嚴(yán)栩蘅,廖栩崢,何建國,尹 斌,李朝政
(1.中山大學(xué) 海洋科學(xué)學(xué)院,珠海 519082; 2.中山大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,廣州 510275;3.南方海洋科學(xué)與工程廣東省實(shí)驗(yàn)室(珠海),珠海 519082;4.嶺南現(xiàn)代農(nóng)業(yè)科學(xué)與技術(shù)廣東省實(shí)驗(yàn)室茂名分中心,茂名 525099)
凡納濱對(duì)蝦(Litopenaeusvannamei),是我國及全球重要的水產(chǎn)養(yǎng)殖物種之一[1]。病害是制約我國對(duì)蝦業(yè)健康可持續(xù)發(fā)展的主要瓶頸,其中以病毒性疾病危害最嚴(yán)重。白斑綜合征病毒(white spot syndrome virus,WSSV)和十足類虹彩病毒1(decapod iridescent virus 1,DIV1)是引起對(duì)蝦病毒性病害的病毒。WSSV主要感染起源于外胚層和中胚層的組織細(xì)胞,造成不同組織廣泛的變性壞死[2],其中以鰓、胃、頭胸甲和附肢的表皮細(xì)胞最敏感。病蝦患病初期常靜臥水底,甲殼上有白斑,出現(xiàn)空腸;患病后期體色泛紅,對(duì)外界反應(yīng)遲鈍,死亡率極高,發(fā)病后3~14 d內(nèi)死亡率可達(dá)100%[3-8]。DIV1是近年來在我國新發(fā)現(xiàn)的一種DNA病毒,主要感染鰓、肝胰臟、周足以及肌肉的造血組織和血細(xì)胞,有報(bào)道稱其還會(huì)感染來自外胚層的表皮和淋巴器官[9]。病蝦通常表現(xiàn)出空腸,肝胰腺萎縮,體色變淺,軟殼等癥狀,患病后期喪失游泳能力[9-11]。此外,DIV1感染的凡納濱對(duì)蝦有時(shí)會(huì)出現(xiàn)游泳足附近的甲殼發(fā)黑的癥狀[12]。
凝血系統(tǒng)是生物先天免疫的重要組成部分,通過形成穩(wěn)定的凝塊封閉傷口防止體液流失[13-14],也可以與其它免疫反應(yīng)協(xié)同參與宿主免疫[15-16]。凡納濱對(duì)蝦受到外來病原侵染時(shí),鈣依賴性谷氨酰胺轉(zhuǎn)移酶(transglutaminase,TG)從血細(xì)胞中釋放,與血淋巴中的凝固蛋白(clotting protein,CP)形成交聯(lián)聚集體,避免外界微生物從傷口侵入[17-18]。目前在凡納濱對(duì)蝦中已鑒定出兩種TG,分別為I型(LvTGI)和II型(LvTGII)[19-21]。
甲殼類TG除參與凝血功能外,還在參與宿主免疫中發(fā)揮著重要作用。已有研究顯示,TG在中華絨螯蟹(Eriocheirsinensis)和凡納濱對(duì)蝦中參與了抗副溶血性弧菌(Vibrioparahaemolyticus)[22]和溶藻弧菌(Vibrioalginolyticus)[23]等細(xì)菌的免疫反應(yīng)。本研究以凡納濱對(duì)蝦為研究對(duì)象,通過qPCR和RNA干擾等方法,探究對(duì)蝦LvTGI、LvTGII等凝血系統(tǒng)相關(guān)基因在抗病毒免疫反應(yīng)中的作用。
凡納濱對(duì)蝦養(yǎng)殖于嶺南現(xiàn)代農(nóng)業(yè)科學(xué)與技術(shù)廣東省實(shí)驗(yàn)室茂名基地,對(duì)蝦規(guī)格為每尾5 g左右,實(shí)驗(yàn)前在鹽度為2.5%的人工海水中暫養(yǎng)7 d以減少環(huán)境應(yīng)激,每天投喂商品化的對(duì)蝦飼料3次,每天換水1次。
1.2.1 WSSV和DIV1人工感染
取WSSV 或DIV1感染后的病蝦肌肉組織1 g置于勻漿器中,加入10 mL無菌PBS,勻漿后使用0.22 μm濾膜進(jìn)行過濾,濾液即為病毒原液。根據(jù)絕對(duì)定量測(cè)定病毒濃度,使用無菌PBS稀釋濃度后用于人工感染實(shí)驗(yàn)。經(jīng)測(cè)定WSSV的感染濃度為3.62×103copies/μL,DIV1感染濃度為2.88×102copies/μL,實(shí)驗(yàn)中每尾蝦注射50 μL病毒稀釋液。
將實(shí)驗(yàn)用蝦分為2個(gè)實(shí)驗(yàn)組和1個(gè)對(duì)照組,每組各90尾對(duì)蝦,在養(yǎng)殖桶中暫養(yǎng)72 h后,轉(zhuǎn)移至玻璃箱中進(jìn)行WSSV和DIV1人工感染實(shí)驗(yàn)。采用肌肉注射感染方法,使用1 mL胰島素注射器將稀釋后的WSSV和DIV1 病毒液注入凡納濱對(duì)蝦第二腹肢肌肉內(nèi),對(duì)照組注入無菌PBS,每尾蝦注射50 μL。注射感染病毒后每隔12 h采集對(duì)蝦鰓和肝胰腺組織存放于RNAlater中,于-80°C保存,用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)檢測(cè)。
1.2.2 凝血現(xiàn)象觀察
凡納濱對(duì)蝦感染病毒后,使用2 mL注射器每隔12 h采集1 mL對(duì)蝦血淋巴(不添加ACD抗凝劑),置于2 mL離心管中,于4 °C保存,用于拍照觀察。
1.2.3 總RNA提取及cDNA合成
將保存于RNA later中的凡納濱對(duì)蝦各組織提取總RNA,所用相關(guān)器皿及試劑提前做相應(yīng)處理去除RNase污染。稱取0.5 g對(duì)蝦鰓組織或肝胰腺組織放入液氮預(yù)冷的研缽中,加入液氮研磨至粉末狀,轉(zhuǎn)入2 mL離心管中,使用RNeasy Mine 試劑盒(Qiagen,Germany)提取總RNA,提取方法如說明書所示。提取RNA經(jīng)過Bioanalyzer 2100進(jìn)行濃度與純度測(cè)定,之后使用1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)RNA完整性。使用SYBR PrimeScript RT-PCR Kit(Perfect Real Time)試劑盒合成cDNA。
1.2.4 定量PCR(qPCR)
根據(jù)LvCP、LvTGI和LvTGII的mRNA序列設(shè)計(jì)針對(duì)上述基因的特異性qPCR引物,以EF-1α作為內(nèi)參基因。qPCR反應(yīng)體系:5 μL SYBR Mix,0.2 μL正向/反向特異性引物,3.6 μL RNase-free H2O,總體系為10 μL。反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性2 min;95 ℃變性15 s,60 ℃退火15 s,40個(gè)循環(huán);95 ℃反應(yīng)5 s,60 ℃反應(yīng)1 min以獲得熔解曲線;最后設(shè)定50 ℃降溫30 s。每份樣品進(jìn)行3次重復(fù),用Livak法(2-ΔΔCt)對(duì)結(jié)果進(jìn)行分析計(jì)算mRNA相對(duì)表達(dá)量。引物序列見表1。
1.2.5 dsRNA合成
重新設(shè)計(jì)PCR引物擴(kuò)增LvTGI和LvTGII后回收片段連接至pMD-19T載體上,將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化到大腸桿菌DH5α菌株中,挑取單菌落進(jìn)行菌落PCR驗(yàn)證,重組質(zhì)粒送至公司進(jìn)行測(cè)序,確認(rèn)序列來自LvTGI和LvTGII后作為dsRNA第一鏈合成模板。設(shè)計(jì)含有T7序列的特異性引物,按照T7 RiboMAX Express RNAi System(promega)試劑盒說明書合成dsRNA。dsRNA引物序列同表1。
表1 本文所用引物信息
1.2.6 RNA干擾(RNAi)及死亡率統(tǒng)計(jì)
將實(shí)驗(yàn)用蝦分為2個(gè)實(shí)驗(yàn)組和1個(gè)對(duì)照組,每組各100尾。前期在養(yǎng)殖桶中暫養(yǎng)72 h后,轉(zhuǎn)移至玻璃箱中進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。每尾蝦注射10 μg dsRNA用于干擾目的基因的表達(dá)。dsRNA注射后48 h,采集鰓組織用于提取總RNA。采用qPCR方法對(duì)LvTGI和LvTGII的表達(dá)量進(jìn)行分析,驗(yàn)證RNAi的干擾效率。注射dsRNA 48 h后,采用同1.2.1的方法進(jìn)行WSSV和DIV1人工感染。每隔4 h進(jìn)行一次觀察計(jì)數(shù),統(tǒng)計(jì)7 d內(nèi)的累積死亡率。檢測(cè)樣品制備方法見1.2.3,檢測(cè)干擾效率的qPCR引物同表1。
1.2.7 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析
感染病毒后,每隔12 h抽取對(duì)蝦血淋巴,觀察血淋巴的凝固情況。正常情況下,對(duì)蝦血淋巴從體內(nèi)抽出后,幾分鐘內(nèi)就會(huì)從液體狀轉(zhuǎn)變成不可流動(dòng)的膠體狀。在WSSV及DIV1感染后12、24 h血淋巴均能凝固[圖1(a)和(b)],在WSSV及DIV1感染60 h后,對(duì)蝦血淋巴不再凝固,保持可流動(dòng)的液體狀態(tài)[圖1(e)和(f)]。DIV1對(duì)血淋巴凝固的影響強(qiáng)于WSSV,在感染36 h后血淋巴不再呈膠體狀[圖1(c)(d)(e)和(f)],而WSSV在感染60 h后才出現(xiàn)不凝固的現(xiàn)象[圖1(e)和(f)]。結(jié)果表明,兩種病毒感染均會(huì)影響凡納濱對(duì)蝦血淋巴凝固。
(a)~(f)分別為感染W(wǎng)SSV和DIV1在12 h(a)、24 h(b)、36 h(c)、48 h(d)、60 h(e)和72 h(f)時(shí)觀察血淋巴凝固的情況,最左側(cè)為注射PBS的對(duì)照組。
人工感染W(wǎng)SSV和DIV1后,采用qPCR方法檢測(cè)凡納濱對(duì)蝦凝血系統(tǒng)相關(guān)基因LvCP、LvTGI和LvTGII分別在鰓組織和肝胰腺中的表達(dá)量。結(jié)果顯示:在鰓組織中,LvCP與LvTGI的表達(dá)整體受到抑制。LvCP在WSSV感染12 h到60 h內(nèi)的表達(dá)量顯著下調(diào)[圖2(a)]。LvTGI在兩種病毒感染24 h后的表達(dá)量都顯著下降[圖2(b)]。LvTGII在WSSV感染后的表達(dá)量顯著上調(diào),在72 h時(shí)表達(dá)量最高,是對(duì)照組的17倍,而在DIV1感染24 h到48 h內(nèi)顯著下調(diào)[圖2(c)]。在肝胰腺中,LvCP在WSSV感染后表達(dá)量顯著上調(diào),在DIV1感染后的表達(dá)趨勢(shì)先上升后下降[圖2(d)]。LvTGI在兩種病毒感染24 h后的表達(dá)量均顯著下調(diào)[圖2(e)]。值得注意的是,LvTGII在肝胰腺中的表達(dá)情況與在鰓組織中相反,在WSSV感染12 h到48 h內(nèi)的表達(dá)趨勢(shì)下降,而在DIV1感染后表達(dá)量顯著上調(diào)[圖2(f)]。結(jié)果證實(shí)病毒感染會(huì)影響凡納濱對(duì)蝦凝血系統(tǒng)相關(guān)基因的表達(dá),推測(cè)凡納濱對(duì)蝦TG是病毒與凝血系統(tǒng)相互作用的靶點(diǎn)。
(a)~(c)分別為LvCP、LvTGI、LvTGII在鰓組織中的表達(dá)情況;(d)~(f)分別為LvCP、LvTGI、LvTGII在肝胰腺中的表達(dá)情況。* P<0.05,** P<0.01,*** P<0.001。
為了進(jìn)一步探究凡納濱對(duì)蝦凝血相關(guān)基因TG是否參與抗病毒免疫反應(yīng),采用RNAi方法敲降LvTGI和LvTGII,48 h后人工注射WSSV或DIV1,統(tǒng)計(jì)累積死亡率情況。qPCR結(jié)果顯示,RNA干擾后LvTGI和LvTGII的表達(dá)量都顯著低于對(duì)照組,表明dsRNA能夠有效地敲降LvTGI和LvTGII基因[圖3(a)]。敲降LvTGI和LvTGII后的蝦血呈明顯的流動(dòng)液體狀[圖3(b)],進(jìn)一步證實(shí)了LvTGI和LvTGII為凝血系統(tǒng)中的關(guān)鍵基因。對(duì)病毒感染后的累積死亡率進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,敲降LvTGI和LvTGII后的患病對(duì)蝦累積死亡率顯著高于其對(duì)照組,且敲降LvTGII比敲降LvTGI對(duì)病毒感染后死亡情況的影響程度更大[圖3(c)(d)和(e)]。結(jié)果表明,敲降凝血相關(guān)基因(LvTGI和LvTGII)干擾了血淋巴凝固及增加了對(duì)蝦對(duì)WSSV和DIV1的易感性。
(a)~(e)分別為注射dsRNA后,鰓組織中RNAi干擾效率檢測(cè)(a)、敲降LvTGI和LvTGII 48 h后的凝血現(xiàn)象觀察(b)、單獨(dú)敲降LvTGI和LvTGII后對(duì)蝦死亡情況(c)、敲降LvTGI和LvTGII后感染W(wǎng)SSV對(duì)蝦累積死亡率(d)、敲降LvTGI和LvTGII后感染DIV1對(duì)蝦累積死亡率(e);* P<0.05,** P<0.01,*** P<0.001。
大部分無脊椎動(dòng)物擁有開放式循環(huán)系統(tǒng),血淋巴通過開放式循環(huán)系統(tǒng)在各個(gè)組織間流動(dòng),其在運(yùn)輸氧氣、傳遞信號(hào)、修復(fù)損傷、抵御病原入侵等方面發(fā)揮至關(guān)重要的作用。血淋巴凝結(jié)通常指無脊椎動(dòng)物中由多種蛋白參與的一類復(fù)雜生物學(xué)過程,其生物學(xué)效應(yīng)為使得流動(dòng)的血淋巴變成不能流動(dòng)的膠凍狀凝塊。因?yàn)槭情_放式循環(huán)系統(tǒng),無脊椎動(dòng)物相比脊椎動(dòng)物更加依賴血淋巴來維持體液穩(wěn)態(tài)和抵御由體表創(chuàng)傷引起的病原入侵。本研究主要探討了兩種水產(chǎn)DNA病毒(WSSV和DIV1)感染對(duì)宿主(對(duì)蝦)血淋巴凝結(jié)的影響,以及對(duì)蝦凝血相關(guān)基因在抵御病毒感染過程中的作用。
對(duì)蝦血淋巴可能是多種不同病原感染后的共同作用位點(diǎn)。我們發(fā)現(xiàn)凡納濱對(duì)蝦感染W(wǎng)SSV或DIV1后都會(huì)出現(xiàn)血淋巴凝固被抑制或不凝固的現(xiàn)象。已有研究報(bào)道,凡納濱對(duì)蝦感染桃拉綜合征病毒(taura syndrome virus, TSV)后也會(huì)出現(xiàn)血淋巴凝固不良的現(xiàn)象[24],哈維弧菌(Vibrioharveyi)感染或其細(xì)胞外產(chǎn)物同時(shí)會(huì)導(dǎo)致血淋巴不凝結(jié)的現(xiàn)象[25]。這些報(bào)道表明,血淋巴是凡納濱對(duì)蝦免疫反應(yīng)的部位之一,在不同病原感染過程中可能發(fā)揮重要的作用,病原感染會(huì)不同程度地破壞或抑制血淋巴正常凝集功能。
病毒感染會(huì)導(dǎo)致血淋巴凝固異常,表明凝血相關(guān)基因的表達(dá)可能會(huì)受到病毒感染的影響,凝血系統(tǒng)與抗病毒免疫之間存在關(guān)聯(lián)性。在WSSV和DIV1感染下,LvCP在鰓組織中的表達(dá)量被明顯抑制,而在肝胰腺中的表達(dá)量呈現(xiàn)先上升后下降的現(xiàn)象。Yeh等[26]發(fā)現(xiàn)在斑節(jié)對(duì)蝦CP在鰓組織中表達(dá)量較高,而在肝胰腺中表達(dá)量較低。綜上結(jié)果推測(cè),在病毒感染后不同組織的CP響應(yīng)感染的程度不同。然而,當(dāng)前我們?nèi)圆恢肋@種上調(diào)是否是主動(dòng)應(yīng)對(duì)感染以維持血淋巴的正常功能,以及下調(diào)是否是由病毒感染出現(xiàn)的被動(dòng)行為(抑制表達(dá))。LvTGI在兩種病毒感染后,在鰓組織和肝胰腺組織均被顯著抑制,因此,LvTGI可能是探究宿主基因響應(yīng)這兩種病毒感染是否是被動(dòng)行為的重要候選基因。LvTGII在受到病毒刺激后,在不同部位均有表達(dá)量上調(diào)的情況出現(xiàn),然而,LvTGII在面對(duì)不同病毒感染時(shí)的表達(dá)模式存在差異:WSSV刺激后,LvTGII在鰓組織中表達(dá)量顯著上調(diào),而在肝胰腺中的表達(dá)量則先下降,后上升;DIV1刺激后,LvTGII在鰓組織的表達(dá)中受到抑制,而在肝胰腺中則顯著上調(diào)表達(dá)。已有研究顯示,WSSV主要感染鰓組織與上皮細(xì)胞[27],DIV1主要感染對(duì)蝦血細(xì)胞與肝胰腺等[28],推測(cè)病毒感染后LvTGII表達(dá)量變化可能與病毒侵染部位有關(guān),具體機(jī)制有待深入研究。
LvTGI和LvTGII是凡納濱對(duì)蝦TG的兩種亞型,為了驗(yàn)證TG的免疫作用,使用RNAi敲降LvTGI和LvTGII,并統(tǒng)計(jì)敲降后對(duì)蝦感染病毒后的死亡率情況。抑制LvTGI和LvTGII表達(dá)均會(huì)出現(xiàn)血淋巴明顯不凝固的現(xiàn)象,表明凡納濱對(duì)蝦LvTGI和LvTGII都是凝血系統(tǒng)的關(guān)鍵基因。在感染兩種病毒后,敲降LvTGI和LvTGII的對(duì)蝦都出現(xiàn)了累積死亡率上升的情況,且敲降LvTGII對(duì)死亡率的影響比敲降LvTGI更明顯。已有報(bào)道表明TG在抗病免疫中起到了積極作用:Maningas等[29]發(fā)現(xiàn)在日本囊對(duì)蝦(Marsupenaeusjaponicus)中敲降TG會(huì)加速感染W(wǎng)SSV對(duì)蝦的死亡。而Fagutao等[30]發(fā)現(xiàn)TG的沉默會(huì)導(dǎo)致兩種抗菌肽(甲殼素和溶菌酶)的表達(dá)量顯著下調(diào),表明TG參與某些抗菌肽的表達(dá)調(diào)控。結(jié)果明確了凡納濱對(duì)蝦LvTGI和LvTGII均參與了抗病毒免疫反應(yīng)。然而,在兩種病毒感染下,LvTGI在不同組織中的表達(dá)量均受到抑制,關(guān)于LvTGI參與免疫反應(yīng)的機(jī)制還需進(jìn)一步研究。
病毒往往需要克服甚至破壞宿主抗病毒免疫來獲得成功感染。WSSV和DIV1均能破壞對(duì)蝦血淋巴凝集反應(yīng),且敲降凝血關(guān)鍵基因顯著增加了對(duì)蝦對(duì)病毒的易感性。因此,我們推測(cè)對(duì)蝦血淋巴的凝固作用可能與宿主抗病毒免疫反應(yīng)密切相關(guān)。本研究為進(jìn)一步解析凝血系統(tǒng)參與宿主抗病毒免疫反應(yīng)的機(jī)理奠定了基礎(chǔ)。