一致,也與耿淼等[20]在乳腺癌和ZHU等[21]在肝癌細胞中體外及體內(nèi)實驗結果一致,但具體作用機制有待進一步研究。ZHAO等[19]認為肺癌的轉移與let-7c下游靶基因整合素β3和絲裂原蛋白激酶激酶激酶激酶3有關,這給肺癌的淋巴結轉移途徑研究提供新的證據(jù)。對于本研究發(fā)現(xiàn)的let-7c與吸煙、TNM分期無關,尚未見文獻報道,其發(fā)生機制我們將進一步探討。與之不同的是let-7a1則與吸煙、TNM分期明顯相關,而與淋巴結轉移無關。另外let-7a1在肺癌中的表達隨分化程度越差其表達明顯減低。同時本研究結果還顯示,let-7a1表達在一定程度上與吸煙相關,有吸煙史者表達減低,這與IZZZOTTI等[22]研究的煙草暴露環(huán)境中小鼠的肺組織上皮細胞let-7表達下降的結果基本一致。
目前關于let-7在肺癌中的治療價值主要集中在以下幾方面:(1)含鉑兩藥方案一直是肺癌的標準化療方案,但有效率較低,客觀緩解率為29.2%~36.4%[23]。最近有研究[24]認為肺癌細胞對鉑類藥物的耐藥可能也與let-7和miR-29對Cockayne syndrome protein B的調節(jié)有關。(2)針對非小細胞肺癌中上調let-7基因的研究認為高遷移率族蛋白A2 mRNA是let-7b的功能性小分子RNA,在HCC827細胞的的體內(nèi)外研究結果都表明能使其特異性沉默,因此認為let-7可能是潛在的腫瘤治療靶點[25]。另有研究[26]發(fā)現(xiàn)miR-203通過抑制LIN28B和促進let-7的生物合成,在抑制肺癌細胞增殖和促進凋亡方面發(fā)揮了重要作用。(3)靶向治療一直是非小細胞肺癌治療的熱點,特別是EGFR-TKIs的臨床應用,給病人帶來了無進展生存期的獲益,改善了生活質量,但耐藥不可避免,其分子機制尚不清楚。有研究[27]報道與吉非替尼敏感PC9細胞相比,吉非替尼耐藥PC9/GR細胞let-7家族表達下調,miR-17家族表達上調。let-7和miR-17參與了非小細胞肺癌EGFR-TKI耐藥的調控,可作為預測非小細胞肺癌EGFR-TKI耐藥的生物標志物。(4)免疫檢查點抑制劑是腫瘤治療的一個最有前途的靶點,但客觀應答率小于40%,并且對PD-1/PD-L1表達調控的機制知之甚少。CHEN等[28]研究發(fā)現(xiàn)let-7能夠抑制PD-L1表達,而LIN28是一種RNA結合蛋白,在大多數(shù)癌細胞中上調,抑制let-7的生物合成,從而促進PD-L1的表達。因此,抑制LIN28可能是預防癌細胞免疫逃逸的一種策略。因此let-7已成為腫瘤治療和免疫應答的關鍵分子,本身也具有潛在的免疫治療靶點作用[29]。
LI等[30]通過Meta分析探討microRNA let-7在肺癌中的預后作用也發(fā)現(xiàn)let-7的低表達提示整體生存率低,危險比為1.55(95%CI:1.16~2.09,P<0.05)。let-7的低表達與肺癌病人預后不良密切相關。
綜上,let-7a1和let-7c基因在肺癌組織中低表達,并且隨臨床分期進展、淋巴結轉移呈明顯下降趨勢,提示兩者與肺癌的發(fā)生、發(fā)展及轉移密切相關,let-7a1和let-7c可能成為肺癌早期診斷生物標記因子,并可能成為肺癌的靶向治療新的靶點,為高危人群的早期干預提供實驗依據(jù)。