余桂芳,嚴(yán)躍紅,王瑞鑫,曾文鋌,朱科倫
(1廣州醫(yī)學(xué)院第五附屬醫(yī)院內(nèi)一科,廣東廣州510700;2廣州醫(yī)學(xué)院第一附屬醫(yī)院肝病研究室,廣東廣州510120)
原發(fā)性肝癌是最常見(jiàn)的惡性腫瘤之一,大部分肝癌患者就診時(shí)已失去手術(shù)機(jī)會(huì),經(jīng)肝動(dòng)脈化療栓塞成了主要的治療措施。然而化療栓塞后高復(fù)發(fā)轉(zhuǎn)移影響了患者的預(yù)后。多項(xiàng)研究結(jié)果表明[1-3],肝動(dòng)脈化療栓塞后殘存腫瘤組織微血管密度增加,殘存癌細(xì)胞侵襲轉(zhuǎn)移能力增強(qiáng),從而促進(jìn)肝癌化療栓塞后的復(fù)發(fā)轉(zhuǎn)移。因此,探討缺氧對(duì)肝癌細(xì)胞侵襲轉(zhuǎn)移能力的影響及其可能機(jī)制,為肝癌化療栓塞程度以及栓塞后抗腫瘤侵襲轉(zhuǎn)移治療的選擇,減少腫瘤復(fù)發(fā)轉(zhuǎn)移,改善肝癌患者生活質(zhì)量,延長(zhǎng)生命提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
人肝癌HepG2細(xì)胞株由廣州醫(yī)學(xué)院微生物免疫教研室提供;24孔 Transwell小室(孔徑8 μm)購(gòu)自Costar;Matrigel及層黏連蛋白購(gòu)自BD;變異型白細(xì)胞分化抗原(CD44v6)兔抗人多克隆抗體來(lái)源于武漢博士德生物工程有限公司;即用型免疫組化Biotin-SP-HRP試劑盒購(gòu)自北京鼎國(guó)公司;明膠蛋白購(gòu)自Amersco;反轉(zhuǎn)錄PCR試劑盒購(gòu)自TaKaRa。
2.1 細(xì)胞培養(yǎng) 人肝癌HepG2細(xì)胞培養(yǎng)于RPMI-1640培養(yǎng)液中(含10%小牛血清,青霉素1×105U/L、鏈霉素100 mg/L),將細(xì)胞置于CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱獨(dú)立密閉小室,充入5%CO2和95%N2混合氣體,用測(cè)氧儀分別調(diào)整氧濃度為1%、3%、5%,分別培養(yǎng)24 h,以常氧培養(yǎng)為對(duì)照組。
2.2 MTT法測(cè)定人肝癌HepG2細(xì)胞對(duì)基底膜的黏附能力 不同氧濃度培養(yǎng)24 h后的HepG2細(xì)胞,用胰酶消化為單細(xì)胞懸液,臺(tái)盼藍(lán)染色后計(jì)數(shù)。將matrigel包被96孔板,2%BSA封閉。細(xì)胞懸液加入包被好的96孔板中,作用30 min、60 min、90 min和120 min后吸出培養(yǎng)液及未黏附細(xì)胞,每孔加入5 mg/L MTT 20 μL,用酶標(biāo)儀于波長(zhǎng)570nm處測(cè)定各孔吸光度值(A值),以A值代表黏附細(xì)胞數(shù),按下列公式計(jì)算細(xì)胞黏附率及黏附抑制率:黏附率=(黏附前細(xì)胞A值-黏附后細(xì)胞A值)/黏附前細(xì)胞A值×100%;黏附抑制率=(對(duì)照組細(xì)胞黏附率-處理組細(xì)胞黏附率)/對(duì)照組細(xì)胞黏附率×100%。
2.3 Transwell小室觀察人肝癌細(xì)胞侵襲及游走能力 將人工基底膜Matrigel按上法稀釋后,每室100 μL均勻鋪于小室腔膜上,成膠后于小室濾膜下面均勻涂上5 μg層黏連蛋白,放進(jìn)24孔板中,紫外線(xiàn)照射2 h。實(shí)驗(yàn)前以預(yù)熱的無(wú)血清培養(yǎng)基37℃水化90 min后去除培養(yǎng)基,將上述單細(xì)胞懸液加入其中。不同條件下孵育箱培養(yǎng)24 h;取出各組Transwell小室,無(wú)水乙醇固定,HE染色,中性樹(shù)膠封片后光鏡下觀察(10×20)5個(gè)視野穿膜細(xì)胞數(shù),計(jì)算平均每個(gè)視野細(xì)胞。游走實(shí)驗(yàn)與侵襲實(shí)驗(yàn)相似,僅在Transwell小室腔上不鋪Matrigel。
2.4 免疫細(xì)胞化學(xué)染色(biotin-SP-HRP染色法)檢測(cè)HepG2細(xì)胞CD44v6的表達(dá) 不同氧濃度處理的HepG2細(xì)胞,按常規(guī)方法免疫細(xì)胞化學(xué)染色,方法參照免疫組化試劑盒說(shuō)明進(jìn)行。CD44v6主要表達(dá)于細(xì)胞膜與細(xì)胞漿中,其陽(yáng)性表達(dá)以細(xì)胞質(zhì)及質(zhì)膜出現(xiàn)明顯的黃棕色顆粒狀沉積為準(zhǔn)。排除爬片邊沿細(xì)胞。10×10低倍鏡下隨機(jī)選取10個(gè)細(xì)胞分布均勻的視野,每視野10×20倍鏡下隨機(jī)計(jì)數(shù)50個(gè)細(xì)胞。按細(xì)胞著色強(qiáng)弱分為4個(gè)等級(jí):無(wú)著色0分,淡黃色1分,棕黃色2分,棕褐色3分。按公式HSCORE=∑Pi(i+1)(i=0,1,2,3;Pi表示評(píng)分為 i的比例)計(jì)算爬片H-SCORE得分。該評(píng)分方法較具體、真實(shí)地從總體水平反映細(xì)胞內(nèi)蛋白表達(dá)的情況。陽(yáng)性率=(1+2+3)細(xì)胞數(shù)/總細(xì)胞數(shù)×100%。
2.5 膠質(zhì)酶譜分析 上述處理后的細(xì)胞使用常規(guī)方法抽提細(xì)胞總蛋白,并進(jìn)行蛋白定量。明膠酶譜分析按傳統(tǒng)方法:上樣含1 g/L明膠的10%SDSPAGE凝膠電泳,0.5%考馬斯亮藍(lán)染色,脫色。凝膠經(jīng)圖像分析軟件成像分析,讀取圖像反轉(zhuǎn)模式后各消化條帶的灰色度及其面積。
2.6 RT-PCR 上述處理后的細(xì)胞按常規(guī)方法用trizol試劑提取細(xì)胞總RNA,然后進(jìn)行一步法反轉(zhuǎn)錄PCR反應(yīng)。PCR引物序列如下。低氧誘導(dǎo)因子(hypoxia-inducible factor 1 alpha,HIF-1α):上游引物5'-GCTCCCTATATCCCAATGGAT-3',下游引物5'-CCATCATGTTCCATTTTTCGC-3',產(chǎn)物長(zhǎng)度 491 bp。血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子 (vascular endothelial growth factor,VEGF):上游引物 5'-ACATCTTCCAGGAGTACCCTGATGAG-3',下游引物 5'-GCATTCACATTTGTTGTGCTGT-3'。β-actin:上游引物5'-ACACTGTGCCCATCTACG-3',下游引物5'-CTCGTCATACTCCTGCTTG-3'。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳后,掃描圖像進(jìn)行密度分析,分別以各目的基因電泳條帶總灰度值與β-actin電泳條帶總灰度值之比進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。
由表1可見(jiàn),隨著HepG2細(xì)胞對(duì)Matrigel作用時(shí)間的延長(zhǎng),細(xì)胞黏附率增加。相同作用時(shí)間,經(jīng)低氧處理后HepG2細(xì)胞的黏附率也增高,其中3%氧處理后HepG2細(xì)胞的黏附率增高最為明顯,60 min達(dá)最高黏附抑制率-33.9%,與對(duì)照組比較均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);與對(duì)照組比較,5%氧處理組的黏附能力也顯著增強(qiáng)(P<0.05),而1%氧處理組差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。
表1 不同濃度氧處理HepG2細(xì)胞的黏附率變化Table 1.Adhesion rates of the HepG2 cells exposed to different concentrations of oxygen examined by MTT assay(%.±s.n=5)
表1 不同濃度氧處理HepG2細(xì)胞的黏附率變化Table 1.Adhesion rates of the HepG2 cells exposed to different concentrations of oxygen examined by MTT assay(%.±s.n=5)
*P <0.05,**P <0.01 vs control group.The inhibitory rates were given in parenthesis.
.66±2.88 1%O2 25.91±2.01(3.42)Group 30 min 60 min 90 min 120 min Control 26.83±2.31 46.58±2.34 67.53±2.78 82 82.83±2.31(-0.20)3%O2 36.46 ±2.10**(-35.9)44.29±2.45(4.91)66.33±2.59(1.78)92.07 ±2.44**(-11.4)5%O2 31.71±2.34*(-18.2)62.37 ±2.51**(-33.9)85.69 ±2.52**(-26.9)54.28 ±2.31**(-16.5)76.43 ±2.46**(-13.2)87.66±2.78*(-6.0)
由圖1、2可見(jiàn),低氧處理后,遷移和穿透基底膜的HepG2細(xì)胞數(shù)增多。與對(duì)照組比較,3%氧處理組和5%氧處理組穿透基底膜及遷移的細(xì)胞均顯著增加(P<0.05,n=5),而1%氧處理后無(wú)顯著差異(P >0.05),見(jiàn)表2。
HepG2細(xì)胞中CD44v6陽(yáng)性信號(hào)主要位于細(xì)胞膜與細(xì)胞漿內(nèi),呈黃棕色顆粒沉積,見(jiàn)圖3,常氧狀態(tài)下培養(yǎng)的HepG2細(xì)胞CD44v6陽(yáng)性率為(91.70±0.55)%,H-SCORE得分為 2.85±0.06,見(jiàn)表 3。不同濃度氧處理后,僅3%和5%氧處理組表現(xiàn)為H-SCORE和陽(yáng)性率增高(P<0.01,n=5),以3%氧處理組最為顯著。與對(duì)照組比較,1%氧處理組CD44v6陽(yáng)性率和H-SCORE稍微下降,但無(wú)顯著差異(P>0.05)。
Figure 1.Effects of different concentrations of oxygen on metastasis ability of HepG2 cells(HE staining,×100).A:control;B:1%oxygen;C:3%oxygen;D:5%oxygen.圖1 不同濃度氧對(duì)HepG2細(xì)胞游走遷移的影響
Figure 2.Effects of different concentrations of oxygen on invasion ability of HepG2 cells(HE staining,×100).A:control;B:1%oxygen;C:3%oxygen;D:5%oxygen.圖2 不同濃度氧對(duì)HepG2細(xì)胞穿透基底膜的影響
如圖4所示,各組均可見(jiàn)2個(gè)主要條帶,根據(jù)分子量大小分別鑒定為MMP-9和MMP-2。根據(jù)灰度值分析,3%和5%氧處理組MMP-9和MMP-2的表達(dá)顯著增高(P<0.05,n=5),而1%氧處理組未見(jiàn)顯著差異(P>0.05)。
Figure 3.Changes of the expression of CD44v6 in HepG2 cells after treated with different concentrations of oxygen(immunostaining,×400).A:control;B:1%oxygen;C:3%oxygen;D:5%oxygen.圖3 不同缺氧狀態(tài)下人肝癌細(xì)胞CD44v6表達(dá)的變化
表2 不同濃度氧處理后穿透基底膜與游走遷移的細(xì)胞數(shù)Table 2.Numbers of invasive cells and migration cells after exposed to different concentrations of oxygen in the Transwell migration assays(±s.n=5)
表2 不同濃度氧處理后穿透基底膜與游走遷移的細(xì)胞數(shù)Table 2.Numbers of invasive cells and migration cells after exposed to different concentrations of oxygen in the Transwell migration assays(±s.n=5)
*P <0.05,**P <0.01 vs control group.
Group Migratory cells Invasive cells Control 99±2 80±9 1%O2 101±9 83±9 3%O2 134 ±9** 123 ±8**5%O2 118±9* 99±10*
表3 CD44v6蛋白在HepG2細(xì)胞中的H-SCORE評(píng)分Table 3.The H-SCORE and the positive rate of CD44v6 in HepG2 cells(±s.n=5)
表3 CD44v6蛋白在HepG2細(xì)胞中的H-SCORE評(píng)分Table 3.The H-SCORE and the positive rate of CD44v6 in HepG2 cells(±s.n=5)
*P <0.05,**P <0.01 vs control group.
Group H-SCORE Positive rate(%)Control 2.85±0.46 91.70±1.51 1%O2 2.79±0.45 91.01±1.62 3%O2 3.54 ±0.39* 97.33 ±1.54**5%O2 3.21±0.42 94.67±1.58*
不同氧處理后應(yīng)用反轉(zhuǎn)錄PCR檢測(cè)HIF-1α和VEGF的轉(zhuǎn)錄水平。根據(jù)灰度密度的統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,3%和5%氧處理組HIF-1α和VEGF的表達(dá)顯著增高(P<0.05,n=5),而1%氧處理組未見(jiàn)顯著差異(P>0.05),見(jiàn)圖5。
Figure 4.Changes of the expression of MMP-9 and MMP-2 in cultured HepG2 cells after treated with different concentrations of oxygen(gelatin zymography).C:control;1,2,3:1%,3%and 5%oxygen treatment group,respectively.±s.n=5.*P<0.05,**P<0.01 vs control group.圖4 不同濃度氧處理HepG2細(xì)胞后MMP-9和MMP-2表達(dá)
缺氧是實(shí)體瘤微環(huán)境的基本特征之一[4],同時(shí)也是腫瘤發(fā)生惡性轉(zhuǎn)化甚至轉(zhuǎn)移的啟動(dòng)因素。早有研究表明低氧可增加腫瘤細(xì)胞侵襲和轉(zhuǎn)移。由于腫瘤內(nèi)血管結(jié)構(gòu)和功能異常所致的腫瘤細(xì)胞血供、氧供減少以及腫瘤細(xì)胞的快速增殖所致的腫瘤細(xì)胞氧耗增加,引起腫瘤細(xì)胞發(fā)生惡性轉(zhuǎn)化,促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的生長(zhǎng)、侵襲和轉(zhuǎn)移等惡性生物學(xué)行為,導(dǎo)致了腫瘤細(xì)胞的遺傳不穩(wěn)定性和惡性的選擇。原發(fā)性肝癌以生長(zhǎng)迅速為特征,缺氧在肝癌細(xì)胞內(nèi)部尤其是巨塊型肝癌非常常見(jiàn),肝動(dòng)脈化療栓塞加重腫瘤內(nèi)部細(xì)胞缺氧的程度,殘存的缺氧腫瘤細(xì)胞可能改變其侵襲轉(zhuǎn)移特性。本實(shí)驗(yàn)采用不同的低氧條件處理肝癌細(xì)胞24 h,研究腫瘤細(xì)胞的各項(xiàng)特性和相關(guān)蛋白的表達(dá)變化。結(jié)果證實(shí)了低氧應(yīng)激使腫瘤細(xì)胞的黏附、穿透基底膜以及運(yùn)動(dòng)能力發(fā)生了不同程度的改變,其中以3%氧對(duì)肝癌細(xì)胞影響最大,其黏附能力、穿透基底膜以及運(yùn)動(dòng)能力均明顯增強(qiáng),而1%氧反而降低肝癌細(xì)胞的黏附能力、運(yùn)動(dòng)能力以及穿透基底膜能力。該體外實(shí)驗(yàn)結(jié)果提示適度缺氧不但不能殺死腫瘤細(xì)胞,反而可能促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的表型改變,導(dǎo)致侵襲和轉(zhuǎn)移能力的增強(qiáng)。從臨床應(yīng)用角度,該結(jié)果提示肝動(dòng)脈化療栓塞可能給肝癌患者復(fù)發(fā)轉(zhuǎn)移提供了條件。由于肝癌組織的氧大部分來(lái)自肝動(dòng)脈,但也有一部分來(lái)自門(mén)靜脈,在肝動(dòng)脈化療栓塞后是否聯(lián)合門(mén)靜脈栓塞值得進(jìn)一步探討和研究。
Figure 5.Changes of the expression of HIF-1α and VEGF in HepG2 cells after treated with different concentrations of oxygen(RT-PCR).C:control;1,2,3:1%,3%and 5%oxygen treatment group,respectively.±s.n=5.*P <0.05,**P <0.01 vs control group.圖5 不同濃度氧處理HepG2細(xì)胞后HIF-1α和VEGF的轉(zhuǎn)錄水平
腫瘤細(xì)胞對(duì)基底膜的黏附是實(shí)現(xiàn)腫瘤細(xì)胞侵襲轉(zhuǎn)移的第一步,其黏附過(guò)程借助細(xì)胞膜上的黏附因子,其中CD44是目前研究較多的一種細(xì)胞黏附分子。它能與透明質(zhì)酸等多種配體分子結(jié)合,介導(dǎo)細(xì)胞與細(xì)胞間、細(xì)胞與細(xì)胞外基質(zhì)的黏附,通過(guò)黏附、遷移、滲透、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)等促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的侵襲和轉(zhuǎn)移。CD44v6是最早被發(fā)現(xiàn)的含有變異型外顯子v6編碼序列的CD44分子,不少研究提示CD44v6可促進(jìn)腫瘤細(xì)胞黏附與運(yùn)動(dòng)能力[5-6]。本實(shí)驗(yàn)采用免疫細(xì)胞化學(xué)技術(shù)檢測(cè)了不同低氧應(yīng)激后肝癌細(xì)胞CD44v6表達(dá)的改變,結(jié)果顯示隨著氧濃度的減少,CD44v6的表達(dá)先增高后降低,其中3%氧對(duì)肝癌細(xì)胞的影響最大,1%氧處理后CD44v6的表達(dá)反而有所降低,提示適度的缺氧可上調(diào)CD44v6在肝癌細(xì)胞的表達(dá)。已有體外實(shí)驗(yàn)顯示CD44v6參與了癌細(xì)胞與基底膜主要成分laminin和Ⅳ型膠原的黏附,其促進(jìn)腫瘤侵襲轉(zhuǎn)移可能與其促進(jìn)了腫瘤細(xì)胞與血管內(nèi)皮細(xì)胞、基底膜的黏附作用,同時(shí)提高了腫瘤細(xì)胞的遷移運(yùn)動(dòng)能力有關(guān)[5,7]。由此可見(jiàn)經(jīng)低氧應(yīng)激后人肝癌細(xì)胞對(duì)基底膜的黏附能力、穿透基底膜以及遷移運(yùn)動(dòng)能力的改變可能與CD44v6的表達(dá)改變有關(guān)。
此外,低氧在誘導(dǎo)腫瘤轉(zhuǎn)移前微環(huán)境形成中也有多種細(xì)胞因子參與[8]。已有多項(xiàng)研究表明,缺氧腫瘤細(xì)胞侵襲和轉(zhuǎn)移能力的改變可能與HIF-1α表達(dá)的增加密切相關(guān),后者上調(diào)VEGF、MMP-9、MMP-2等轉(zhuǎn)移相關(guān)因子的表達(dá)[9-10]。這些因子由低氧誘導(dǎo),如HIF-1α和VEGF,在遠(yuǎn)端轉(zhuǎn)移前,器官依次誘導(dǎo)炎癥因子和基質(zhì)金屬蛋白酶表達(dá),從而創(chuàng)造了一個(gè)易于使腫瘤細(xì)胞進(jìn)入的良好環(huán)境,并改變了腫瘤細(xì)胞的侵襲和轉(zhuǎn)移能力[11]。本研究就HIF-1α、VEGF、MMP-9、MMP-2等腫瘤侵襲轉(zhuǎn)移相關(guān)因子,觀察不同缺氧程度下這些相關(guān)因子的表達(dá)變化。結(jié)果顯示與侵襲轉(zhuǎn)移能力的改變相平行,上述因子均表現(xiàn)為中度缺氧(3%氧)時(shí)表達(dá)上調(diào),推測(cè)缺氧相關(guān)的腫瘤細(xì)胞侵襲力改變可能通過(guò)HIF-1α途徑上調(diào)下游轉(zhuǎn)移相關(guān)因子VEGF、MMP-9和MMP-2的表達(dá),增強(qiáng)腫瘤細(xì)胞穿透基質(zhì)、運(yùn)動(dòng)等侵襲轉(zhuǎn)移能力。腫瘤細(xì)胞即使在氧供應(yīng)充分時(shí),也以糖無(wú)氧酵解形式獲取能量,在低氧環(huán)境下,這種糖酵解能力增強(qiáng),進(jìn)而導(dǎo)致線(xiàn)粒體功能障礙,產(chǎn)生更多中間代謝產(chǎn)物(如丙酮酸等),后者可被腫瘤細(xì)胞利用以合成轉(zhuǎn)移相關(guān)因子及核酸等,從而促進(jìn)腫瘤的生長(zhǎng)[12]。因此,通過(guò)尋求一個(gè)合理靶點(diǎn)調(diào)控這一相關(guān)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,降低MMPs的分泌和表達(dá),有望降低因缺氧導(dǎo)致的腫瘤細(xì)胞侵襲能力增強(qiáng),對(duì)肝癌的防治可能具有重大意義。但腫瘤細(xì)胞的侵襲和轉(zhuǎn)移是個(gè)復(fù)雜的多步驟過(guò)程,其中包括多種轉(zhuǎn)移相關(guān)因子表達(dá)的改變[13-14],缺氧狀態(tài)下肝癌細(xì)胞侵襲和轉(zhuǎn)移能力改變的機(jī)制還有待進(jìn)一步闡明。
[1] Leeawat K,Laisupasin P,Kiatdilokrut A,et al.The effect of doxorubicin on the changes of serum vascular endothelial growth factor(VEGF)in patients with hepatocellular carcinoma after transcatheter arterial chemoembolization(TACE)[J].J Med Assoc Thai,2008,91(10):1539-1543.
[2] Sergio A,Cristofori C,Cardin R,et al.Transcatheter arterial chemoembolization(TACE)in hepatocellular carcinoma(HCC):the role of angiogenesis and invasiveness[J].Am J Gastroenterol,2008,103(4):914-921.
[3] Xiao EH,Guo D,Bian DJ.Effect of preoperative transcatherter arterial chemoembolization on angiogenesis of hepatocellular carcinoma cells[J].World J Gastroenterol,2009,15(36):4582-4586.
[4] Brahimi-Horn MC,Chiche J,Pouyssegur J.Hypoxia and cancer[J].J Mol Med,2007,85(12):1301-1307.
[5] Jha RK,Ma Q,Chen S,et al.Relationship of fibronectin and CD44v6 expression with invasion growth and metastasis of liver cancer[J].Cancer Invest,2009,27(3):324-328.
[6] Son KD,Kim TJ,Lee YS,et al.Comparative analysis of immunohistochemical markers with invasiveness and histologic differentiation in squamous cell carcinoma and basal cell carcinoma of the skin[J].J Surg Oncol,2008,97(7):615-620.
[7] Jung T,Gross W,Z?ller M.CD44v6 coordinates tumor matrix-triggered motility and apoptosis resistance[J].J Biol Chem,2011,286(18):15862-15874.
[8] Kaplan RN,Rafli S,Lyden D.Preparing the“soil”:the premetastatic niche[J].Cancer Res,2006,66(23):11089-11093.
[9] 聶應(yīng)明,戴碧濤.低氧對(duì)白血病細(xì)胞株Raji細(xì)胞侵襲轉(zhuǎn)移能力的影響[J].腫瘤防治研究,2010,37(1):42-46.
[10] Sun B,Zhang D,Zhang S,et al.Hypoxia influences vasculogenic mimicry channel formation and tumor invasionrelated protein expression in melanoma[J].Cancer Lett,2007,249(2):188-197.
[11] Kleinman ME,Greives MR,Churgin SS,et al.Hypoxiainduced mediators of stem/progenitor cell trafficking are increased in children with hemangioma[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2007,27(12):2664-2670.
[12] Silletti S,Paku S,Raz A.Tumor cell motility and metastasis:autocrine motility factor as an example of ecto/exoenzyme cytokines[J].Pathol Oncol Res,1997,3(3):230-254.
[13] 施小寧,陶思豐,陳 力,等.小干擾RNA抑制CD97的表達(dá)及其對(duì)胃癌細(xì)胞遷移和侵襲能力的影響[J].中國(guó)病理生理雜志,2011,27(7):1285-1289.
[14] 楊海峰,朱林燕,鄭廣娟,等.低氧-復(fù)氧對(duì)人鼻咽癌細(xì)胞增殖、細(xì)胞周期、黏附和侵襲能力的影響[J].中國(guó)病理生理雜志,2011,27(9):1741-1745.