杜想想，趙亞帆，趙晨云，趙帥兵，李 源，程 遠(yuǎn)，趙全志，杜彥修，孫紅正，孫虎威，彭 廷

(河南糧食作物協(xié)同創(chuàng)新中心，河南省水稻生物學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，河南農(nóng)業(yè)大學(xué)，河南 鄭州 450046)

生長(zhǎng)素作為最早發(fā)現(xiàn)的一類(lèi)植物激素，參與調(diào)控植物多種生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程，如根的發(fā)育[1]、頂端優(yōu)勢(shì)、向性反應(yīng)和形態(tài)建成[2]等。生長(zhǎng)素調(diào)控通路中關(guān)鍵蛋白主要包括生長(zhǎng)素/吲哚乙酸蛋白(Aux/IAAs)、SCF復(fù)合系統(tǒng)和生長(zhǎng)素響應(yīng)因子(ARFs)[3]。生長(zhǎng)素響應(yīng)因子是能與生長(zhǎng)素應(yīng)答元件(AuxRE)TGTCTC序列特異結(jié)合，調(diào)節(jié)生長(zhǎng)素反應(yīng)基因的一類(lèi)轉(zhuǎn)錄因子，最先在模式植物擬南芥中被鑒定出來(lái)[4]，該家族共有23個(gè)基因[5]。其中ARF1/ARF2功能的缺失通過(guò)增加擬南芥中Aux/IAA基因的轉(zhuǎn)錄進(jìn)而調(diào)控葉片衰老和開(kāi)花時(shí)間[6]；ARF3/ARF4主要調(diào)控側(cè)生器官的結(jié)構(gòu)發(fā)育[7]，ARF3直接與細(xì)胞分裂素基因AtIPT5啟動(dòng)子結(jié)合，負(fù)調(diào)控AtIPT5的表達(dá)，介導(dǎo)生長(zhǎng)素與細(xì)胞分裂素相互作用，影響新生芽的再生[8]；ARF5通過(guò)調(diào)控AMP1的表達(dá)影響胚和維管組織的形成[9]；arf6、arf8突變體雄蕊發(fā)育遲緩，而arf6/arf8雙突變體則不能形成成熟的花，表明ARF6、ARF8共同參與花的形態(tài)建成[10]，同時(shí)，ARF8還負(fù)調(diào)控果實(shí)的起始發(fā)育[11]；ARF7/ARF19可直接激活下游基因LBD/ASLs的表達(dá)來(lái)影響側(cè)根形成[12]；ARF10/ARF16則是在miR160下游調(diào)控根冠發(fā)育及根的向地性[13]。

單子葉植物水稻ARF家族中有25個(gè)成員[14]。OsARF1是水稻中第一個(gè)被發(fā)現(xiàn)的ARF基因[15]，它與胚芽鞘的向性有關(guān)；之后的研究表明，OsARF1對(duì)營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)和種子發(fā)育至關(guān)重要[16]；OsARF4能與OsGSK41/OsGSK互作且被后者磷酸化，調(diào)控水稻籽粒大小及千粒質(zhì)量[17]；OsARF16參與細(xì)胞分裂素介導(dǎo)的水稻磷酸鹽轉(zhuǎn)運(yùn)和信號(hào)傳遞通路，且敲除株系對(duì)外源細(xì)胞分裂素不響應(yīng)[18]。OsARF17和OsARF19通過(guò)調(diào)節(jié)生長(zhǎng)素和BR信號(hào)來(lái)控制水稻葉夾角大小[19-20]。然而，目前對(duì)水稻ARF家族的研究大多集中在籽粒發(fā)育和葉夾角等方面，ARFs其他成員對(duì)水稻農(nóng)藝性狀的影響尚不明確。

CRISPR/Cas9是第3代基因編輯技術(shù)，相比其他編輯技術(shù)具有成本低、快速高效等優(yōu)點(diǎn)，已經(jīng)成為目前最主流的基因編輯系統(tǒng)[21]。近年來(lái)，大量研究人員通過(guò)CRISPR/Cas9技術(shù)對(duì)水稻基因編輯，研究水稻基因的功能，也取得了重要進(jìn)展[22]。本研究利用CRISPR/Cas9系統(tǒng)對(duì)水稻生長(zhǎng)素響應(yīng)因子OsARF12第1個(gè)和第2個(gè)外顯子靶位點(diǎn)進(jìn)行編輯，獨(dú)立轉(zhuǎn)化粳稻品種日本晴，通過(guò)對(duì)2個(gè)外顯子不同突變位點(diǎn)的KO-ARF12-1和KO-ARF12-2突變體進(jìn)行測(cè)序、表達(dá)量鑒定、表型性狀調(diào)查，研究OsARF12對(duì)水稻農(nóng)藝性狀的影響。

1 材料和方法

1.1 試驗(yàn)材料

轉(zhuǎn)基因受體材料為：粳稻品種日本晴(Oryzasativaspp.japonicacv. Nipponbare)。CRISPR/Cas9載體為：pOs-gRNA、pH-Ubi-CAS9。試驗(yàn)所需引物(表1)合成與測(cè)序分析均由上海生工生物工程股份有限公司完成。

表1 試驗(yàn)所用引物Tab.1 Primers used in this test

1.2 試驗(yàn)方法

1.2.1OsARF12靶位點(diǎn)設(shè)計(jì)和表達(dá)載體構(gòu)建 根據(jù)CRISPR/Cas9原理，在RAP-DB網(wǎng)站(https://rapdb.dna.affrc.go.jp/)上獲取水稻OsARF12外顯子序列，分別選取第1個(gè)外顯子PAM序列(CGG)前20 bp(5′-GAACGATGCGTACCTTCCCG-3′)及第2個(gè)外顯子PAM序列(GGG)前20 bp(5′-TTCACACCCGGATATCGGTT-3′)為靶位點(diǎn)(圖1)。分別在2個(gè)靶位點(diǎn)5′端前加上BsaⅠ限制性內(nèi)切酶的黏性末端接頭GGCG，即為ARF12Crispr1_F、ARF12Crispr2_F(表1)；將選取的2個(gè)靶序列分別反向互補(bǔ)并在其5′端前加上BsaⅠ限制性內(nèi)切酶的黏性末端接頭AAAC，即為ARF12Crispr1_R、ARF12Crispr2_R(表1)。將2對(duì)加過(guò)接頭的序列送往上海生工生物工程股份有限公司合成后，經(jīng)磷酸化修飾和退火形成雙鏈，用T4DNA連接酶與經(jīng)過(guò)限制性內(nèi)切酶BsaⅠ酶切過(guò)后的中間載體sgRNA連接，轉(zhuǎn)化大腸桿菌感受態(tài)DH5α，隨后進(jìn)行菌落PCR檢測(cè)與測(cè)序，并用陽(yáng)性質(zhì)粒與Cas9終載體進(jìn)行LR重組，轉(zhuǎn)化DH5α，經(jīng)菌落PCR和測(cè)序檢測(cè)，將陽(yáng)性質(zhì)粒轉(zhuǎn)化農(nóng)桿菌EHA105。利用農(nóng)桿菌介導(dǎo)法導(dǎo)入粳稻品種日本晴，獲得轉(zhuǎn)基因植株。

1.2.2 植株DNA和總RNA的提取 在野生型和各轉(zhuǎn)基因植株抽穗前取葉片樣品，并立即置于液氮中，-80 ℃冰箱保存。采用CTAB法提取葉片DNA；TRIzol法提取總RNA。

1.2.3 反轉(zhuǎn)錄 使用天根生化科技有限公司FastKing RT Kit(KR118-02)反轉(zhuǎn)錄試劑盒將1 μg總RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA。

1.2.4OsARF12表達(dá)量分析 將cDNA稀釋10倍，使用天根生化科技有限公司定量檢測(cè)試劑盒SYBR Green(FP209)，Actin基因作為內(nèi)參，采用Bio-Rad CFX96熒光定量PCR儀進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR分析。相對(duì)表達(dá)量采用2-ΔΔCt法計(jì)算。

1.2.5 數(shù)據(jù)分析 采用Microsoft Excel 2016對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行整理和作圖，利用SPSS 24進(jìn)行差異顯著性分析。

2 結(jié)果與分析

2.1 KO-ARF12-1/-2 T0突變體鑒定

將攜帶CRISPR/Cas9-ARF12-1和CRISPR/Cas9-ARF12-2質(zhì)粒的農(nóng)桿菌侵染水稻品種日本晴，得到KO-ARF12-1 T0再生苗5株，KO-ARF12-2 T0再生苗15株。利用CTAB法提取各單株葉片的DNA，并根據(jù)OsARF12的序列分別設(shè)計(jì)2個(gè)不同靶位點(diǎn)引物：CrisprARF12-1_F、CrisprARF12-1_R和CrisprARF12-2_F、CrisprARF12-2_R(表1)，用對(duì)應(yīng)的引物對(duì)轉(zhuǎn)基因植株的DNA進(jìn)行擴(kuò)增(圖2)，并將擴(kuò)增產(chǎn)物送往公司測(cè)序。通過(guò)對(duì)T0測(cè)序結(jié)果比對(duì)發(fā)現(xiàn)：KO-ARF12-1-1為1條鏈缺失1 nt、互補(bǔ)鏈缺失7 nt的雙等位突變體；KO-ARF12-1-2和KO-ARF12-1-3為1條鏈缺失4 nt、互補(bǔ)鏈缺失7 nt的雙等位突變體，KO-ARF12-1-4和KO-ARF12-1-5 2條鏈均未突變(表2)。

表2 KO-ARF12-1 T0轉(zhuǎn)基因植株突變類(lèi)型鑒定Tab.2 Identification of mutation types of KO-ARF12-1 T0 transgenic plants

KO-ARF12-2各轉(zhuǎn)基因植株共有11種突變類(lèi)型：KO-ARF12-2-12和KO-ARF12-2-15為2條鏈分別缺失了6 nt與5 nt的純合突變體；KO-ARF12-2-5為1條鏈缺失2 nt，KO-ARF12-2-8為1條鏈插入1 nt，互補(bǔ)鏈均沒(méi)有突變的雜合突變體；而其余8株均為雙等位突變：KO-ARF12-2-1為1條鏈插入1 nt，互補(bǔ)鏈缺失4 nt；KO-ARF12-2-3為1條鏈缺失1 nt，互補(bǔ)鏈缺失6 nt；KO-ARF12-2-6、KO-ARF12-2-9和KO-ARF12-2-11為1條鏈插入1 nt，互補(bǔ)鏈缺失1 nt；KO-ARF12-2-7為1條鏈插入1 nt，互補(bǔ)鏈缺失7 nt；KO-ARF12-2-13為1條鏈缺失4 nt，互補(bǔ)鏈缺失5 nt；KO-ARF12-2-14為1條鏈缺失1 nt，互補(bǔ)鏈缺失5 nt；KO-ARF12-2-2、KO-ARF12-2-4和KO-ARF12-2-10 2條鏈均未突變(表3)。

表3 KO-ARF12-2 T0轉(zhuǎn)基因植株突變類(lèi)型鑒定Tab.3 Identification of mutation types of KO-ARF12-2 T0 transgenic plants

2.2 KO-ARF12-1/-2 T1突變體鑒定

采用CTAB法提取OsARF12在T0發(fā)生突變的轉(zhuǎn)基因株系葉片DNA，并用CrisprARF12-1_F、CrisprARF12-1_R和CrisprARF12-2_F、CrisprARF12-2_R對(duì)相應(yīng)的轉(zhuǎn)基因株系DNA進(jìn)行擴(kuò)增(圖3，4)，將產(chǎn)物送往公司測(cè)序。測(cè)序結(jié)果進(jìn)行比對(duì)發(fā)現(xiàn)，KO-ARF12-1各突變轉(zhuǎn)基因株系T120個(gè)單株中，有3種純合突變、2種雙等位突變，共5種突變類(lèi)型，分別為：1條鏈缺失1 nt、互補(bǔ)鏈缺失7nt的雙等位突變體有4株；缺失1 nt的純合突變體有1株；缺失7 nt的純合突變體有3株；缺失4 nt的純合突變體有7株；1條鏈缺失4 nt、互補(bǔ)鏈缺失7 nt的雙等位突變體有5株(表4)。

表4 KO-ARF12-1 T1轉(zhuǎn)基因植株突變類(lèi)型鑒定Tab.4 Analysis and identification of mutation types of KO-ARF12-1 T1 transgenic plants

KO-ARF12-2各突變轉(zhuǎn)基因株系T160個(gè)單株中，有6種純合突變、1種雜合突變和4種雙等位突變，共11種突變類(lèi)型，分別為：缺失1，6，2，7，4 nt和插入1 nt的純合突變體，分別為12，1，6，3，2，10株；1條鏈插入1 nt、互補(bǔ)鏈未突變的雜合突變體3株；1條鏈插入1 nt、互補(bǔ)鏈缺失4 nt，1條鏈插入1 nt、互補(bǔ)鏈缺失1 nt，1條鏈缺失4 nt、互補(bǔ)鏈缺失5 nt和1條鏈缺失1 nt、互補(bǔ)鏈缺失5 nt的雙等位突變體分別為6，9，4，4株(表5)。

2.3 KO-ARF12-1/-2 T2突變體表達(dá)量分析

以T22種不同靶位點(diǎn)的6種不同基因型純合突變體KO-ARF12-1-1-3(缺失1 nt)、KO-ARF12-1-2-1(缺失4 nt)、KO-ARF12-1-2-6(缺失7 nt)及KO-ARF12-2-5-2(缺失2 nt)、KO-ARF12-2-11-4(插入1 nt)、KO-ARF12-2-15-5(缺失5 nt)(圖5-A)為研究材料，選取大田正常生長(zhǎng)條件下葉片樣品提取總RNA，反轉(zhuǎn)錄并定量分析發(fā)現(xiàn)，除KO-ARF12-2-11-4，其他各突變體株系中OsARF12表達(dá)量與野生型相比均顯著下降(P<0.05)(圖5-B)。

表5 KO-ARF12-2 T1轉(zhuǎn)基因植株突變類(lèi)型鑒定Tab.5 Analysis and identification of mutation types of KO-ARF12-2 T1 transgenic plants

表5(續(xù))

2.4 OsARF12對(duì)水稻株高的影響

為研究OsARF12對(duì)水稻農(nóng)藝性狀的影響，于灌漿期將突變體株系和野生型株系進(jìn)行比較，結(jié)果表明，KO-ARF12-1/-2的株高均顯著降低(圖6-A、C)，各突變體株系株高與野生型相比分別減少了16.59%，16.63%，16.06%和14.94%，13.15%，18.39%(圖6-C)。進(jìn)一步對(duì)水稻各莖節(jié)間長(zhǎng)度進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析發(fā)現(xiàn)，與野生型相比，KO-ARF12-1/-2顯著降低了第3和第4莖節(jié)間長(zhǎng)度，其中第4莖節(jié)間降低幅度最大(圖6-B、D)，降低的幅度為23.46%(P<0.05)，其次為第3莖節(jié)間，降低的幅度為21.91%(P<0.05)，而第1和第2莖節(jié)間長(zhǎng)度與對(duì)照無(wú)顯著差異(P>0.05)。

3 結(jié)論與討論

現(xiàn)代農(nóng)業(yè)發(fā)展中，對(duì)突變體進(jìn)行基因功能研究已經(jīng)成為一種重要的研究手段。2013年CRISPR/Cas9技術(shù)成功應(yīng)用于定點(diǎn)突變水稻基因[23]，2014年CRISPR/Cas9技術(shù)被證實(shí)可高效編輯水稻特異基因，并且基因突變能夠穩(wěn)定遺傳[22]，極大地促進(jìn)了水稻突變體庫(kù)的建立。本研究利用CRISPR/Cas9技術(shù)分別對(duì)OsARF12的第1、第2個(gè)外顯子靶序列進(jìn)行定點(diǎn)編輯，獲得了OsARF12多種類(lèi)型的突變體。其中，KO-ARF12-1 T03種突變類(lèi)型，T15種突變類(lèi)型；KO-ARF12-2 T011種突變類(lèi)型，T111種突變類(lèi)型，為研究OsARF12對(duì)水稻農(nóng)藝性狀影響奠定基礎(chǔ)。

通過(guò)對(duì)KO-ARF12-1/-2 2種突變體材料中OsARF12的表達(dá)量進(jìn)行鑒定發(fā)現(xiàn)，CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù)顯著降低了OsARF12的表達(dá)量。且與對(duì)照相比，KO-ARF12-1/-2株高顯著降低(P<0.05)，表明OsARF12在一定程度上正向調(diào)節(jié)水稻的株高性狀。已有研究借助T-DNA插入或者是Tos17插入的arf12突變體研究發(fā)現(xiàn)，OsARF12可能介導(dǎo)根形態(tài)和磷誘導(dǎo)的生長(zhǎng)素信號(hào)反應(yīng)；Qi等[24]發(fā)現(xiàn)，OsARF12改變鐵調(diào)節(jié)蛋白(OsMIR)和鐵調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白1(OsIRT1)的豐度，導(dǎo)致鐵含量的改變。本研究通過(guò)CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù)創(chuàng)制了OsARF12突變體，研究了其在調(diào)節(jié)水稻株高方面的重要作用，豐富了水稻生長(zhǎng)素響應(yīng)因子OsARF12的生物學(xué)功能。

水稻的株高受眾多激素以及它們之間的相互作用調(diào)控，OsMADS57功能的缺失降低了GA的活性，導(dǎo)致株高降低[25]；OsMED14_1與轉(zhuǎn)錄因子YABBY5、TDR和MADS29互作，參與調(diào)節(jié)生長(zhǎng)素的動(dòng)態(tài)平衡，進(jìn)而調(diào)控水稻株高[26]；miR1848靶向OsCYP51G3調(diào)節(jié)水稻中植物甾醇和BR的生物合成，影響水稻株高[27]。本研究通過(guò)CRISPR/Cas9技術(shù)對(duì)生長(zhǎng)素響應(yīng)因子OsARF12進(jìn)行編輯，可能通過(guò)影響其生長(zhǎng)素調(diào)控路徑，進(jìn)而導(dǎo)致株高降低。水稻株高由各莖節(jié)間長(zhǎng)度組成，水稻抗倒伏能力與近基部莖節(jié)間長(zhǎng)度呈負(fù)相關(guān)關(guān)系[28]。本研究表明，各突變類(lèi)型的突變體與野生型相比，第1和第2莖節(jié)間長(zhǎng)度無(wú)顯著差異，第3和第4莖節(jié)間長(zhǎng)度顯著(P<0.05)降低，且第4莖節(jié)間降幅最大，表明突變體植株越靠近基部，其莖節(jié)間長(zhǎng)度縮短幅度越大，這對(duì)提高水稻的抗倒伏能力有重要作用，但KO-ARF12突變體中不同節(jié)間長(zhǎng)度改變的內(nèi)在機(jī)制需要進(jìn)一步研究。