張 三 唐姍姍
1.新鄭市人民醫(yī)院科檢驗科 (河南 新鄭 451100)
2.新鄭市城關(guān)鄉(xiāng)衛(wèi)生院檢驗科 (河南 新鄭 451100)
結(jié)核分枝桿菌(mycobacterium tuberculosis,MTB)感染可引發(fā)結(jié)核病,對患者生命安全構(gòu)成嚴(yán)重威脅。近年來,結(jié)核病發(fā)病率逐年上升,小部分結(jié)核病患者病情進(jìn)展為利福平耐藥結(jié)核,而大部分患者發(fā)展為多重耐藥結(jié)核,給治療增加難度[1]?,F(xiàn)階段,臨床對于MTB的檢測主要依靠藥物敏感度試驗及結(jié)核菌培養(yǎng)等,雖該方法準(zhǔn)確性好且操作成本較低,但培養(yǎng)周期較長,在此期間內(nèi)易延誤患者最佳治療時機(jī)[2]。隨著醫(yī)療技術(shù)的快速發(fā)展,實時熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(polymerase chain reaction,PCR)法在臨床上的應(yīng)用具有檢測速度快、檢查成本低等特點,可為臨床診斷MTB耐藥提供可靠依據(jù)[3]。鑒于此,本研究采用實施熒光定量PCR法分析MTB耐藥性,旨在探究其臨床應(yīng)用價值?,F(xiàn)報道如下。
1.1 一般資料選擇2018年10月至2020年11月我院收治的結(jié)核病患者84例,均符合《肺結(jié)核診斷和治療指南》[4]中疾病相關(guān)診斷標(biāo)準(zhǔn),本研究獲倫理委員會批準(zhǔn)。其中男45例,女39例;年齡19~69歲,平均年齡(44.58±3.61)歲。
1.2 方法(1)核酸提?。簩?0L核酸提取液加入核酸提取試管中,刮取少量菌落轉(zhuǎn)移至試管中,在核酸快速提取儀下振蕩10min,并將其置于95℃金屬浴內(nèi)10min,隨后取出并離心處理1min獲得核酸,用于擴(kuò)增操作。(2)檢測準(zhǔn)備及原理:對利福平、鏈霉素、異煙肼、阿米卡星、乙胺丁醇、莫西沙星等藥物的耐藥狀況進(jìn)行分析。按照待檢測樣本數(shù)量的5倍,準(zhǔn)備200L平蓋PCR薄壁管,分別從試劑盒中提取擴(kuò)增反應(yīng)液A/B/C/D/E,徹底融化后漩渦震蕩。按照每管25L分裝各擴(kuò)增反應(yīng)液至PCR薄壁管中,隨后將其轉(zhuǎn)移至PCR模板加樣區(qū)。向每個樣品中加入同一模板DNA 5L,保證每管總體積為30L。(3)PCR擴(kuò)增及結(jié)果的判斷:將PCR反應(yīng)管置于熒光PCR儀中,行擴(kuò)增操作,檢測結(jié)果由MTB耐藥基因檢測分析系統(tǒng)進(jìn)行輔助的判讀。
1.3 觀察指標(biāo)以羅氏藥敏比例法作為檢測MTB耐藥性的“金標(biāo)準(zhǔn)”,分析FQ-PCR法在MTB耐藥性中的應(yīng)用價值,包括靈敏度、特異度、準(zhǔn)確度、陽性預(yù)測值、陰性預(yù)測值。以n表示總例數(shù),a表示真陽性,b表示假陽性,c表示假陰性,d表示真陰性。靈敏度=a/(a+c),特異度=d/(b+d),準(zhǔn)確度=(a+d)/n,陽性預(yù)測值=a/(a+b),陰性預(yù)測值=d/(c+d)。
1.4 統(tǒng)計學(xué)方法采用SPSS 22.0軟件處理數(shù)據(jù),計數(shù)資料用百分比表示,采用χ2檢驗,F(xiàn)Q-PCR法診斷MTB耐藥性與羅氏藥敏比例法檢查結(jié)果的一致性使用kappa檢驗,kappa值≥0.75表示一致性良好,0.4~0.74表示一致性尚可,<0.4表示一致性不佳;P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
FQ-PCR法分析MTB耐藥性中各藥物靈敏度、特異度、陽性預(yù)測值比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);而準(zhǔn)確度及陰性預(yù)測值比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),見表1。kappa檢驗顯示:對阿米卡星檢測一致性不佳(kappa值為0.279);對利福平、異煙肼、莫西沙星及乙胺丁醇一致性尚可(kappa值分別為0.637、0.631、0.578、0.623);對鏈霉素一致性良好(kappa值為0.815)。
表1 FQ-PCR法在MTB耐藥性分析中的應(yīng)用價值
現(xiàn)階段,臨床對于結(jié)核病的治療主要采用藥物的方式,通常采用一線及二線抗癆藥物聯(lián)合使用,其中一線抗癆藥物包括利福平、鏈霉素、乙胺丁醇、異煙肼,可取得一定的效果,安全性高[5-6]。而二線抗癆藥物包括氟喹諾酮類、阿米卡星、卡那霉素類藥物,但單純用藥存在較高的風(fēng)險,加之不規(guī)則的錯誤的化療,使得藥物耐藥性大大上升,患者治療依從性明顯下降[7-8]。故對上述抗結(jié)核藥物耐藥性行積極的管理有助于更好的給出治療方案指導(dǎo)臨床治療。
既往傳統(tǒng)培養(yǎng)法在藥敏結(jié)果檢測中耗時較長,易延誤患者治療時機(jī)。近年來,分子診斷技術(shù)在MTB耐藥檢測中得到廣泛應(yīng)用,MTB耐藥的產(chǎn)生是因自身基因突變而導(dǎo)致[9]。因此,對某些基因片段發(fā)生突變在耐藥菌株中占較大比例時,可通過對基因片段進(jìn)行檢測判斷該菌株的耐藥情況。本研究結(jié)果顯示,F(xiàn)Q-PCR法分析MTB耐藥性中各藥物靈敏度、特異度、陽性預(yù)測值比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義,而準(zhǔn)確度及陰性預(yù)測值比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義。kappa檢驗顯示:對阿米卡星檢測一致性不佳(kappa值為0.279);對利福平、異煙肼、莫西沙星及乙胺丁醇一致性尚可(kappa值分別為0.637、0.631、0.578、0.623);對鏈霉素一致性良好(kappa值為0.815),提示FQ-PCR法在MTB耐藥性診斷中應(yīng)用價值較高,能夠檢出MTB對藥物的耐藥性,且一致性較強(qiáng)。究其原因可知FQ-PCR法具有檢測時間短、成本低、藥物檢測種類多等優(yōu)勢,能夠有效避免PCR污染等導(dǎo)致檢測結(jié)果差異等問題。本研究中FQ-PCR法對阿米卡星耐藥性檢出一致性不佳,較好說明該基因型檢測位點的耐藥監(jiān)測準(zhǔn)確性不高,或存在其他的耐藥基因位點的突變。另該方法對其他藥物耐藥性檢測雖靈敏度不高,或存在耐藥表型與基因型存在差異,可能與MTB表型耐藥不穩(wěn)定而發(fā)生改變相關(guān),亦或與部分突變?yōu)闊o意義突變等不會對MTB耐藥性造成影響[10]。
綜上所述,實施熒光定量PCR法在MTB耐藥性檢測中應(yīng)用價值較高,具有較好的應(yīng)用前景,可為臨床用藥提供指導(dǎo),值得推廣。