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液液萃取-全碳同位素標(biāo)記-液質(zhì)聯(lián)用法測(cè)定醬油中玉米赤霉烯酮

2021-11-18 09:39:22陽(yáng)曦劉瑋向世杰
中國(guó)調(diào)味品 2021年11期
關(guān)鍵詞:赤霉烯酮內(nèi)標(biāo)

陽(yáng)曦,劉瑋,向世杰

(1.綿陽(yáng)市食品藥品檢驗(yàn)所,四川 綿陽(yáng) 621000;2.四川省農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量安全中心,成都 610000)

玉米赤霉烯酮(zearalenone,ZEN)是由鐮刀菌產(chǎn)生的一類真菌毒素,在谷類和豆類及其制品中廣泛存在[1]。人或動(dòng)物食用被玉米赤霉烯酮污染的食物后,會(huì)對(duì)健康造成一定危害,主要表現(xiàn)為生殖系統(tǒng)和免疫系統(tǒng)毒性[2-4]。世界衛(wèi)生組織規(guī)定玉米赤霉烯酮的最大耐受量為0.5 μg/(kg·d),我國(guó)GB 2761-2017《食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn) 食品中真菌毒素限量》[5]中規(guī)定谷物及其制品中玉米赤霉烯酮的限量值為60 μg/kg。醬油的主要原料為大豆、小麥,均為受玉米赤霉烯酮污染的高風(fēng)險(xiǎn)作物。醬油在生產(chǎn)工藝上雖然有滅菌環(huán)節(jié),但多采用高溫巴氏消毒法(85~90 ℃)進(jìn)行,而玉米赤霉烯酮具有較強(qiáng)的耐熱性,在110 ℃以下加熱1 h以上才能完全被破壞。個(gè)別生產(chǎn)經(jīng)營(yíng)者對(duì)釀造用糧存僥幸心理,在原料上沒有嚴(yán)格把關(guān),導(dǎo)致醬油產(chǎn)品中玉米赤霉烯酮超標(biāo)。因此,非常有必要對(duì)醬油中的玉米赤霉烯酮進(jìn)行檢測(cè)和控制。

文獻(xiàn)報(bào)道的玉米赤霉烯酮的檢測(cè)方法主要有酶聯(lián)免疫法[6]、薄層色譜法[7]、高效液相色譜法[8-9]、氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[10]、高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法等[11-12]。酶聯(lián)免疫法雖然靈敏度高,能夠達(dá)到1.0 μg/kg,但特異性差,陽(yáng)性樣品需要進(jìn)一步確證。薄層色譜法靈敏度較低,一般為0.1 mg/kg以上,同樣不能準(zhǔn)確地定性。高效液相色譜法雖然具有較高的靈敏度(通常能達(dá)到1.0 μg/kg),但樣品需要進(jìn)行柱后衍生,分析時(shí)間長(zhǎng)。氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法同樣需要衍生化處理,且方法的穩(wěn)定性差,應(yīng)用并不廣泛。目前采用最多的是高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法,該方法選擇性強(qiáng)、靈敏度高、定量準(zhǔn)確,是近年來(lái)測(cè)定真菌毒素的首選方法。免疫親和柱凈化為液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用最常見的凈化方法,但該方法存在成本較高、耗時(shí)長(zhǎng)等缺點(diǎn)。本文采用液液萃取法對(duì)目標(biāo)物進(jìn)行提取凈化,前處理步驟簡(jiǎn)單,經(jīng)高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測(cè)定,內(nèi)標(biāo)法定量,實(shí)現(xiàn)了醬油中玉米赤霉烯酮的快速準(zhǔn)確測(cè)定。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

玉米赤霉烯酮標(biāo)準(zhǔn)溶液:100.0 μg/mL(乙腈),青島Pribolab公司;13C18-Zearalenone標(biāo)準(zhǔn)溶液:25.0 μg/mL(乙腈),青島Pribolab公司;乙腈(色譜純):美國(guó)Thermo Fisher Scientific公司;甲醇、無(wú)水乙醇:分析純,成都市科隆化學(xué)品有限公司;三氯甲烷(分析純):重慶川東化工有限公司。

樣品:市售醬油共18批。

U3000-4000 Q TRAP高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀 美國(guó)AB SCIEX公司;ME204T/02電子天平 瑞士梅特勒-托利多有限公司;Milli-Q超純水儀 美國(guó)Millipore公司。

1.2 試驗(yàn)方法

1.2.1 Zearalenone標(biāo)準(zhǔn)使用溶液的配制

精密吸取Zearalenone標(biāo)準(zhǔn)溶液1 mL置于100 mL容量瓶中,加50%乙腈稀釋至刻度,搖勻,制成濃度為1.00 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)使用溶液。

1.2.213C18-Zearalenone內(nèi)標(biāo)使用溶液的配制

精密吸取13C18-Zearalenone標(biāo)準(zhǔn)溶液1 mL置于5 mL容量瓶中,加50%乙腈稀釋至刻度,搖勻,制成濃度為5.00 μg/mL的內(nèi)標(biāo)使用溶液。

1.2.3 樣品前處理

樣品經(jīng)充分混勻后,稱取試樣5 g于50 mL離心管中,加入13C18-Zearalenone內(nèi)標(biāo)使用溶液40 μL,渦旋混合后靜置30 min。精密加入20 mL乙腈,渦旋5 min后以6000 r/min離心5 min,吸取上清液5 mL于氮吹管中,加入1 mL水、5 mL三氯甲烷,渦旋30 s后靜置分層,棄去上層溶液,下層溶液于50 ℃水浴中用氮?dú)獯蹈?,加? mL 50%乙腈復(fù)溶,渦旋混勻,經(jīng)0.22 μm水系濾膜過(guò)濾后,待測(cè)定。

1.2.4 空白基質(zhì)溶液的制備

稱取空白基質(zhì)樣品5 g于50 mL離心管中加入13C18-Zearalenone內(nèi)標(biāo)使用溶液40 μL,然后按1.2.3操作。

1.2.5 基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)系列工作液

取Zearalenone標(biāo)準(zhǔn)使用溶液適量,用空白基質(zhì)溶液制成濃度為5.0,25.0,50.0,75.0,100.0 ng/mL的基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)系列工作溶液,每個(gè)濃度溶液中內(nèi)標(biāo)物13C18-Zearalenone的濃度為50 ng/mL。

1.2.6 液相色譜條件

色譜柱:Thermo Acclaim C18(3.0 mm×100 mm,3 μm);流速:0.4 mL/min;進(jìn)樣體積:5 μL;柱溫:35 ℃;流動(dòng)相A:乙腈,流動(dòng)相B:水;梯度洗脫程序見表1。

表1 液相色譜梯度洗脫條件Table 1 The gradient elution conditions of liquidchromatography

1.2.7 質(zhì)譜條件

電噴霧電離源(electrospray ionization, ESI)負(fù)離子模式;多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(MRM);離子化電壓:4500 V;離子源溫度:500 ℃;噴霧器壓力:55 psi;輔助加熱器壓力:50 psi;氣簾氣壓力:25 psi;其他參數(shù)見表2。

表2 質(zhì)譜分析參數(shù)Table 2 Mass spectrometric analysis parameters

2 結(jié)果與分析

2.1 質(zhì)譜條件的優(yōu)化

在ESI-模式下,通過(guò)外置針泵連續(xù)進(jìn)樣,將濃度為1 μg/mL的ZEN和13C18-ZEN混合標(biāo)準(zhǔn)溶液泵入質(zhì)譜儀。根據(jù)化合物的相對(duì)分子質(zhì)量及分子結(jié)構(gòu)特征,首先確定母離子的質(zhì)荷比(m/z),再調(diào)整碰撞能量,分別選擇兩個(gè)響應(yīng)值大的碎片離子為子離子,以豐度最大的子離子為定量離子,豐度次之的子離子為定性離子,再分別優(yōu)化碰撞能量和去簇電壓,得到MRM方法參數(shù)。

2.2 流動(dòng)相的優(yōu)化

本試驗(yàn)比較了乙腈-水、乙腈-10 mmol/L乙酸銨溶液、甲醇-水、甲醇-10 mmol/L乙酸銨溶液作流動(dòng)相的色譜行為。在動(dòng)態(tài)調(diào)整流動(dòng)相比例的梯度洗脫程序中,使目標(biāo)化合物在各流動(dòng)相體系中獲得最佳保留。結(jié)果表明,目標(biāo)化合物在乙腈-10 mmol/L乙酸銨溶液和甲醇-10 mmol/L乙酸銨溶液體系中響應(yīng)強(qiáng)度約為乙腈-水、甲醇-水體系的50%。以甲醇-水為流動(dòng)相時(shí),雖然目標(biāo)化合物靈敏度較高,但是不能獲得較好峰形。以乙腈-水為流動(dòng)相時(shí),目標(biāo)化合物的峰形最好且靈敏度高。因此,最終確定以乙腈-水為本試驗(yàn)的洗脫溶劑。ZEN定量離子的MRM圖見圖1。

圖1 ZEN定量離子的MRM圖Fig.1 MRM diagram of quantitative ions of ZEN

2.3 提取溶劑的選擇

本試驗(yàn)考察了乙腈、甲醇、乙醇作為提取溶劑對(duì)檢測(cè)結(jié)果的影響。樣品在20 μg/kg的添加濃度下,分別使用乙腈、甲醇、乙醇作提取溶劑,經(jīng)三氯甲烷凈化后采用13C18-Zearalenone做內(nèi)標(biāo)進(jìn)行定量。發(fā)現(xiàn)通過(guò)內(nèi)標(biāo)進(jìn)行校正后,3組檢測(cè)數(shù)據(jù)回收結(jié)果相當(dāng),均高于90%,但是用乙腈作提取溶劑內(nèi)標(biāo)物的絕對(duì)回收率為72%,甲醇為61%,乙醇為60%,試驗(yàn)結(jié)果見表3。從最后得到的待測(cè)溶液顏色來(lái)看,乙腈提取樣品后待測(cè)液為澄清透明的微黃色,甲醇和乙醇提取樣品后待測(cè)液為黃色,且乙醇提取樣品后待測(cè)液顏色最深,說(shuō)明乙腈起到了較好的去除色素的作用。綜合考慮,最后選擇乙腈作為提取溶劑。

表3 不同提取溶劑對(duì)內(nèi)標(biāo)物回收率的影響Table 3 Effect of different extraction solvents on the recovery rates of internal standard substances

現(xiàn)行國(guó)標(biāo)和文獻(xiàn)中常使用乙腈-水(9+1)[13-14]和乙腈-水(84+16)[15]作為提取溶劑。本試驗(yàn)首先用乙腈提取目標(biāo)物,發(fā)現(xiàn)乙腈與醬油完全分層,當(dāng)在乙腈中加入部分水時(shí),乙腈水提取溶劑會(huì)與醬油部分互溶,從而無(wú)法確定樣品的稀釋體積。因此,本試驗(yàn)采用純乙腈作為提取溶劑,渦旋5 min進(jìn)行充分提取,取得了較好的效果。

2.4 凈化方式的選擇

常用的真菌毒素提取液凈化方式為免疫親和柱凈化法[16-17]及固相萃取小柱凈化法[18]。這兩種方式的凈化效果雖然較好,但存在操作步驟繁瑣、消耗時(shí)間長(zhǎng)、成本較高等問題,不利于大批量樣品的處理。本試驗(yàn)采取液-液萃取的方法進(jìn)行凈化,在提取液中加入三氯甲烷對(duì)目標(biāo)物進(jìn)行萃取,利用分配系數(shù)差異將乙腈中的目標(biāo)物進(jìn)行轉(zhuǎn)移,起到凈化作用。試驗(yàn)比較了三氯甲烷為1,3,5,7 mL的凈化效率,當(dāng)采用外標(biāo)法定量時(shí),目標(biāo)物的回收率分別為60%、66%、75%、75%。因此,選擇三氯甲烷使用量為5 mL作為萃取用量。

2.5 基質(zhì)效應(yīng)及內(nèi)標(biāo)的選擇

本試驗(yàn)通過(guò)比較溶劑匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線和基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線的斜率來(lái)判定基質(zhì)效應(yīng)[19],按下式進(jìn)行計(jì)算:

當(dāng)ME<-20%時(shí),表現(xiàn)為離子抑制;當(dāng)-20%≤ME≤20%時(shí),表現(xiàn)為弱基質(zhì)效應(yīng);當(dāng)ME>20%時(shí),表現(xiàn)為離子增強(qiáng)。

結(jié)果表明,當(dāng)采用外標(biāo)法定量時(shí),ME為-47%;當(dāng)采用內(nèi)標(biāo)法定量時(shí),ME為-27%,均表現(xiàn)為基質(zhì)效應(yīng)抑制。

在食品理化分析時(shí),目標(biāo)物在前處理過(guò)程中會(huì)有不同程度的損失,在樣品中加入與目標(biāo)物化學(xué)性質(zhì)相近的同位素內(nèi)標(biāo),有助于校正樣品的前處理過(guò)程,同時(shí)也能校正儀器在進(jìn)樣時(shí)引起的誤差。全13C同位素內(nèi)標(biāo)與目標(biāo)物有相同的結(jié)構(gòu)和化學(xué)性質(zhì),且色譜行為一致,基質(zhì)效應(yīng)相同,在提取時(shí)加入穩(wěn)定同位素內(nèi)標(biāo)能夠反映樣品前處理的效率,校正進(jìn)樣體積誤差,對(duì)質(zhì)譜離子化效率進(jìn)行補(bǔ)償,因此本試驗(yàn)選擇13C18-Zearalenone作內(nèi)標(biāo),并采用基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線進(jìn)行定量。

2.6 線性關(guān)系、檢出限、定量限

對(duì)空白基質(zhì)系列標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)樣測(cè)定,繪制工作曲線,計(jì)算回歸方程。以定量離子信噪比S/N=3時(shí)對(duì)應(yīng)的濃度水平為檢出限,以定量離子信噪比S/N=10時(shí)對(duì)應(yīng)的濃度水平為定量限,結(jié)果見表4。結(jié)果表明,在所測(cè)線性范圍內(nèi),ZEN具有良好的線性關(guān)系,檢出限、定量限均優(yōu)于國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)。

表4 玉米赤霉烯酮標(biāo)準(zhǔn)品回歸方程、相關(guān)系數(shù)、檢出限及定量限Table 4 The regression equation, correlation coefficient, LOD and LOQ of ZEN

2.7 回收率及精密度

按試驗(yàn)方法進(jìn)行了3個(gè)水平的加標(biāo)回收試驗(yàn),每個(gè)加標(biāo)水平平行6次試驗(yàn),添加水平及結(jié)果見表5。結(jié)果表明,方法回收率為92.7%~96.0%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差小于3.0%,該方法具有良好的準(zhǔn)確度和精密度。

表5 回收試驗(yàn)結(jié)果(n=6)Table 5 The results of recovery test (n=6)

2.8 樣品的測(cè)定

對(duì)市售18批醬油以及原料用8批小麥、8批大豆按選定方法進(jìn)行測(cè)定,結(jié)果18批醬油均未檢出ZEN,3批小麥檢出ZEN(3.5~41.3 μg/kg),4批大豆檢出ZEN(8.2~22.8 μg/kg),均未超過(guò)GB 2761-2017規(guī)定的谷物及其制品中玉米赤霉烯酮的限量值60 μg/kg,說(shuō)明生產(chǎn)企業(yè)在原料把控和生產(chǎn)工藝上控制良好。

對(duì)5批空白基質(zhì)樣品添加標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行基質(zhì)加標(biāo)試驗(yàn),模擬陽(yáng)性醬油樣本,加標(biāo)水平為20 μg/kg,通過(guò)該方法進(jìn)行測(cè)定,回收率分別為91.5%、98.7%、99.2%、90.6%和96.3%。

3 結(jié)論

本試驗(yàn)建立了醬油中玉米赤霉烯酮的高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜檢測(cè)方法,樣品經(jīng)20 mL乙腈提取,5 mL三氯甲烷萃取凈化,用乙腈-水作流動(dòng)相進(jìn)行梯度洗脫,在負(fù)離子模式下進(jìn)行多反應(yīng)監(jiān)測(cè)掃描,內(nèi)標(biāo)法定量測(cè)定樣品中玉米赤霉烯酮的含量,該方法玉米赤霉烯酮在5~100 ng/mL濃度范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,回收率在90%以上,檢出限為0.1 μg/kg。該方法前處理簡(jiǎn)單、靈敏度高、重復(fù)性好,能有效地滿足醬油中玉米赤霉烯酮的測(cè)定。

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