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細菌程序性細胞死亡及其在抗菌治療中的應(yīng)用前景

2023-12-26 04:07:12劉偉佳方芳朱靚薛云新王岱
中國抗生素雜志 2023年9期
關(guān)鍵詞:利他主義細菌

劉偉佳?方芳?朱靚?薛云新?王岱

摘要:細菌程序性細胞死亡(programmed cell death, PCD)是細菌在壓力環(huán)境下自發(fā)犧牲部分亞群以提高細菌群體生存而產(chǎn)生的編程性死亡,該利他現(xiàn)象受到越來越多的關(guān)注。耐藥菌的出現(xiàn)為病原菌殺傷帶來挑戰(zhàn),鑒于細菌PCD在耐藥菌產(chǎn)生與治療方面的重要作用,本文從PCD角度詳細分析細菌應(yīng)對抗生素壓力的方式,闡明PCD為抗菌治療提供的新策略,為合理使用這把“雙刃劍”提供理論支持。

關(guān)鍵詞:細菌;程序性細胞死亡;抗生素耐藥;抗菌治療;利他主義

中圖分類號:Q932, TQ465文獻標(biāo)志碼:A

Bacterial programmed cell death and its application prospect in antimicrobial therapy

Liu Wei-jia, Fang Fang, Zhu Liang, Xue Yun-xin, and Wang Dai

(Department of Experimental Medicine, State Key Laboratory of Molecular Vaccinology and Molecular Diagnostics, Xiamen 361102)

Abstract Bacterial programmed cell death (PCD) is a programming death in stressful conditions, at the cost of spontaneously sacrificing sub-population as to improve survival of bacterial population. The altruistic behavior is getting an increase attention. The emergence of drug-resistant bacteria has always posed a challenge to the killing of pathogens. Since bacterial programmed cell death plays an important role in both the generation and treatment of drug-resistant bacteria, we analyzed the response modes of bacteria to antibiotic pressure from the perspective of PCD, and illustrated new strategies of PCD for antimicrobial treatment, so as to provide theoretical support for the rational use of this double-edged sword.

Key words Bacteria; Programmed cell death; Antibiotic resistance; Antimicrobial therapy; Altruism

程序性細胞死亡(programmed cell death, PCD) 在多細胞真核生物中普遍存在,前期研究通常以真核細胞表型定義PCD,但近期研究表明PCD于細菌群體也至關(guān)重要[1-5]。面對不同壓力刺激時,野油菜黃單胞菌(Xanthomonas campestris)[6]、金黃色葡萄球菌 (Staphylococcus aureus)[7]、銅綠假單胞菌(Pseudomonas aeruginosa)[8]、大腸埃希菌(Escherichia coli)[9]和結(jié)核分枝桿菌(Mycobacterium tuberculosis)[10]等均易產(chǎn)生PCD。對于單個細菌細胞,PCD會導(dǎo)致菌體死亡,但當(dāng)視為群體的一部分時,部分細菌主動死亡可為壓力環(huán)境下的群體提供養(yǎng)分與生存空間,有利于其余菌群存活[1,3,11-12]。該“利他主義”行為展現(xiàn)出菌群協(xié)同進化過程中的精妙合作。

2021年,世界衛(wèi)生組織宣布抗微生物藥物耐藥 (antimicrobial resistance, AMR)是人類面臨的全球十大公共衛(wèi)生威脅之一[13]。據(jù)Lancet雜志報道,在2019年全球約有近500萬例與細菌性AMR相關(guān)的感染死亡[14]。同年美國疾病控制與預(yù)防中心統(tǒng)計發(fā)現(xiàn),美國每年有280多萬起AMR病例感染,超過3.5萬人因此死亡[15]。2016年英國政府有關(guān)審查報告指出:若缺乏有效途徑加以抑制,預(yù)計2050年,全世界每年約有1000萬人死于AMR感染[16]??梢娍刮⑸锼幬锬退幗o人類帶來極大危害,增強現(xiàn)有抗菌藥物殺傷效果和研發(fā)新型抗菌藥物至關(guān)重要。

細菌PCD是耐藥菌最初產(chǎn)生的主要原因,合理利用細菌PCD又能殺傷病原菌。鑒于細菌PCD在耐藥菌產(chǎn)生以及治療方面的重要作用,本文對細菌PCD及其誘發(fā)因素進行綜述,詳細介紹PCD用于抵抗病原菌的新策略,闡明PCD與耐藥菌的“雙刃劍”關(guān)系,為PCD在原核細菌群體中抗菌治療方向提供應(yīng)用思路。

1 細菌的程序性細胞死亡

1995年,Science雜志首次報道關(guān)于限制修飾系統(tǒng) (restriction-modification system, RM系統(tǒng)) 介導(dǎo)大腸埃希菌PCD的研究成果,引起廣泛關(guān)注[17-18]。自此,“細菌PCD”理論逐步成為原核生物研究領(lǐng)域的熱點方向之一。Kenneth[19]提出細菌PCD是由遺傳編碼決定的高度協(xié)調(diào)過程,當(dāng)修復(fù)損傷細菌細胞成本高于構(gòu)建新細胞成本時,細菌才自主啟動PCD響應(yīng)損傷?!坝H緣選擇理論”是解釋細菌群體PCD 的假設(shè)之一:若受益?zhèn)€體是遺傳親支并且“成本/收益”比值小于“親緣關(guān)系度”,則代價高昂的個體行為可以進化[20-22]。

過去10年,細胞死亡命名委員會(Nomenclature Committee on Cell Death, NCCD)就形態(tài)學(xué)、誘發(fā)機制與功能作用角度對多種死亡類型做出定義[23]。目前對真核生物PCD過程研究較為透徹,主要分為細胞凋亡和自噬[24]。作為一個非炎癥過程,細胞凋亡形態(tài)特征表現(xiàn)為細胞質(zhì)、細胞核收縮,DNA損傷及凋亡體形成[25]。目前已知的細胞凋亡主要途徑有3種,包括內(nèi)源的線粒體介導(dǎo)細胞凋亡(又名BCL-2調(diào)節(jié)途徑)、外源的死亡受體介導(dǎo)細胞凋亡和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)途徑的細胞凋亡[24]。細胞凋亡早期的重要特征是半胱氨酸依賴的磷脂酰絲氨酸(phosphatidylserine, PS)外翻引發(fā)“胞葬作用”(efferocytosis),吞噬細胞和溶酶體進一步清除凋亡細胞。與之相反,核心的自噬機制與吞噬細胞幾乎無關(guān),由30多個自噬相關(guān)基因編碼,特征是垂死細胞本身存在自噬液泡,細胞質(zhì)封存在自噬體內(nèi)部,以便溶酶體進行本體降解[26]。

已有報道提出細菌PCD過程涉及的內(nèi)在途徑與真核細胞PCD相比高度保守,如細菌中用來調(diào)節(jié)死亡與裂解的holin樣蛋白具有類似于促凋亡BCL-2蛋白的死亡效應(yīng)[19]。除去真核生物特有的細胞結(jié)構(gòu),細菌的凋亡樣程序性死亡 (apoptosis-like death, ADL) 與真核細胞凋亡在形態(tài)學(xué)上無明顯差異,相似度極高(表1)[10,27]。

2 影響細菌PCD發(fā)生因素

2.1 外在不利壓力引發(fā)PCD

研究表明多種壓力應(yīng)激源可誘導(dǎo)細菌產(chǎn)生PCD:熱休克、極端pH、營養(yǎng)饑餓、抗生素殺傷、噬菌體攻擊、暴露于異種生物和遺傳毒性分子等外環(huán)境因素不適宜細菌生存,可誘發(fā)細菌“凋亡樣”死亡過程,導(dǎo)致細胞分裂、染色體縮合和破碎、核糖體RNA降解、膜去極化和重塑,直至死亡[12,28-29]。其中,營養(yǎng)饑餓引發(fā)的PCD受鳥苷四磷酸(ppGpp)調(diào)控[11]。面對饑餓環(huán)境,細胞內(nèi)快速積累ppGpp,嚴謹反應(yīng)下停止大部分代謝活動,抑制核糖體和tRNA,整體轉(zhuǎn)錄水平下降,因而減弱mazEF基因轉(zhuǎn)錄[12,30]。MazEF屬于II型毒素-抗毒素系統(tǒng)(toxin-antitoxin system, TA),由毒素MazF與抗毒素MazE組成,該系統(tǒng)與ppGpp介導(dǎo)的大腸埃希菌PCD有關(guān)。營養(yǎng)饑餓時MazEF轉(zhuǎn)錄與翻譯位點在ppGpp作用下被抑制,不穩(wěn)定蛋白質(zhì)MazE被ClpAP絲氨酸蛋白酶降解,MazF以不依賴核糖體的方式切割RNA,進一步引發(fā)大腸埃希菌PCD[12]。

2.2 內(nèi)源性ROS引發(fā)PCD

另一方面,細胞內(nèi)在應(yīng)激也會誘發(fā)細菌PCD,包括體內(nèi)活性氧(reactive oxygen species, ROS)積累、DNA損傷等[30-31]。ROS通常包括超氧化物、過氧化氫和羥基自由基,過量ROS導(dǎo)致DNA斷裂、膜去極化、蛋白質(zhì)羰基化及細胞壁損傷,直接誘導(dǎo)細胞內(nèi)在凋亡,且其作用通常是累計級聯(lián)反應(yīng),即ROS介導(dǎo)的損傷可進一步引發(fā)ROS生成,加劇細胞破壞[32-33]。研究表明假微型海鏈藻(Thalassiosira pseudonana)中ROS含量與PCD標(biāo)志物水平呈顯著相關(guān)。在用ROS清除劑預(yù)處理后,所有PCD標(biāo)志物百分比降低,死細胞比率也降低,表明隨著細胞ROS清除,假微型海鏈藻群體中PCD發(fā)生率隨之降低[31]。

2.3 群體感應(yīng)系統(tǒng)引發(fā)PCD

當(dāng)細菌生長密度達到閾值時,微生物可分泌群體感應(yīng)分子進行細胞間通訊,控制群體生命活動與行為[34]。群體感應(yīng)(quorum sensing, QS)系統(tǒng)根據(jù)分泌的自誘導(dǎo)劑性質(zhì)及其信號轉(zhuǎn)導(dǎo)模式主要分為革蘭陽性(Gram-positive)細菌和革蘭陰性(Gram-negative)細菌兩類(圖1)[35]。上述信號分子不僅有利于種群內(nèi)細菌之間通訊,也為種間交流奠定生物學(xué)基礎(chǔ)。

高密度細菌群體營養(yǎng)物質(zhì)有限,不利于細菌生長與代謝,因此控制細胞密度以優(yōu)化代謝產(chǎn)生至關(guān)重要。QS系統(tǒng)在控制種群密度上發(fā)揮關(guān)鍵作用,通過引發(fā)部分細菌死亡為群體提供高質(zhì)量代謝環(huán)境,與“利他主義”原理相吻合[35-36]。

如革蘭陽性菌金黃色葡萄球菌通過Agr QS系統(tǒng)進行調(diào)節(jié),由反應(yīng)調(diào)節(jié)子AgrA和組氨酸激酶感應(yīng)器AgrC組成,AgrC可通過表達RNA III調(diào)節(jié)子來響應(yīng)自誘導(dǎo)多肽。RNA III和agrA的缺失株比野生型菌株存活率更高,表明野生型中存在由RNA III本身而非其編碼的δ毒素介導(dǎo)的Agr系統(tǒng)發(fā)揮作用,導(dǎo)致部分細胞失活[37]。G-菌銅綠假單胞菌的QS依賴于3個相互聯(lián)通的回路,las、rhl和pqs系統(tǒng)。作為其中最主要的QS系統(tǒng),las可通過激活轉(zhuǎn)錄因子LasR來調(diào)節(jié)rhI和pqs。研究發(fā)現(xiàn)lasR突變體在培養(yǎng)36~54 h后細胞密度幾乎維持恒定,而野生型生長密度已顯著下降,證明LasR可介導(dǎo)細胞溶解與死亡[38]。在與宿主相互作用時,銅綠假單胞菌的QS系統(tǒng)還能調(diào)控宿主細胞PCD。QS分子N-(3-氧代十二?;?高絲氨酸內(nèi)酯通過摻入哺乳動物的質(zhì)膜誘導(dǎo)真核細胞脂質(zhì)結(jié)構(gòu)域溶解,引發(fā)caspase 3-caspase 8介導(dǎo)的細胞凋亡,抑制宿主天然免疫反應(yīng),增強自身在宿主內(nèi)生存定植,可見其促凋亡作用是調(diào)節(jié)免疫活性的主力軍[39-40]。

3 細菌利用PCD應(yīng)對抗生素壓力

抗生素殺傷細菌主要通過靶向30S或50S核糖體亞基抑制蛋白質(zhì)合成,或抑制細胞壁、核酸、ATP合成等,進一步擾動細胞代謝水平造成細菌損傷,細胞代謝狀態(tài)改變又會反向影響其對抗生素敏感性[41-42]。面對抗生素壓力時細菌會利用PCD“利他性”實現(xiàn)群體利益更大化:一方面PCD指向降低環(huán)境中抗生素濃度途徑,如死細菌透過膜吸收抗生素或釋放酶降解抗生素以抵抗外界壓力[43-44];另一方面,PCD指向促進抗菌物質(zhì)釋放途徑,如細菌種間與細菌種內(nèi)競爭時產(chǎn)生抗菌物質(zhì)實現(xiàn)競爭優(yōu)勢[1,45]。可見抗生素壓力下,PCD與抗菌物質(zhì)的產(chǎn)生與減少都密不可分。

3.1 PCD促進抗菌物質(zhì)釋放

3.1.1 細菌種間競爭

在壓力應(yīng)激時,細菌能夠自發(fā)產(chǎn)生廣譜抗菌物質(zhì)抵抗其他與之競爭的細菌群體,如被人熟知的抗菌肽。雖然細菌細胞不能自發(fā)分泌抗菌化合物,但可通過裂解釋放抗菌物質(zhì)。如在不同細菌間相互競爭時,大腸埃希菌產(chǎn)生的抗菌肽被釋放后,可以殺死競爭細菌,有利于剩余大腸埃希菌群生存[45]。

3.1.2 細菌種內(nèi)競爭

在細菌發(fā)育進程中不僅存在種間競爭,還存在種群內(nèi)殺傷:在抗生素作用下某一亞群分泌抗菌物質(zhì)以殺死另一亞群,以此獲取胞外同源DNA增強遺傳多樣性,最終使種群存活率升高,該現(xiàn)象被認為是表型異質(zhì)性的極端形式之一[1]。如在枯草芽胞桿菌中,同類相食是一種分化策略,可增強生物膜形成,在饑餓條件下延緩甚至阻止內(nèi)孢子形成,同時可保護生物膜內(nèi)細胞免受競爭物種侵害[1]。

綜上可見,細菌群體可通過分泌抗菌物質(zhì)實現(xiàn)對競爭群體和同類細菌群的部分殺傷,不僅利于同種親緣菌群,也能抑制其他物種生長[21]。

3.2 PCD減少環(huán)境中抗生素濃度

3.2.1 死細胞降低抗生素濃度

研究發(fā)現(xiàn)抗生素壓力下的死亡細菌能降低環(huán)境中抗生素濃度以保護其他活菌群體。如人源性LL37抗菌肽能透化大腸埃希菌細胞膜以殺死部分亞群,但隨之形成的死細胞會借助破膜滲透的方式從環(huán)境中吸收剩余LL37來降低抗菌肽療效,從而保護更多活菌,形成集體耐受[43]?;跀?shù)學(xué)建模分析,結(jié)合群體與單細胞實驗,發(fā)現(xiàn)“細菌吸收LL37的時間與其細胞質(zhì)膜的滲透時間一致”,該現(xiàn)象證實了死細菌能夠吸收抗菌肽[43]。

3.2.2 細菌釋放酶降解抗生素

在一定程度上可用利他性死亡來解釋高濃度抗生素殺菌的“eagle effect”現(xiàn)象,即病原菌整體密度表現(xiàn)出與抗生素作用濃度非單調(diào)的對應(yīng)關(guān)系,高抗生素濃度時殺菌效果反而降低。具體表現(xiàn)在抗生素壓力下,部分細菌裂解并釋放β-內(nèi)酰胺酶,快速降解環(huán)境中抗生素,以更快地恢復(fù)種群密度減弱抗生素殺傷[44]。

4 基于細菌PCD行為的抗菌新策略

抗生素的泛用、濫用使得越來越多的耐藥菌涌現(xiàn)。耐藥菌的產(chǎn)生是細菌群體在最初面臨抗生素壓力時,少量抗性突變體以自我犧牲為代價,通過產(chǎn)生如吲哚類的信號分子打開藥物外排泵將抗生素輸送至細胞外、產(chǎn)生氧化應(yīng)激保護機制,為相對藥物敏感的細胞提供保護,從而提高整個種群生存能力[46-47],這也是PCD為最初產(chǎn)生耐藥菌所做的貢獻。提升現(xiàn)有抗菌藥物殺傷病原菌能力以及研發(fā)新型抗菌藥物是目前抗菌藥物研發(fā)兩大主要方向,PCD在這兩方面均能提供新策略。

4.1 誘發(fā)PCD促進細菌細胞死亡

就提升目前抗菌藥物的殺傷力方面,激活PCD可以增強細菌死亡程度,實現(xiàn)有效殺傷。例如原核生物中保守性較高的TA系統(tǒng)已被發(fā)現(xiàn)可以作為抗生素靶標(biāo)開發(fā)的重要靶點之一[48]。早在2004年已證明抗生素如氯霉素、大觀霉素與利福平可通過抑制轉(zhuǎn)錄和翻譯、激活MazEF途徑來誘發(fā)細菌PCD[3,49]。一方面可追求抗毒素快速降解,使對應(yīng)毒素更易釋放。另一方面,設(shè)計抗毒素結(jié)構(gòu)類似物與底物競爭性結(jié)合也是手段之一。但這些終歸是間接的,開發(fā)新型化合物直接靶向這些死亡途徑而非間接激活死亡途徑是新型抗生素研發(fā)的重要途徑。

4.2 干擾PCD抑制細菌抵抗能力

短期看PCD激活能殺傷部分細菌群,為病原菌治療提供思路。但根據(jù)在群體生成PCD的生物學(xué)原理,從長遠看會產(chǎn)生更多“公共利益”,而這些公共代謝物反向緩解壓力,使更多病原菌恢復(fù)菌量成為可能[50]??梢奝CD效應(yīng)與“公共利益”是非線性關(guān)系,把握二者平衡至關(guān)重要。從PCD基于群體合作的角度看,降低PCD以減少產(chǎn)生“公共利益”更有利于細菌殺傷。

4.2.1 干擾反饋回路以加強細菌殺傷

抗菌肽作用下已經(jīng)被殺死的細菌能反向吸收環(huán)境中抗菌肽,降低濃度以減少殺傷[43]。由此提出的治療策略是干擾死菌反向吸收作用,該反饋回路強調(diào)抗菌肽治療期間死亡細菌對群體生存的保護。如使用肽佐劑阻礙死細菌的反向吸收,降低病原菌群體中死細胞對其余活細胞的保護能力,以提升抗菌藥物療效[43]。

4.2.2 群體感應(yīng)抑制劑相關(guān)新型抗菌劑

病原菌中群體感應(yīng)誘發(fā)PCD使得更多細菌群體得以生長、進一步產(chǎn)生感染,因此QS抑制劑這類新型抗菌劑研發(fā)成為阻斷PCD產(chǎn)生的重要手段之一。QS抑制劑的研發(fā)起源于不同微生物爭奪相同生態(tài)位,已知革蘭陰性菌的N-?;呓z氨酸內(nèi)酯(AHL) 可與革蘭陰性菌金黃色葡萄球菌的細胞膜相互作用,降低外毒素產(chǎn)生,抑制其Agr系統(tǒng)表達[51]。近年來,臨床上研發(fā)QS抑制劑是防治銅綠假單胞菌定植和致病的主要方向之一,如設(shè)計LasR受體拮抗劑中斷級聯(lián)反應(yīng)、降低病原體毒力[52]。Kalia等[53]從數(shù)據(jù)庫中篩選得到8個鉛類化合物,通過分子對接軟件模擬,發(fā)現(xiàn)這些化合物利用不同氨基酸殘基與烯酰還原酶FabI結(jié)合形成氫鍵以抑制AHL?;溕?,從酶類藥物靶標(biāo)角度為銅綠假單胞菌QS抑制劑的開發(fā)提供了可能。

QS小分子抑制劑可作為預(yù)防細菌致病性的潛在治療藥物,具有廣闊發(fā)展前景。表2羅列了通過抑制QS系統(tǒng)抵抗病原菌感染的物質(zhì)名稱與作用方式等。

可見,QS抑制劑作為干擾PCD反饋回路的重要分支,主要通過影響生物膜形成來抵抗致病菌,在抗感染治療方面有卓越潛力。目前通過技術(shù)手段對QS分子抑制劑進行篩選成為主要趨勢,如成立數(shù)據(jù)儲存庫、開發(fā)新型靈敏發(fā)光測定法等,可快速高通量地對潛在抑制劑進行虛擬篩選,進而通過分析檢測數(shù)據(jù)評估其與擬定靶點的吻合程度[53,56,60]。

5 總結(jié)與展望

綜合上述內(nèi)容表明,細菌PCD對于抗菌治療是一把“雙刃劍”,應(yīng)合理把握平衡。在抗生素用藥的基礎(chǔ)上人為誘發(fā)細菌PCD或拮抗細菌QS通訊以抑制群體內(nèi)部利他性質(zhì)的PCD,使細菌群體更容易被殺傷;而值得注意的是PCD也能被病原菌加以利用作為其適應(yīng)宿主環(huán)境生存進化的有力武器。

因而,需要推出新抗菌感染策略以應(yīng)對耐藥性增強的病原菌和新病原菌。人工合成的化合物或從生物中分離得到的小分子抗菌蛋白具有良好治療潛力,它們穩(wěn)定性高,耐藥風(fēng)險低,對哺乳動物細胞無毒性,具有促凋亡活性,有望在不久的將來成為治療病原菌的候選藥物。目前,迫切需要深入研究來闡明這類抗菌藥物誘導(dǎo)細菌PCD的靶點。從機制而言,細菌PCD的產(chǎn)生路徑遠不如真核細胞PCD通路研究成熟。現(xiàn)在尚不清楚是否有任何基因或蛋白質(zhì)與抗菌治療期間細菌的異質(zhì)性行為有關(guān)。鑒于目前全基因組測序已成為廣泛使用的研究工具,獲取耐藥菌株基因組序列有助于尋找新的抗菌蛋白,也有利于篩選靶向致病菌PCD的新治療靶點。

致謝:感謝廈門大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院研究生王煒捷、朱偉偉對文章撰寫所提出的寶貴意見及建議。

參 考 文 獻

Popp P F, Mascher T. Coordinated cell death in isogenic bacterial populations: Sacrificing some for the benefit of many?[J]. J Mol Biol, 2019, 431(23): 4656-4669.

Smith R P, Barraza I, Quinn R J, et al. The mechanisms and cell signaling pathways of programmed cell death in the bacterial world[J]. Int Rev Cell Mol Biol, 2020, 352: 1-53.

Peeters S H, de Jonge M I. For the greater good: Programmed cell death in bacterial communities[J]. Microbiol Res, 2018, 207: 161-169.

Zemke A C, Bomberger J M. Microbiology: Social suicide for a good cause[J]. Curr Biol, 2016, 26(2): R80-R82.

Allocati N, Masulli M, Di Ilio C, et al. Die for the community: An overview of programmed cell death in bacteria [J]. Cell Death Dis, 2015, 6(1): e1609.

Wadhawan S, Gautam S, Sharma A. Involvement of proline oxidase (PutA) in programmed cell death of Xanthomonas[J]. PLoS One, 2014, 9(5): e96423.

Rice K C, Mann E E, Endres J L, et al. The cidA murein hydrolase regulator contributes to DNA release and biofilm development in Staphylococcus aureus[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2007, 104(19): 8113-8118.

McFarland K A, Dolben E L, LeRoux M, et al. A self-lysis pathway that enhances the virulence of a pathogenic bacterium[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2015, 112(27): 8433-8438.

Wadhawan S, Gautam S. Rescue of Escherichia coli cells from UV-induced death and filamentation by caspase-3 inhibitor[J]. Int Microbiol, 2019, 22(3): 369-376.

Burgess Tornaletti L, Manina G. Delving into the functional meaning of phenotypic variation in mycobacterial persistence: Who benefits the most from programmed death of individual cells?[J]. Microbiol Insights, 2020, 13: 1178636120945304.

Aizenman E, Engelberg-Kulka H, Glaser G. An Escherichia coli chromosomal "addiction module" regulated by guanosine [corrected] 3', 5'-bispyrophosphate: A model for programmed bacterial cell death[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 1996, 93(12): 6059-6063.

Ramisetty B C, Natarajan B, Santhosh R S. mazEF-mediated programmed cell death in bacteria: “what is this?”[J]. Crit Rev Microbiol, 2015, 41(1): 89-100.

World Health Organization. Antimicrobial resistance[EB/OL]. (2021-11-17)[2022-10-13] https: //www.who.int/en/news-room/fact-sheets/detail/antimicrobial-resistance.

Antimicrobial Resistance Collaborators. Global burden of bacterial antimicrobial resistance in 2019: A systematic analysis[J]. Lancet, 2022, 399(10325): 629-655.

U.S. Centers for Disease Control and Prevention. Antibiotic resistance threats in the United States, 2019 [EB/OL]. (2019-12)[2022-10-13]. https: //www.cdc.gov/drugresistance/biggest-threats.html.

Oneill J. The review on antimicrobial resistance[EB/OL]. (2016-5)[2022-10-13]. https: //amr-review.org/.

Naito T, Kusano K, Kobayashi I. Selfish behavior of restriction-modification systems[J]. Science, 1995, 267(5199): 897-899.

Yarmolinsky M B. Programmed cell death in bacterial populations[J]. Science, 1995, 267(5199): 836-837.

Bayles K W. Bacterial programmed cell death: Making sense of a paradox[J]. Nat Rev Microbiol, 2014, 12(1): 63-69.

Michod R E. The theory of kin selection[J]. Annu Rev Ecol Syst, 1982, 13(1): 23-55.

Durand P M, Choudhury R, Rashidi A, et al. Programmed death in a unicellular organism has species-specific fitness effects[J]. Biol Lett, 2014, 10(2): 20131088.

Durand P M, Sym S, Michod R E. Programmed cell death and complexity in microbial systems[J]. Curr Biol, 2016, 26(13): R587-R593.

Galluzzi L, Vitale I, Aaronson S A, et al. Molecular mechanisms of cell death: Recommendations of the Nomenclature Committee on Cell Death 2018[J]. Cell Death Differ, 2018, 25(3): 486-541.

DArcy M S. Cell death: A review of the major forms of apoptosis, necrosis and autophagy[J]. Cell Biol Int, 2019, 43(6): 582-592.

Zhang Y, Chen X, Gueydan C, et al. Plasma membrane changes during programmed cell deaths[J]. Cell Res, 2018, 28(1): 9-21.

Bedoui S, Herold M J, Strasser A. Emerging connectivity of programmed cell death pathways and its physiological implications[J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2020, 21(11): 678-695.

Kroemer G, El-Deiry W S, Golstein P, et al. Classification of cell death: Recommendations of the nomenclature committee on cell death[J]. Cell Death Differ, 2005, 12 (Suppl 2): 1463-1467.

Nam Y, Goo E, Kang Y, et al. Membrane depolarization and apoptosis-like cell death in an alkaline environment in the rice pathogen Burkholderia glumae[J]. Front Microbiol, 2021, 12: 755596.

Dwyer D J, Camacho D M, Kohanski M A, et al. Antibiotic-induced bacterial cell death exhibits physiological and biochemical hallmarks of apoptosis[J]. Mol Cell, 2012, 46(5): 561-572.

Lee H, Lee D G. Programmed cell death in bacterial community: Mechanisms of action, causes and consequences[J]. J Microbiol Biotechnol, 2019, 29(7): 1014-1021.

Zhao Y, Tang X, Qu F, et al. ROS-mediated programmed cell death (PCD) of Thalassiosira pseudonana under the stress of BDE-47[J]. Environ Pollut, 2020, 262: 114342.

李嬌. 超聲場脅迫下大腸桿菌O157: H7的致死效應(yīng)及分子機制研究[D]. 杭州: 浙江大學(xué), 2019.

Hong Y, Zeng J, Wang X, et al. Post-stress bacterial cell death mediated by reactive oxygen species[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2019, 116(20): 10064-10071.

Abisado R G, Benomar S, Klaus J R, et al. Bacterial quorum sensing and microbial community interactions[J]. mBio, 2018, 9(3): e02331-17.

Wu S, Liu J, Liu C, et al. Quorum sensing for population-level control of bacteria and potential therapeutic applications[J]. Cell Mol Life Sci, 2020, 77(7): 1319-1343.

Diggle S P, Griffin A S, Campbell G S, et al. Cooperation and conflict in quorum-sensing bacterial populations[J]. Nature, 2007, 450(7168): 411-414.

Paulander W, Varming A N, Bojer M S, et al. The agr quorum sensing system in Staphylococcus aureus cells mediates death of sub-population[J]. BMC Res Notes, 2018, 11(1): 503.

Heurlier K, Dénervaud V, Haenni M, et al. Quorum-sensing-negative (lasR) mutants of Pseudomonas aeruginosa avoid cell lysis and death[J]. J Bacteriol, 2005, 187(14): 4875-4883.

Song D, Meng J, Cheng J, et al. Pseudomonas aeruginosa quorum-sensing metabolite induces host immune cell death through cell surface lipid domain dissolution[J]. Nat Microbiol, 2019, 4(1): 97-111.

祝司霞. 銅綠假單胞菌群體感應(yīng)代謝產(chǎn)物通過細胞表面脂質(zhì)結(jié)構(gòu)域溶解誘導(dǎo)宿主淋巴細胞死亡的機制[J]. 中國免疫學(xué)雜志, 2021, 37(8): 922-926.

Stokes J M, Lopatkin A J, Lobritz M A, et al. Bacterial metabolism and antibiotic efficacy[J]. Cell Metab, 2019, 30(2): 251-259.

Hutchings M I, Truman A W, Wilkinson B. Antibiotics: Past, present and future[J]. Curr Opin Microbiol, 2019, 51: 72-80.

Wu F, Tan C. Dead bacterial absorption of antimicrobial peptides underlies collective tolerance[J]. J R Soc Interface, 2019, 16(151): 20180701.

Tanouchi Y, Pai A, Buchler N E, et al. Programming stress-induced altruistic death in engineered bacteria[J]. Mol Syst Biol, 2012, 8: 626.

Mavridou D A I, Gonzalez D, Kim W, et al. Bacteria use collective behavior to generate diverse combat strategies[J]. Curr Biol, 2018, 28(3): 345-355.e344.

Lee H H, Molla M N, Cantor C R, et al. Bacterial charity work leads to population-wide resistance[J]. Nature, 2010, 467(7311): 82-85.

李昕, 曾潔, 王岱, 等. 細菌耐藥耐受性機制的最新研究進展[J]. 中國抗生素雜志, 2020, 45(2): 113-121.

海洋, 王小雨, 謝建平. 細菌毒素-抗毒素系統(tǒng)在噬菌體流產(chǎn)感染中的作用[J]. 生物工程學(xué)報, 2022, 38(9): 3291-3300.

Engelberg-Kulka H, Sat B, Reches M, et al. Bacterial programmed cell death systems as targets for antibiotics[J]. Trends Microbiol, 2004, 12(2): 66-71.

Tanouchi Y, Lee A J, Meredith H, et al. Programmed cell death in bacteria and implications for antibiotic therapy[J]. Trends Microbiol, 2013, 21(6): 265-270.

Qazi S, Middleton B, Muharram S H, et al. N-acylhomoserine lactones antagonize virulence gene expression and quorum sensing in Staphylococcus aureus[J]. Infect Immun, 2006, 74(2): 910-919.

Duplantier M, Lohou E, Sonnet P. Quorum sensing inhibitors to quench P. aeruginosa pathogenicity[J]. Pharmaceuticals (Basel), 2021, 14(12): 1262.

Kalia M, Yadav V K, Singh P K, et al. Designing quorum sensing inhibitors of Pseudomonas aeruginosa utilizing FabI: An enzymic drug target from fatty acid synthesis pathway[J]. 3 Biotech, 2019, 9(2): 40.

Oliveira D, Borges A, Ruiz R M, et al. 2-(2-Methyl-2-nitrovinyl) furan but not furvina interfere with Staphylococcus aureus Agr quorum-sensing system and potentiate the action of fusidic acid against biofilms[J]. Int J Mol Sci, 2021, 22(2): 613.

O'Loughlin C T, Miller L C, Siryaporn A, et al. A quorum-sensing inhibitor blocks Pseudomonas aeruginosa virulence and biofilm formation[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2013, 110(44): 17981-17986.

Gatta V, Toma?i? T, Ila? J, et al. A new cell-based AI-2-mediated quorum sensing interference assay in screening of Lsrk-targeted inhibitors[J]. Chembiochem, 2020, 21(13): 1918-1922.

Sedlmayer F, Woischnig A K, Unterreiner V, et al. 5-fluorouracil blocks quorum-sensing of biofilm-embedded methicillin-resistant Staphylococcus aureus in mice[J]. Nucleic Acids Res, 2021, 49(13): e73.

Qiu M, Feng L, Zhao C, et al. Commensal Bacillus subtilis from cow milk inhibits Staphylococcus aureus biofilm formation and mastitis in mice[J]. FEMS Microbiol Ecol, 2022, 98(7): fiac065.

Albarracín Orio A G, Petras D, Tobares R A, et al. Fungal-bacterial interaction selects for quorum sensing mutants with increased production of natural antifungal compounds[J]. Commun Biol, 2020, 3(1): 670.

Wu S, Liu C, Feng J, et al. QSIdb: quorum sensing interference molecules[J]. Brief Bioinform, 2021, 22(4): bbaa218.

收稿日期:2022-11-08

基金項目:國家自然科學(xué)基金(No. 81971905;No. 82272349)

作者簡介:劉偉佳,女,生于1998年,在讀碩士研究生,主要研究方向為腸出血性大腸埃希菌中T3SS的作用,E-mail: 1319945429@qq.com.

*通信作者,E-mail: daiwang@xmu.edu.cn

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