張闖,趙孔祥,潘紅蕊,于艷軍,宓捷波,蘇明躍,楊永超
(1.天津海關(guān)工業(yè)產(chǎn)品安全技術(shù)中心,天津 300457;2.天津海關(guān)動(dòng)植物食品檢測(cè)中心,天津 300457)
苦參堿農(nóng)藥是從苦參屬植物中分離出來的全部物質(zhì),其主要成分為苦參堿和氧化苦參堿[1]??鄥A與氧化苦參堿作為殺蟲劑被廣泛應(yīng)用于國內(nèi)外農(nóng)業(yè)生產(chǎn)[2]。目前苦參堿農(nóng)藥是我國植物源農(nóng)藥中登記企業(yè)最多的品種,目標(biāo)害蟲有蚜蟲[3],紅火蟻[4-5]、金龜子甲蟲[6]、田間幼蟲[7]、黑腹果蠅、美洲大蠊[8]等,應(yīng)用于豇豆生產(chǎn)種植[9]、結(jié)球甘藍(lán)防控[10]、茶葉種植防治[11]等領(lǐng)域。其作用機(jī)理是害蟲觸及苦參堿農(nóng)藥后被麻痹神經(jīng)中樞,苦參堿農(nóng)藥作為殺蟲劑可凝固蟲體蛋白質(zhì),阻塞氣孔,使害蟲窒息而死,起到觸殺和胃毒的雙重作用[12-13]。由于其殺蟲活性相對(duì)較低,多與其他殺蟲劑配伍使用[14]。相關(guān)研究表明,苦參堿農(nóng)藥對(duì)人體有較為明顯的副作用。例如氧化苦參堿的毒性能降低人體正常肝細(xì)胞活性,大幅提高乳酸脫氫酶水平,通過光鏡觀察,人體肝細(xì)胞縮小、變得褶皺,顯示出肝毒作用[15]。
枸杞是我國藥食同源的中藥材重要品種,因其莖葉繁茂、果汁甘甜、營養(yǎng)豐富,易遭受病蟲的危害[16]??鄥A、氧化苦參堿作為枸杞主要?dú)⑾x劑,可防治枸杞蚜蟲、枸杞木虱[17]、梨黑星病、菜青蟲、菜蚜等[18]。
目前文獻(xiàn)報(bào)道的關(guān)于苦參堿和氧化苦參堿的痕量檢測(cè),主要有液相色譜法[19-20]、電化學(xué)法[21],液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[22-24]、氣相色譜-質(zhì)譜法[25],其中以液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法檢測(cè)靈敏度高、操作簡(jiǎn)便,應(yīng)用最多?;|(zhì)主要有苦參、蜂蜜、柞蠶等,但鮮有對(duì)枸杞基質(zhì)的考察。同時(shí)目前關(guān)于苦參堿和氧化苦參堿也基本采用外標(biāo)法定量,結(jié)果準(zhǔn)確性受基質(zhì)效應(yīng)以及前處理過程中人工操作的影響,定量需要基質(zhì)曲線校準(zhǔn),方法復(fù)雜,準(zhǔn)確性較差。本文建立枸杞中苦參堿和氧化苦參堿殘留量的液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜檢測(cè)方法,采用同位素內(nèi)標(biāo)法定量,簡(jiǎn)化操作方法,提高結(jié)果準(zhǔn)確性,以期為開展枸杞中苦參堿和氧化苦參堿檢測(cè)提供參考。
枸杞:市售;乙腈、甲醇、甲酸(均為色譜純):上海安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司;磷酸(優(yōu)級(jí)純):國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;苦參堿、氧化苦參堿:北京壇墨質(zhì)檢科技有限公司;同位素內(nèi)標(biāo)D3-苦參堿、D3-氧化苦參堿:天津阿爾塔科技有限公司。水系微孔濾膜(0.22 μm):海寧市中力過濾設(shè)備廠;強(qiáng)陽離子固相萃取柱(SCX,150 mg,6 mL):天津博納艾杰爾科技有限公司。
超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀(ultra):賽默飛世爾科技(中國)有限公司;高速分散機(jī)(T25):德國艾卡公司;渦旋振蕩器(MIX-Multi):拓赫機(jī)電科技(上海)有限公司;超聲清洗器(SB-5200DTD):寧波新芝生物科技股份有限公司;離心機(jī)(KL05RF):湖南凱達(dá)科學(xué)儀器有限公司;純水機(jī)(Milli-Q):美國密理博公司;電子天平(AL204):梅特勒托利多科技(中國)有限公司。
1.3.1 溶液配制
以甲醇配制質(zhì)量濃度為100 μg/mL 的苦參堿、氧化苦參堿混標(biāo)溶液,10 μg/mL 的D3-苦參堿、D3-氧化苦參堿混和內(nèi)標(biāo)溶液,于-18 ℃下儲(chǔ)存。以20% 甲醇水溶液配制1 μg/mL 的混標(biāo)工作液及混合內(nèi)標(biāo)工作液,配制混標(biāo)溶液1、2、5、10、20 ng/mL 和50 ng/mL 的系列混合標(biāo)準(zhǔn)溶液(內(nèi)標(biāo)濃度為25 ng/mL),現(xiàn)配現(xiàn)用。
0.1% 甲酸水溶液:取適量超純水,加入1.0 mL 甲酸,用水定容至1 L,超聲脫氣,待用。
1.3.2 樣品前處理
1.3.2.1 樣品提取
采用高速分散機(jī)將枸杞打碎,稱取2 g 粉碎試樣(精確至0.001 g)于50 mL 塑料離心管中,加入1 μg/mL的混合內(nèi)標(biāo)工作液50 μL,加20 mL 1.0% 的磷酸水溶液,渦旋1 min,超聲提取30 min,5 000 r/min 離心5 min,收集上清液。
1.3.2.2 凈化
強(qiáng)陽離子固相萃取柱依次用6 mL 甲醇和6 mL 水活化,提取液經(jīng)漏斗過濾后固相萃取柱凈化,依次用6 mL 水和6 mL 甲醇淋洗,用10 mL 5% 氨水甲醇溶液洗脫。收集洗脫液,45 ℃氮?dú)獯抵两伞<尤?0% 甲醇水溶液2 mL,渦旋1 min 溶解殘余物,水系微孔濾膜過濾,超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀測(cè)定。
1.3.2.3 色譜條件
色譜柱:T3(柱長(zhǎng)100 mm,柱內(nèi)徑2.1 mm,填料粒徑1.7 μm);流動(dòng)相A:0.1% 甲酸水溶液,流動(dòng)相B:甲醇;柱溫:30 ℃;進(jìn)樣量10 μL,流速0.3 mL/min。流動(dòng)相洗脫條件見表1。
表1 流動(dòng)相及梯度洗脫條件Table 1 Mobile phase and gradient elution conditions
1.3.3 質(zhì)譜條件
電噴霧離子源(electron spray ionization,ESI);多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(multiple reaction monitoring,MRM);正離子掃描模式;噴霧電壓為3 500 V;離子源溫度為350 °C。
1.3.4 基質(zhì)效應(yīng)
基質(zhì)效應(yīng)(matrix effect,ME)按以下公式計(jì)算。
式中:M為基質(zhì)效應(yīng);A為基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率;B為溶劑標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率。當(dāng)ME>0,表明基質(zhì)效應(yīng)增強(qiáng);ME<0,表明基質(zhì)效應(yīng)抑制;ME=0 表示不存在基質(zhì)效應(yīng);|ME|<0.2 為弱基質(zhì)效應(yīng);0.2 ≤|ME| ≤0.5 為中等基質(zhì)效應(yīng);|ME|>0.5 為強(qiáng)基質(zhì)效應(yīng)。
色譜數(shù)據(jù)分析采用Xcalibur 軟件進(jìn)行處理,回收率試驗(yàn)數(shù)據(jù)由Office Excel 軟件處理,統(tǒng)計(jì)圖采用Origin Pro 8.5 制作。
2.1.1 提取溶劑選擇
苦參堿、氧化苦參堿結(jié)構(gòu)見圖1。
圖1 苦參堿和氧化苦參堿結(jié)構(gòu)Fig.1 Structures of matrine and oxymatrine
由圖1 可知,苦參堿由兩個(gè)哌啶環(huán)駢合而成,呈叔胺狀態(tài)的氮原子處于駢合環(huán)之間,立體效應(yīng)影響較小,氧化苦參堿結(jié)構(gòu)式中含有氮氧化物基團(tuán),具有半極性配位鍵,氧化苦參堿極性大于苦參堿。根據(jù)相似相溶原理,應(yīng)在較大極性的溶劑系統(tǒng)中進(jìn)行提取。不同提取溶劑對(duì)苦參堿與氧化苦參堿峰面積的影響見圖2。
圖2 不同提取溶劑下苦參堿與氧化苦參堿峰面積比較Fig.2 Comparison of peak areas of matrine and oxymatrine under different extraction solvents
由圖2 可知,使用磷酸水溶液作為提取溶液效率較高,這與苦參堿和氧化苦參堿屬于強(qiáng)極性物質(zhì),應(yīng)使用極性溶劑提取的結(jié)論一致。苦參堿、氧化苦參堿在酸性條件下比較穩(wěn)定,所以選擇磷酸水溶液作為提取溶劑。在不同濃度磷酸水溶液作為提取溶劑時(shí),0.2%、0.5%、1.0% 磷酸水溶液提取后的目標(biāo)化合物的峰面積隨提取溶劑濃度的增加不斷增大,1.0% 與2.0% 差別不大。所以選擇1.0% 磷酸水溶液作為提取溶劑。
2.1.2 超聲時(shí)間的選擇
不同超聲時(shí)間,苦參堿與氧化苦參堿峰面積變化見圖3。
圖3 不同超聲時(shí)間下苦參堿與氧化苦參堿峰面積比較Fig.3 Comparison of peak areas of matrine and oxymatrine under different ultrasound time
由圖3 可知,隨著超聲時(shí)間(10~30 min)的延長(zhǎng),目標(biāo)化合物的峰面積逐漸增大,而在30 min 和40 min 下,目標(biāo)化合物的峰面積基本沒有變化,故選擇30 min 作為最終超聲時(shí)間。超聲波可以加速枸杞在溶液中的溶解,提高反應(yīng)速率和溶解度。但在30 min時(shí),枸杞中的目標(biāo)化合物已被完全溶解于1.0% 磷酸水溶液中。
2.1.3 固相萃取凈化條件選擇
試驗(yàn)選擇強(qiáng)陽離子固相萃取柱作為凈化柱,這是由于苦參堿、氧化苦參堿屬于堿性農(nóng)藥,在溶液中帶正電荷,強(qiáng)陽離子類的固相萃取柱里有磺酸基團(tuán)帶負(fù)電荷,二者形成相互作用力,可以吸附苦參堿和氧化苦參堿。
選擇氨水甲醇溶液作為洗脫溶液,是因?yàn)槎呖商峁A性環(huán)境,銨根離子自帶正電荷,可與強(qiáng)陽離子萃取柱的負(fù)電荷相結(jié)合,減弱目標(biāo)化合物苦參堿、氧化苦參堿與強(qiáng)陽離子萃取柱之間的作用力,使得固相萃取柱吸附的苦參堿和氧化苦參堿解離下來。
試驗(yàn)以目標(biāo)化合物峰面積為參考,對(duì)比不同比例洗脫溶液(甲醇溶液、2% 氨水甲醇溶液、5% 氨水甲醇溶液、10% 氨水甲醇溶液)下對(duì)苦參堿、氧化苦參堿的洗脫效果,結(jié)果見圖4。
圖4 不同洗脫溶劑下苦參堿與氧化苦參堿峰面積比較Fig.4 Comparison of peak areas of matrine and oxymatrine under different elution solvents
由圖4 可知,氨水濃度達(dá)到5% 以后目標(biāo)化合物峰面積增加不明顯,因此使用5% 氨水甲醇溶液作為洗脫溶劑。繼續(xù)考察固相萃取柱洗脫曲線,分段收集20 mL 5% 氨水甲醇洗脫液(每2 mL 一段),將洗脫液用氮?dú)獯抵两桑? mL 20% 甲醇溶液復(fù)溶,測(cè)定每部分苦參堿、氧化苦參堿峰面積,結(jié)果見圖5。
圖5 不同階段洗脫液下苦參堿與氧化苦參堿峰面積比較Fig.5 Comparison of peak areas of matrine and oxymatrine under different stages of eluent
由圖5 可知,10 mL 洗脫液可將目標(biāo)化合物洗脫完全。
2.2.1 流動(dòng)相的選擇
試驗(yàn)通過對(duì)兩種水相溶劑(0.1% 甲酸水溶液、5 mmol 乙酸銨+0.1% 甲酸水溶液)與兩種有機(jī)相溶劑(乙腈、甲醇)進(jìn)行交叉比對(duì),分別為0.1% 甲酸水溶液+乙腈、0.1% 甲酸水溶液+甲醇、(5 mmol 乙酸銨+0.1% 甲酸水溶液)+乙腈、(5 mmol 乙酸銨+0.1% 甲酸水溶液)+甲醇。
從響應(yīng)強(qiáng)度、峰形以及出峰時(shí)間3 方面考察,發(fā)現(xiàn)0.1% 的甲酸水溶液與甲醇作為流動(dòng)相效果最明顯,離子化效率更高,響應(yīng)更強(qiáng),峰形窄而尖銳,保留時(shí)間合適。
在等度洗脫模式下,苦參堿、氧化苦參堿和基質(zhì)、溶劑、雜質(zhì)總是一同流出,在質(zhì)譜圖上無法區(qū)分,同時(shí)考慮枸杞樣品復(fù)雜、對(duì)離子源損害較大,決定采用梯度洗脫法將目標(biāo)物與基質(zhì)、溶劑、雜質(zhì)分離。梯度洗脫初始流動(dòng)相設(shè)置水相多而有機(jī)相少能將親水性雜質(zhì)分離,后逐漸加大有機(jī)相比例達(dá)到親水雜質(zhì)與目標(biāo)物分離的效果,保留性強(qiáng)的雜質(zhì)則通過延長(zhǎng)洗脫時(shí)間去除,最后恢復(fù)初始流動(dòng)相平衡。
2.2.2 色譜柱的選擇
試驗(yàn)對(duì)比了C18、T3 兩種型號(hào)色譜柱。目標(biāo)物在C18 柱下,目標(biāo)物保留較弱,出峰快,樣品中共流出物容易干擾其測(cè)定。而在T3 柱下,目標(biāo)物的峰形及質(zhì)譜相應(yīng)強(qiáng)度更好,同時(shí)保留時(shí)間合適。這是由于目標(biāo)物屬強(qiáng)極性物質(zhì),T3 柱是在C18 鍵合相基礎(chǔ)上又加上極性基團(tuán)修飾,比單獨(dú)C18 柱對(duì)極性分子的保留能力更強(qiáng),更適合極性較強(qiáng)的目標(biāo)化合物分析,因此選擇T3柱作為苦參堿分析用色譜柱。
試驗(yàn)比較了ESI 負(fù)離子和ESI 正離子兩種掃描模式下目標(biāo)化合物的信號(hào)強(qiáng)度。配制100 ng/mL 濃度下的4 種混標(biāo)溶液,并以10 μL/min 的流速直接注入質(zhì)譜。結(jié)果表明,目標(biāo)化合物在正離子掃描模式下的信號(hào)強(qiáng)度明顯高于負(fù)離子掃描模式下,這是由于苦參堿、氧化苦參堿含有氮元素,容易結(jié)合得到一個(gè)質(zhì)子形成正離子,因此采用ESI 正離子掃描模式。進(jìn)一步優(yōu)化ESI 正離子掃描模式下MRM 的母離子、子離子、碰撞能量和去簇電壓,每個(gè)目標(biāo)物選擇豐度較高、干擾最少的2 組離子對(duì)用于MRM 監(jiān)測(cè)。最終優(yōu)化的質(zhì)譜條件如表2 所示。優(yōu)化后苦參堿、氧化苦參堿及各自同位素內(nèi)標(biāo)MRM 檢測(cè)見圖6。
圖6 4 種化合物多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(MRM)色譜Fig.6 Chromatograms of four compounds in MRM mode
表2 MRM 模式下的質(zhì)譜參數(shù)Table 2 Mass spectrometry parameters in MRM mode
在液質(zhì)檢測(cè)中,基質(zhì)效應(yīng)普遍存在,影響定量結(jié)果的準(zhǔn)確性,而同位素內(nèi)標(biāo)的引進(jìn)在一定程度上可以消除基質(zhì)效應(yīng),提高定量準(zhǔn)確度。在使用外標(biāo)法時(shí)結(jié)果顯示|ME|苦參堿=0.17,|ME|氧化苦參堿=0.18,苦參堿與氧化苦參堿呈現(xiàn)弱基質(zhì)效應(yīng)。內(nèi)標(biāo)法引入后|ME|苦參堿=0.04,|ME|氧化苦參堿=0.03,內(nèi)標(biāo)的引入很大程度減小了基質(zhì)效應(yīng),可以采用溶劑配制工作曲線,簡(jiǎn)化了定量操作過程。
2.5.1 線性方程與檢出限、定量限
以3 倍信噪比確定方法檢出限,以10 倍信噪比確定定量限,結(jié)果如表3 所示。
表3 苦參堿和氧化苦參堿的線性關(guān)系及檢測(cè)靈敏度Table 3 Linear relationship and detection sensitivity of matrine and oxymatrine
2.5.2 回收率與相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差
取空白樣品,選擇低、中、高3 個(gè)濃度進(jìn)行添加回收試驗(yàn),重復(fù)試驗(yàn)6 次,回收率及相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差如表4所示。
表4 方法回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差Table 4 Method recovery rate and RSD
市場(chǎng)上采集15 份枸杞樣品,經(jīng)測(cè)定,有2 份樣品檢出氧化苦參堿成分,分別為0.76、0.83 μg/kg,其余均為未檢出。GB 2763—2021《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)食品中農(nóng)藥最大殘留限量》僅制定了部分蔬菜水果的苦參堿限量標(biāo)準(zhǔn)(1~5 mg/kg),檢出苦參堿成分的枸杞樣品遠(yuǎn)未達(dá)到此限量,枸杞中苦參堿對(duì)人可能產(chǎn)生的風(fēng)險(xiǎn)較小。同時(shí)由于樣品量較小,可能代表性不夠,下一步計(jì)劃擴(kuò)大樣品采樣繼續(xù)檢測(cè)。
本文采用液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜檢測(cè)枸杞中苦參堿和氧化苦參堿,通過優(yōu)化提取溶液、超聲時(shí)間、洗脫溶液、洗脫溶液體積等前處理?xiàng)l件達(dá)到痕量檢測(cè)的目的,同時(shí)通過查閱相關(guān)標(biāo)準(zhǔn)及文獻(xiàn),首次采用同位素內(nèi)標(biāo)法定量,該方法簡(jiǎn)便快速、結(jié)果準(zhǔn)確性高,大大降低了基質(zhì)效應(yīng)以及人工操作誤差,適合于枸杞中苦參堿和氧化苦參堿的測(cè)定。