劉嘯宇，后夢情，程安琪，胡傳俊，姚 坤，吳 蕭

（宿州學院生物與食品工程學院，安徽宿州 234200）

農桿菌介導法是目前轉化雙子葉植物最為廣泛使用的方法之一，該方法簡單，轉化機制明確、周期短，同時因轉入基因的拷貝數(shù)少，因此大大地降低了因同源抑制而產生基因沉默的可能性[1]。同時，該技術具有轉育周期較短、遺傳性狀較為穩(wěn)定、變異幅度較小、對農藝和經濟性狀干擾較少等特點，已成為我國農作物進行外源基因導入時最常用的技術手段[2-3]。但同時也面臨一些重要的技術問題，如轉化效率低和轉化結果的未知性和不可控性等。為了進一步了解根癌農桿菌T-DNA 轉運的分子機制，探討是否可以通過提高T- 復合物招募蛋白VBP 在農桿菌細胞內的表達量來提高T-DNA 的轉化效率，這在植物轉基因方面的應用具有重要意義。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

1.1.1 所用菌株

Agrobacterium tumefaciensC58，E.coliDH5α，實驗室保存，菌液與70%的甘油等體積保存在凍存管中，凍存于-75 ℃冰箱中。

1.1.2 所用質粒

Prset-a，具有T7 啟動子，實驗室保存；pegfp-n1，含有egfp基因的質粒，實驗室保存；prset-agfp1，Atu4856 基因上游495 bp 序列，帶上標記基因gfp，插入啟動子已除去的prset-a 質粒，構建。

1.1.3 所用引物

所使用的引物信息（劃線部分為酶切位點） 見表1。

表1 所使用的引物信息（劃線部分為酶切位點）

1.2 試驗方法

1.2.1 用聚合酶鏈式反應擴增帶有標記基因的Atu4856啟動子序列

（1） 擴增495 bp 的啟動子序列。以Pv1、Pv2 為引物，BamHⅠ酶切位點在引物Pv1 上，配制反應體系進行PCR 反應，結束后，進行瓊脂糖凝膠電泳，并回收產物[4-5]。

（2） 聚合酶鏈式反應擴增標記基因——gfp。以Pgfp2，Pg2 為引物，以質粒pegfp-n1 為模板，BamHⅠ酶切位點在引物Pg2 上，待反應結束后，回收PCR產物，步驟同1.2.1 步驟（1）。

（3） 擴增Atu4856 啟動子帶標記基因的全長序列。將1.2.1 中（1） （2） 步驟的產物混合，以Pv1 和Pg2 為引物，配置反應體系進行擴增[6-7]，產物回收，步驟同1.2.1 步驟（1）。

重疊延伸PCR 的過程和體系見圖1，PCR 反應的體系見表2。

圖1 重疊延伸PCR 的過程和體系

表2 PCR 反應的體系/μL

1.2.2 提取大腸桿菌prset- a 質粒

構建啟動子探針載體的基本質粒prset-a 見圖2。

1.2.3 PCR 擴增得到不含T7 啟動子的prset- a 質粒

在T7 啟動子基因序列的兩端設計引物P1 和P2，均含有BamHⅠ限制性位點。同時，以prset-a質粒為擴增模板，從prset-a 質粒中去除T7 啟動子，反應體系如表2 所述。PCR 反應結束后，PCR 產物回收步驟同1.2.1 步驟（1）。

1.2.4 DNA 的酶切、連接、轉化及重組子的篩選

（1） 酶切以綠色熒光基因（gfp） 為報告基因的Atu4856 啟動子序列。用BamHⅠ酶切含gfp的Atu4856 啟動子序列。按照酶供應商提供的說明進行消化。按照表3 添加消化反應系統(tǒng)。消化反應體系置于37 ℃恒溫水浴中水浴加熱3 h。以非酶切序列為對照，用0.8%瓊脂糖凝膠電泳鑒定酶產物，用試劑盒回收產物，并將其保存在-20 ℃條件下備用[8]。

酶切體系見表3。

表3 酶切體系/μL

（2） 去磷酸化和空載體酶切。用BamHⅠ酶切無T7 啟動子prset-a 的PCR 產物。消化反應體系按表3混合，37 ℃下保溫3.5 h。電泳后回收1% （m/V）瓊脂糖凝膠，以防出現(xiàn)載體自連的現(xiàn)象[9]，將按照表4 中體系進行載體去磷酸化。

載體去磷酸化體系見表4。

表4 載體去磷酸化體系/μL

（3） 連接。按照表5 所示的連接體系，將BamHⅠ酶切后的目的序列用T4 DNA Ligase 連接到BamHⅠ酶切后并去除磷酸化的載體上，于4 ℃下過夜連接，用于轉化。

連接體系見表5。

表5 連接體系/μL

（4） 轉化。將連接產物轉化大腸桿菌DH5α 感受態(tài)細胞。

（5） 重組子的篩選。挑取單菌落，用LB 培養(yǎng)基37 ℃下培養(yǎng)，提取質粒，接著用BamHⅠ酶切、鑒定[10]。將與目的條帶大小相同的陽性克隆片段進行測序，命名含有Atu4856 啟動子的重組質粒，即prsetagfp1，并將此菌種進行保存。

（6） 檢測探針載體的轉錄活性。挑取單菌落，用LB 培養(yǎng)基培養(yǎng)，在對數(shù)生長期時，對菌液進行離心、沉淀清洗，制片，在放大倍數(shù)為×400 的倒置熒光顯微鏡下觀察是否有熒光。

2 結果與分析

2.1 帶有gfp 基因的Atu4856 啟動子序列擴增

以pegfp-n1 質粒為模板，經PCR 特異性擴增獲得大小約750 bp 的綠色熒光蛋白基因（gfp） （圖2）。設計搭橋PCR 引物，通過重疊延伸PCR，將gfp基因連接到Atu4856 啟動子序列（圖3），形成大小約1 225 bp 的嵌合基因片段，作為其是否具有啟動子基因轉錄活性的報告基因。

PCR 擴增gfp基因電泳圖見圖2，PCR 擴增帶有gfp的Atu4856 啟動子電泳圖見圖3。

圖2 PCR 擴增gfp 基因電泳圖

圖3 PCR 擴增帶有gfp 的Atu4856 啟動子電泳圖

2.2 PCR 擴增無T7 啟動子的質粒（prset-a）

模板采用質粒prset-a，采用引物P1 和P2，通過PCR 擴增得到不含T7 啟動子的質粒prset-a，大小約2.7 kb（圖4），用于重組表達質粒的構建。

PCR 擴增去除T7 啟動子的prset-a 質粒電泳圖見圖4。

圖4 PCR 擴增去除T7 啟動子的prset-a 質粒電泳

2.3 酶切鑒定prset-agfp1 重組質粒

將BamHⅠ酶切后帶有綠色熒光基因（gfp） 的Atu4856 啟動子連接在BamHⅠ酶切后的prset-a 載體上，該載體無T7 啟動子，接著轉化到DH5α 大腸桿菌，培養(yǎng)過夜。經過提質粒、酶切、瓊脂糖凝膠電泳等一系列過程，驗證與PCR 產物一致（圖5），同時將質粒測序，測序結果表明prset-a 質粒上成功插入了標記基因（gfp） 的Atu4856 啟動子序列，載體構建成功。

酶切鑒定prset-agfp1 重組質粒電泳圖見圖5。

圖5 酶切鑒定prset-agfp1 重組質粒電泳圖

2.4 驗證Atu4856 啟動子在探針載體中的活性

取菌液制片，在倒置熒光顯微鏡下觀察。結果顯示，發(fā)射藍光時有熒光，而只帶prset-a 載體的大腸桿菌沒有熒光現(xiàn)象（圖6）。說明與gfp基因融合的載體已被成功構建，帶有熒光基因（gfp） 的Atu4856啟動子序列被證明具有轉錄活性。

未突變的含有495 bp Atu4856 上游序列重組質粒E.coli（prset-agfp1） 的熒光觀察結果見圖6。

圖6 未突變的含有495 bp Atu4856 上游序列重組質粒E.coli（prset-agfp1） 的熒光觀察結果

3 結論

啟動子是構建基因表達載體的重要因素，對外源基因的表達水平具有著重要的影響。查閱大量文獻、進行理論分析和試驗工作，通過PCR 方法，獲得了編碼VBP3 蛋白Atu4856 基因的全長啟動子序列。將prset-a 載體的T7 啟動子與GFP 基因重組后，用Atu4856 啟動子序列取代，成功構建了能在大腸桿菌中表達的啟動子探針載體，并利用熒光蛋白研究農桿菌Atu4856 基因在大腸桿菌中的表達調控機制。