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鞣花酸磷脂復(fù)合物的制備及其口服生物利用度研究

2021-09-27 09:37張留超劉勇華
中成藥 2021年7期
關(guān)鍵詞:花酸混合物磷脂

張留超,劉勇華

(黃河科技學(xué)院,河南 鄭州 450005)

文獻[5?7] 報道,藥物與磷脂形成磷脂復(fù)合物后其水溶性、脂溶性均可得到提高,有助于促進藥物口服吸收;蔣新龍等[8]采用質(zhì)子溶劑乙醇作為反應(yīng)溶劑制備了鞣花酸磷脂復(fù)合物,但其復(fù)合率不足92%,可能與溶劑選擇不當(dāng)、工藝考察不精確有關(guān)。本實驗以非質(zhì)子溶劑四氫呋喃為反應(yīng)溶劑[9]制備鞣花酸磷脂復(fù)合物,并考察其口服生物利用度,以期為相關(guān)制劑研究提供參考。

1 材料

Agilent 1200 型高效液相色譜儀(美國Agilent公司);SH23?1 型磁力攪拌器(上海江星儀器有限公司);AR1140 型電子天平[梅特勒?托利多儀器(上海)有限公司];DZF?6050 型真空干燥箱(上海欣齊科學(xué)儀器有限公司);XPert Powder 型X 射線衍射儀(英國馬爾文公司);RE?3000 型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(上海亞榮生化儀器廠)。

鞣花酸原料藥(純度98.0%,批號190320,武漢荊楚陳氏醫(yī)藥化工有限公司);鞣花酸對照品(純度99.6%,批號110726?201707,中國食品藥品檢定研究院);大豆卵磷脂(批號PC98T,磷脂酰膽堿質(zhì)量分?jǐn)?shù)>98%,上海輔必成醫(yī)藥科技有限公司)。清潔級SD 大鼠,體質(zhì)量180~220 g,購自河南省實驗動物中心,動物生產(chǎn)許可證號SCXK(豫)2016?0012。

2 方法與結(jié)果

2.1 鞣花酸磷脂復(fù)合物制備 取50 mg 原料藥(45 ℃下真空干燥1 d)、處方量磷脂,置于三角瓶中,加入四氫呋喃制得混懸液,立即密封,置于一定溫度水浴中,磁力攪拌適當(dāng)時間后得澄清溶液,真空旋蒸除去有機溶劑,即得(性狀為淺黃色半固體)。

2.2 鞣花酸含量測定

2.2.1 色譜條件 Waters Extend?C18色譜柱(150 mm×4.6 mm,5 μm);檢測波長254 nm;流動相甲醇?水(含0.1%磷酸)(45 ∶55);體積流量1.0 mL/min;柱溫35 ℃;進樣量20 μL。

2.2.2 線性關(guān)系考察 精密稱取鞣花酸對照品10.0 mg,溶于1.0 mL 四氫呋喃中,甲醇定容至10 mL,得1.0 mg/mL 母液,精密吸取1.0 mL 至100 mL量瓶中,流動相定容至刻度,得到10.0 μg/mL對照品溶液,“2.2.1”項下流動相稀釋至10.0、5.0、2.5、0.5、0.1、0.05 μg/mL,在“2.2.1”項色譜條件下進樣測定。以峰面積(Y)對鞣花酸質(zhì)量濃度(X)進行回歸,得方程為Y=14.314 2X+0.648 9(r=0.999 8),在0.05~10.0 μg/mL 范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

2.2.3 供試品溶液制備 取鞣花酸磷脂復(fù)合物約10 mg,置于100 mL 量瓶中,甲醇定容至刻度,取2.5 mL 至10 mL 量瓶中,“2.2.1”項下流動相定容至刻度,即得。

1.2 標(biāo)本采集 抽取孕婦空腹外周靜脈血5 ml裝入真空普管中。待自凝后取血清3 000 r/min低溫離心5 min,吸取上清液,置于-22°冰箱保存待同批測量。

2.2.4 方法學(xué)考察 取鞣花酸磷脂復(fù)合物適量,按“2.2.3”項下方法平行制備6 份供試品溶液,在“2.2.1”項色譜條件下進樣測定,測得鞣花酸峰面積RSD 為1.20%,表明該方法重復(fù)性良好。取同一份供試品溶液,于0、2、4、8、12、24 h在“2.2.1”項色譜條件下進樣測定,測得鞣花酸峰面積RSD 為0.58%,表明溶液在24 h 內(nèi)穩(wěn)定性良好。取“2.2.2”項下0.5、2.5、10.0 μg/mL對照品溶液,在“2.2.1”項色譜條件下進樣測定6 次,測得鞣花酸峰面積RSD 分別為0.62%、0.43%、0.16%,表明儀器精密度良好。稱取9 份鞣花酸磷脂復(fù)合物,加入“2.2.2”項下1.0 mg/mL對照品溶液1.25、2.50、3.75 mL,在“2.2.3”項色譜條件下進樣測定,測得鞣花酸平均加樣回收率分別為98.96%、100.68%、99.17%,RSD 分別為1.11%、0.84%、1.50%。

2.3 復(fù)合率測定 精密稱取一定量鞣花酸(X0)制備磷脂復(fù)合物,加入10 mL 乙醚,振蕩溶解后過0.22 μm 微孔濾膜,濾液減壓旋蒸除去乙醚,收集固體至100 mL 量瓶中,甲醇定容至刻度,取2.5 mL至10 mL 量瓶中,“2.2.1”項下流動相定容,在“2.2.3”項色譜條件下進樣測定參加復(fù)合的鞣花酸質(zhì)量(X1),計算復(fù)合率,公式為復(fù)合率=(X1/X0)×100%。

2.4 Box?Behnken 響應(yīng)面法 固定鞣花酸用量不變,課題組前期發(fā)現(xiàn)磷脂用量(A)、制備溫度(B)、制備時間(C)是影響復(fù)合率的主要影響因素,三者水平見表1。再選擇復(fù)合率(Y)作為評價指標(biāo),采用Box?Behnken 響應(yīng)面法優(yōu)化制備工藝,結(jié)果見表2。

表1 因素水平Tab.1 Factors and levels

表2 試驗設(shè)計與結(jié)果Tab.2 Design and results of tests

對表2 數(shù)據(jù)進行擬合,得到二次多元回歸方程為Y=93.16 +6.89A+3.90B+5.51C- 2.58AB-1.40AC-5.47BC-4.33A2-0.55B2-2.33C2(R2=0.983 3,P<0.000 1,F(xiàn)=0.082 5,=0.961 9),R2較接近,表明擬合度良好;F>0.05,表明未知影響因素對實驗結(jié)果干擾很小,模型可信度較高,方差分析見表3。由此可知,各因素對復(fù)合率均有顯著影響(P<0.01),以A更明顯,可能是由于磷脂用量不足會嚴(yán)重影響復(fù)合率所致,并且交互項AB、BC也有顯著影響(P<0.05,P<0.01)。

表3 方差分析Tab.3 Analysis of variance

通過Design Expert V8.0.6 軟件進行分析,結(jié)果見圖1。由圖1a~1b 可知,固定某一因素時復(fù)合率隨均隨著另外2 個因素同時增加而增大,而后有所下降;由圖1c 可知,雖然隨著制備溫度、制備時間增加復(fù)合率逐漸增大,但達到一定程度時反而明顯下降,可能是過高的制備溫度、過長的制備時間會對磷脂或其復(fù)合物穩(wěn)定性產(chǎn)生一定影響,從而影響復(fù)合率。

圖1 各因素響應(yīng)面圖Fig.1 Response surface plots for various factors

設(shè)置復(fù)合率最大值為100%,最小值為0,得到最優(yōu)制備工藝為磷脂用量141.6 mg(鞣花酸與磷脂比例約為1 ∶1.1),制備溫度46.9 ℃,制備時間4.7 h,復(fù)合率為99.0%。按上述優(yōu)化工藝制備3 份鞣花酸磷脂復(fù)合物,測得復(fù)合率分別為99.4%、99.7%、98.9%,平均99.3%,與預(yù)測值99.0%接近(相對誤差為0.3%),表明模型預(yù)測性、重復(fù)性良好。

2.5 存在狀態(tài)分析 XRPD 掃描條件為Cu?Kα 靶,掃描范圍(2θ)4°~40°,電 流40 mA,速 度8°/min。取約10 mg 待測物,玻璃片壓平后固定于X 射線粉末衍射儀上測定,結(jié)果見圖2。由此可知,原料藥在9.3°、10.1°、12.1°、28.4°等處出現(xiàn)特征晶型峰;在物理混合物(比例同磷脂復(fù)合物)中,磷脂、鞣花酸強度均發(fā)生較大幅度的下降,前者晶型衍射峰基本消失,但仍可發(fā)現(xiàn)后者在12.1°、28.4°處的特征晶型峰;磷脂復(fù)合物中鞣花酸所有晶型衍射峰均消失,表明它是不同于物理混合物的一種物質(zhì),鞣花酸在其中以無定型狀態(tài)存在。

圖2 樣品XRPD 圖Fig.2 XRPD patterns for samples

2.6 溶解度測定 取過量鞣花酸、物理混合物、磷脂復(fù)合物至三角瓶中,加入蒸餾水或正辛醇,25 ℃下磁力攪拌48 h,分別取3 mL 至離心管中,6 000 r/min 離心5 min,取上清液,測定表觀溶解度,結(jié)果見表4,可知鞣花酸制成磷脂復(fù)合物后在水、正辛醇中的表觀溶解度分別提高至3.22、7.18 倍。另外,該成分在物理混合物中的溶解度也有所提高,可能是由于磷脂增溶作用所致。

表4 樣品表觀溶解度測定結(jié)果(, n=6)Tab.4 Results of apparent solubility determination of samples(, n=6)

表4 樣品表觀溶解度測定結(jié)果(, n=6)Tab.4 Results of apparent solubility determination of samples(, n=6)

注:與鞣花酸比較,**P<0.01;與物理混合物比較,##P<0.01。

2.7 口服生物利用度研究

2.7.1 分組、給藥與采血 取原料藥、物理混合物、磷脂復(fù)合物適量,加入0.5% CMC?Na 溶液,超聲30 s 后得混懸液(鞣花酸質(zhì)量濃度均為15 mg/mL)。取過夜禁食的18 只大鼠,隨機分為原料藥組、物理混合物組、磷脂復(fù)合物組,每組6只,灌胃給藥,劑量100 mg/kg,灌胃后立即計時,于0.15、0.25、0.75、1、1.5、2、3、4、6、8、12 h 將大鼠置于盛有乙醚的容器中麻醉10 s后,立即用浸潤有肝素抗凝劑的玻璃毛細管眼眶采血各約0.2 mL,引流至涂有肝素抗凝的離心管中,3 000 r/min 離心2 min,血漿保存于-10 ℃冰箱中。

2.7.2 血漿樣品處理 參考文獻[3,10] 報道的方法,取100 μL 血漿樣品,加入150 μL 1 mol/L KH2PO4、20 μL 50%磷酸,渦旋混合5 min,加入1 mL 乙腈渦旋混合5 min,7 500 r/min 離心5 min,轉(zhuǎn)移上清液,再加入0.5 mL 乙腈洗滌,合并2 次上清液,N2緩慢吹干,于殘渣中加入100 μL 甲醇,超聲10 s,7 500 r/min 離心5 min。

2.7.3 線性關(guān)系考察 取鞣花酸對照品適量,甲醇制成1 000、500、250、100、50、25 ng/mL 對照品溶液,分別取100 μL 至離心管中,氮氣緩慢吹干得殘渣,加入100 μL 空白血漿,渦旋5 min,即得1 000、500、250、100、50、25 ng/mL 血漿對照品溶液,按“2.7.2”項下方法處理,在“2.2.1”項色譜條件下進樣測定。以峰面積為縱坐標(biāo)(Y),鞣花酸質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(X)進行回歸,得方程Y=0.012 5X+0.055 3(r=0.993 8),在25~1 000 ng/mL 范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

2.7.4 方法學(xué)考察 取空白血漿、含藥血漿(磷脂復(fù)合物給藥12 h)、空白血漿+25 ng/mL 血漿對照品溶液,按“2.7.2”項下方 法處理,在“2.2.1”項色譜條件下進樣測定,結(jié)果見圖3,可知鞣花酸出峰時間為9.6 min,血漿內(nèi)源性物質(zhì)不干擾測定,專屬性強。室溫下于0、4、8、12、24、48 h 在“2.2.1”項色譜條件下進樣測定,測得鞣花酸峰面積RSD 為6.39%,表明樣品在48 h 內(nèi)穩(wěn)定性良好。取“2.7.3”項 下25、250、1 000 ng/mL血漿對照品溶液,在“2.2.1”項色譜條件下進樣測定6 次,測得鞣花酸峰面積分別為3.14%、4.04%、1.68%,表明儀器精密度良好。取鞣花酸對照品適量,按“2.7.3”項下方法制備25、250、1 000 ng/mL 血漿對照品溶液,按“2.7.2”項下方法處理,在“2.2.1”項色譜條件下進樣測定,測得平均加樣回收率分別為90.43%、87.69%、92.05%,RSD 分別為4.07%、3.22%、2.48%。將“2.7.3”項下25 ng/mL 血漿對照品溶液逐步稀釋,測得定量限(S/N=10)為5.0 ng/mL,檢測限(S/N=3)為2.0 ng/mL。

圖3 鞣花酸HPLC 色譜圖Fig.3 HPLC chromatograms of ellagic acid

2.7.5 藥動學(xué)研究 圖4、表5 顯示,與原料藥、物理混合物比較,磷脂復(fù)合物tmax縮短(P<0.05),Cmax、AUC0~t、AUC0~∞升高(P<0.01),相對生物利用度提高至2.46 倍。

表5 鞣花酸主要藥動學(xué)參數(shù)(, n=6)Tab.5 Main pharmacokinetic parameters for ellagic acid(, n=6)

表5 鞣花酸主要藥動學(xué)參數(shù)(, n=6)Tab.5 Main pharmacokinetic parameters for ellagic acid(, n=6)

注:與原料藥比較,*P<0.05,**P<0.01;與物理混合物比較,#P<0.05,##P<0.01。

圖4 鞣花酸血藥濃度?時間曲線Fig.4 Plasma concentration?time curves for ellagic acid

3 討論

本實驗選擇非質(zhì)子溶劑(四氫呋喃)制備鞣花酸磷脂復(fù)合物,其復(fù)合率高于質(zhì)子溶劑(如乙醇等)制備者,可能是質(zhì)子溶劑會對藥物和磷脂形成復(fù)合物時產(chǎn)生一定干擾作用,從而影響了復(fù)合率。所得最優(yōu)制備工藝的復(fù)合率接近100%,而且鞣花酸在水、正辛醇中的溶解度分別提高至3.22、7.18 倍,遠高于乙醇制備者(1.4、2.1 倍)[8],具體原因有待進一步研究。

在血漿樣品處理過程中,藥物損失會影響含量測定的準(zhǔn)確性,一般采用內(nèi)標(biāo)法。但對于鞣花酸血漿樣品而言,在酸性條件下采用外標(biāo)法[3,10?12]處理時,血漿內(nèi)源性物質(zhì)不干擾測定,回收率均大于87.69%,而且操作簡單,故本實驗也選擇該方法,與Mady 等[3]報道基本一致,可能是由于在酸性環(huán)境中更有利于鞣花酸進入乙腈而被有效提取出。

藥動學(xué)結(jié)果顯示,磷脂復(fù)合物可將鞣花酸口服吸收生物利用度提高至2.50 倍,可能與該劑型改變了后者存在狀態(tài)、提高了其水溶性和脂溶性有關(guān),但該成分易被胃腸道酶解[11]。文獻[13] 報道,磷脂復(fù)合物提高藥物生物利用度還與灌胃液配制方式有關(guān),并且其程度也可能存在差異。本實驗所制備的鞣花酸磷脂復(fù)合物脂溶性得到極大改善,可為后續(xù)相關(guān)納米制劑的開發(fā)奠定基礎(chǔ)[14?17]。

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