李曉娜,何苗,梁洪玥,史瑞雪,付鈺,顧宇婧,李艾凝,郭鳳
(中國醫(yī)科大學(xué) 1.附屬第四醫(yī)院藥學(xué)部,沈陽 110032;2.藥學(xué)院藥物毒理學(xué)教研室,沈陽 110122)
癲癇是由大腦神經(jīng)元異常放電引發(fā)的慢性腦部疾病,是最常見的神經(jīng)系統(tǒng)疾病之一。癲癇本質(zhì)上是“離子通道病”,即電壓門控和配體門控離子通道功能突變引發(fā)癲癇[1]。鈉、鉀、鈣等經(jīng)典離子通道在癲癇發(fā)病機(jī)制中的作用早已被證實(shí),隨著越來越多離子通道的結(jié)構(gòu)和功能被解析,研究者對新型離子通道研究也越來越深入,這為癲癇機(jī)制與治療的研究提供了新思路。
瞬時(shí)受體電壓(transient receptor potential,TRP)通道是位于細(xì)胞膜上的一組非選擇性陽離子通道。TRP通道的Melastatin亞家族,特別是瞬時(shí)受體電位通道7(transient receptor potential melastatin 7,TRPM7),在神經(jīng)系統(tǒng)廣泛表達(dá)。已有大量文獻(xiàn)表明,神經(jīng)退行性疾病如阿爾茨海默?。?]、帕金森?。?]和肌萎縮側(cè)索硬化癥[4]等的發(fā)生和發(fā)展都與TRPM7介導(dǎo)的病理過程有關(guān)。然而,目前對TRPM7在癲癇中的變化尚未闡明,在匹魯卡品(pilocarpine,PILO)誘導(dǎo)的癲癇持續(xù)狀態(tài)大鼠模型中發(fā)現(xiàn)TRPM7蛋白表達(dá)增加,抑制TRPM7可以減少神經(jīng)細(xì)胞死亡[5]。
細(xì)胞凋亡是半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶 3(caspase-3)介導(dǎo)的程序性細(xì)胞死亡[6],其是神經(jīng)疾病中神經(jīng)細(xì)胞死亡的主要發(fā)病機(jī)制[7]。研究[8-9]發(fā)現(xiàn)TRPM7參與調(diào)控凋亡以及神經(jīng)系統(tǒng)疾病的發(fā)生與發(fā)展。截至目前為止,TRPM7 是否參與PILO誘導(dǎo)的癲癇體外模型凋亡尚無報(bào)道。因此,本研究旨在闡明TRPM7在PILO誘導(dǎo)的癲癇模型凋亡中的作用,為癲癇發(fā)病機(jī)制靶點(diǎn)的探尋提供新角度與新思路。
1.1.1 細(xì)胞:小鼠腦神經(jīng)瘤細(xì)胞(Neuro-2A細(xì)胞),由中國科學(xué)院上海細(xì)胞生物學(xué)研究所提供。
1.1.2 試劑:PILO購自美國APE*BIO公司;CCK-8試劑盒、BCA蛋白濃度測定試劑盒和TUNEL細(xì)胞凋亡檢測試劑盒購自中國碧云天生物技術(shù)研究所;GAPDH上下游引物和TRPM7上下游引物購自上海生工生物工程股份有限公司;TRPM7 siRNA和GPtransfect-Mate轉(zhuǎn)染試劑購自蘇州吉瑪基因股份有限公司;擴(kuò)增、反轉(zhuǎn)錄試劑盒購自日本TaKaRa公司;兔抗caspase-3、兔抗Bcl-2相關(guān)X蛋白(Bax)、兔抗細(xì)胞色素C蛋白(cytochrome C,Cyt C)、兔抗β肌動(dòng)蛋白(β-actin)和辣根過氧化物酶標(biāo)記的山羊抗兔IgG二抗購自美國 Abcam 公司。
1.1.3 儀器:電泳儀購自美國Bio-Rad公司;凝膠成像分析儀購自以色列DNR生物影像系統(tǒng)有限公司;酶標(biāo)儀購自美國BIOTEK公司;熒光定量基因擴(kuò)增儀購自美國Thermo Fisher Scientific公司;CO2培養(yǎng)箱購自日本SANYO公司;倒置熒光顯微鏡購自日本Olympus公司。
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng)和轉(zhuǎn)染:
1.2.1.1 細(xì)胞培養(yǎng) 接種Neuro-2A細(xì)胞于含10%胎牛血清的DMEM高糖培養(yǎng)基中,5%CO2、37℃、飽和濕度培養(yǎng)箱培養(yǎng),當(dāng)細(xì)胞密度達(dá)80%以上時(shí)進(jìn)行消化傳代。
1.2.1.2 siRNA轉(zhuǎn)染 以1×105/孔 的細(xì)胞密度將Neuro-2A細(xì)胞接種于6孔板中,當(dāng)細(xì)胞密度達(dá)到80%左右時(shí)按照GP-transfect-Mate說明書進(jìn)行轉(zhuǎn)染。設(shè)置對照組、PILO模型組和PILO+siRNA組進(jìn)行實(shí)驗(yàn),其中對照組和PILO模型組轉(zhuǎn)染無序序列,PILO+siRNA組轉(zhuǎn)染TRPM7 siRNA。轉(zhuǎn)染48 h后,應(yīng)用終濃度為20 mmol·L-1的PILO處理PILO模型組和PILO+siRNA組,對照組加入等量培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24 h。siRNA無序序列(NC-siRNA):上游 5’-UUCUUCGAACGUGUCA CGUTT-3’,下 游 5’-ACGUGACACGUUCGGAGAAT T-3’;TRPM7 siRNA序列:上游5’-GGAGUAAGCAU GCAUAAAUTT-3’,下游5’-AUUUAUGCAUGCUUAC UCCTT-3’。
1.2.2 CCK-8法檢測細(xì)胞毒性:取處于對數(shù)生長期Neuro-2A細(xì)胞,消化后調(diào)整細(xì)胞濃度為 4×104/mL,接種100 μL 細(xì)胞懸液到 96 孔板于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。用不同濃度的PILO(0、2、4、16、64和128 mmol·L-1)處理24 h。細(xì)胞毒性活力(%)=[吸光度(加藥)-吸光度(空白)]/ [吸光度(對照)-吸光度(空白)] ×100。
1.2.3 蛋白質(zhì)印跡法檢測凋亡相關(guān)蛋白的表達(dá)水平:將Neuro-2A細(xì)胞接種于6孔板中,當(dāng)細(xì)胞密度達(dá)到80%左右時(shí)進(jìn)行給藥處理。藥物處理結(jié)束后,RIPA試劑提取細(xì)胞總蛋白,BCA法測定蛋白濃度。以30 μg/孔進(jìn)行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳,電泳條件為70 V恒壓30 min,110 V恒壓120 min;用濕轉(zhuǎn)法將分離的目標(biāo)蛋白完全轉(zhuǎn)移至聚偏氟乙烯膜(polyvinylidene fluoride,PVDF)上,轉(zhuǎn)膜條件為300 mA恒流120 min;并于5%脫脂奶粉封閉1.5 h。分別加入caspase-3(1 ∶1 000)、Bax(1 ∶10 000)、Cyt C(1 ∶5 000)和 β-actin(1 ∶10 000)一抗,4 ℃孵育過夜。加相應(yīng)的辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗,4 ℃孵育1.5 h。加化學(xué)發(fā)光試劑,避光顯影,曝光拍照。以β-actin作為內(nèi)參,采用 Image J 圖像分析軟件分析各條帶灰度值。
1.2.4 實(shí)時(shí)定量PCR法檢測基因表達(dá):將Neuro-2A細(xì)胞接種于6孔板中,當(dāng)細(xì)胞密度達(dá)到80%左右時(shí)進(jìn)行給藥處理。藥物處理結(jié)束后,應(yīng)用TRIzol法提取細(xì)胞總RNA,并應(yīng)用酶標(biāo)儀檢測RNA純度,以光密度(optical density,OD)260/OD280值在1.8~2.2為合格。按照PrimeScriptTMRT Master Mix試劑盒逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA。按照TB Green?Premix Ex TaqTMⅡ說明書以cDNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,擴(kuò)增條件及參數(shù)為95℃預(yù)變性60 s;95 ℃變性15 s,57 ℃退火30 s,72 ℃延伸45 s,重復(fù)40個(gè)循環(huán)。以GAPDH為內(nèi)參基因,應(yīng)用 2-ΔΔCt法計(jì)算目的基因的相對表達(dá)量。相關(guān)序列見表1。
表1 引物序列Tab.1 Sequences of different primers
1.2.5 TUNEL染色:將Neuro-2A細(xì)胞接種于6孔板中,當(dāng)細(xì)胞密度達(dá)到80%左右時(shí)按1.2.1.2進(jìn)行處理。給藥結(jié)束后,嚴(yán)格按照TUNEL染色明書進(jìn)行染色,DAPI復(fù)染細(xì)胞核。在熒光顯微鏡下觀察成像,TUNEL陽性細(xì)胞為綠色,隨機(jī)選取4個(gè)視野觀察凋亡情況。采用 Image J 圖像分析軟件分析。
采用GraphPad Prism 6 進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,數(shù)據(jù)以表示,2組比較采用t檢驗(yàn),多組數(shù)據(jù)比較采用單因素方差分析,P< 0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
CCK-8實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,不同濃度的PILO作用于Neuro-2A細(xì)胞24 h后,隨著藥物濃度升高,細(xì)胞存活率下降,并通過計(jì)算得到PILO的半數(shù)抑制濃度(half maximal inhibitory concentration,IC50)為18.27 mmol·L-1,見圖1。應(yīng)用20 mmol·L-1的PILO進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
圖1 不同濃度PILO對Neuro-2A細(xì)胞活力的影響Fig.1 Cell viability in different concentrations of PILO-treated Neuro-2A cells
應(yīng)用20 mmol·L-1PILO處理Neuro-2A細(xì)胞24 h后,與對照組相比,凋亡相關(guān)蛋白caspase-3、Bax和Cyt C表達(dá)水平明顯升高(P< 0.05),見圖2。提示應(yīng)用20 mmol·L-1PILO處理Neuro-2A細(xì)胞24 h后,凋亡發(fā)生。因此,應(yīng)用20 mmol·L-1PILO處理Neuro-2A細(xì)胞24 h進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
圖2 PILO處理Neuro-2A細(xì)胞不同時(shí)間后凋亡相關(guān)蛋白表達(dá)Fig.2 The expression of apoptotic-related proteins in Neuro-2A cells induced by PILO at different times through Western blotting
應(yīng)用PILO處理24 h后,與對照組(7.285%±1.587%)相比,PILO模型組TRPM7mRNA表達(dá)(16.700%±1.587%)顯著增加(P< 0.000 1),見圖3。提示PILO處理Neuro-2A細(xì)胞24 h后,TRPM7表達(dá)增加。
圖3 PILO處理Neuro-2A細(xì)胞中TRPM7 mRNA表達(dá)Fig.3 The mRNA expression of TRPM7 in the PILO-treated group
應(yīng)用PILO處理Neuro-2A細(xì)胞24 h后,與PILO模型組相比,PILO+siRNA組凋亡相關(guān)蛋白caspase-3,Bax和Cyt C表達(dá)顯著下降(均P< 0.05),見圖4,表明敲除TRPM7基因后,凋亡相關(guān)蛋白表達(dá)下調(diào)。
圖4 干擾TRPM7對PILO誘導(dǎo)的細(xì)胞模型凋亡相關(guān)蛋白的影響Fig.4 Effect of interference with TRPM7 on apoptotic-related proteins in the PILO-treated cell model
應(yīng)用TUNEL染色后,與對照組相比,PILO誘導(dǎo)Neuro-2A細(xì)胞凋亡率顯著增加(P< 0.01);與PILO模型組相比,PILO+siRNA組細(xì)胞凋亡率顯著減少(P<0.05),見圖5。
圖5 干擾TRPM7對PILO誘導(dǎo)的細(xì)胞模型凋亡形態(tài)學(xué)的影響Fig.5 Effect of interference with TRPM7 on the apoptotic morphology of the cell model induced by PILO by TUNEL staining
癲癇是一種常見的神經(jīng)系統(tǒng)疾病,其具體發(fā)生機(jī)制仍未可知。研究[1]表明,離子通道參與癲癇的發(fā)生并發(fā)揮重要作用。TRPM7是非選擇性陽離子通道,介導(dǎo)多種神經(jīng)系統(tǒng)疾病的發(fā)生與發(fā)展。目前,許多離子通道都被證明參與了癲癇的發(fā)生,而TRPM7在癲癇中的作用研究較少。TRPM7抑制劑降低了癲癇發(fā)作誘導(dǎo)的TRPM7過度表達(dá)、細(xì)胞內(nèi)鋅積累和活性氧生成;氧化應(yīng)激、神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞活化和血腦屏障破壞也受到抑制。此外,TRPM7抑制劑可顯著降低癲癇發(fā)作后的凋亡神經(jīng)元死亡[5]。然而,TRPM7在癲癇體外模型中對細(xì)胞死亡的作用尚未報(bào)道。
凋亡是一種經(jīng)典的細(xì)胞死亡方式,是帕金森病、阿爾茨海默病和亨廷頓病等慢性神經(jīng)退行性疾病中神經(jīng)細(xì)胞死亡的主要原因[7]。研究[10]發(fā)現(xiàn),應(yīng)用特異性siRNA敲除TRPM7或采用TRPM7非特異性抑制劑2-氨基乙基聯(lián)苯基硼酸酯和釓(Gd3+)作用于高糖處理的NS20Y神經(jīng)細(xì)胞細(xì)胞后,凋亡受到抑制;而過表達(dá)TRPM7基因后,凋亡增加;這表明TRPM7參與凋亡發(fā)生。在帕金森病模型中應(yīng)用TRPM7特異性microRNA(miR-22)抑制TRPM7表達(dá)會(huì)減少細(xì)胞凋亡[3]。到目前為止,癲癇體外模型中TRPM7與凋亡的關(guān)系仍不清楚。
本研究首次表明TRPM7參與介導(dǎo)PILO體外模型的凋亡。采用蛋白質(zhì)印跡法和實(shí)時(shí)熒光定量PCR發(fā)現(xiàn)PILO誘導(dǎo)的體外癲癇模型導(dǎo)致凋亡相關(guān)蛋白(caspase-3、Bax和Cyt C)和TRPM7基因表達(dá)上調(diào),而沉默TRPM7引起凋亡相關(guān)蛋白表達(dá)下降,表明TRPM7參與介導(dǎo)PILO體外模型的凋亡。本研究為癲癇機(jī)制的闡明與治療提供了新靶點(diǎn),但在癲癇狀態(tài)下,TRPM7調(diào)控凋亡的具體機(jī)制仍需進(jìn)一步探究。
中國醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào)2022年4期