金錦蓮,謝曉晶,柯 紅,王新宇,周海燕,李 昕 綜述,吳發(fā)明 審校
(三峽大學(xué)第三臨床醫(yī)學(xué)院/葛洲壩集團中心醫(yī)院消化內(nèi)科,湖北宜昌 443002)
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MicroRNA與胃癌化療耐藥相關(guān)性研究進展
金錦蓮,謝曉晶,柯 紅,王新宇,周海燕,李 昕 綜述,吳發(fā)明△審校
(三峽大學(xué)第三臨床醫(yī)學(xué)院/葛洲壩集團中心醫(yī)院消化內(nèi)科,湖北宜昌 443002)
微RNA;胃腫瘤;化療耐藥;藥物外排;藥物靶點
多藥耐藥(MDR)的特征在于腫瘤細胞在使用單一化療藥甚至是第1次使用該藥后,就對各種結(jié)構(gòu)和功能不同的抗腫瘤藥物發(fā)生耐藥[1]。這種現(xiàn)象主要是由阻止藥物靶向作用的分子改變產(chǎn)生的,該過程通過外排泵的上調(diào)來實現(xiàn),其他因素如有缺陷的細胞凋亡、藥物靶點的改變也能參與MDR的進展[2]。雖然MDR性的分子機制已被廣泛研究,但現(xiàn)已發(fā)現(xiàn)的機制并不能完全解釋MDR。微RNA(microRNA,miRNA)是一種非編碼小分子RNA,可通過靶向結(jié)合mRNAs的3′非翻譯區(qū)互補序列在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控腫瘤基因,miRNA在腫瘤化療耐藥也起到關(guān)鍵作用[3]。多項研究表明,miRNA可能通過增加化療藥物外排,參與胃癌細胞凋亡逃逸和改變藥物靶點等途徑參與胃癌化療藥物耐藥的機制[3-5]。為進一步研究MDR的機制,從而為胃癌患者提供更有效的治療,現(xiàn)對miRNAs參與胃癌細胞MDR的機制綜述如下。
MDR現(xiàn)象與觸發(fā)藥物外排的細胞膜轉(zhuǎn)運蛋白的過表達有關(guān),其中最主要的是腺苷三磷酸(ATP)結(jié)合盒(ABC)轉(zhuǎn)運蛋白家族[6]。該家族有49個成員,分為7個亞類(ABCA-ABCA)。這個家族的經(jīng)典途徑是P-糖蛋白(P-gp),這是第一個被發(fā)現(xiàn)的ABC轉(zhuǎn)運蛋白家族成員。P-gp的相對分子質(zhì)量為170×103,由MDR1(ABCB1)基因編碼,可以誘導(dǎo)多種疏水劑的清除,包括抗腫瘤藥物。P-gp的過表達促進了腫瘤細胞對包括拓撲異構(gòu)酶抑制劑、紫杉烷類和抗代謝類藥在內(nèi)的許多藥物耐藥[7]。研究顯示,P-gp過表達與包括結(jié)腸癌、肝癌、腎癌和乳腺癌在內(nèi)的許多腫瘤的化療無效有關(guān)[8]。最近的報道也證實了P-gp的異常表達參與了胃癌耐藥的發(fā)展[9]。下文討論了miRNA通過影響P-gp的表達來調(diào)節(jié)胃癌的化療耐藥。
1.1 miRNA-508-5p Shang等[10]研究表明,miRNA-508-5p促進了胃癌MDR的發(fā)展,體外和體內(nèi)實驗表明miRNA-508-5p的過表達能有效逆轉(zhuǎn)胃癌長春新堿(VCR)耐藥細胞株SGC7901/VCR和阿霉素(ADR)耐藥細胞株SGC7901/ADR對VCR、ADR、5氟尿嘧啶和順鉑(DDP)的耐藥,而miRNA-508-5p的缺失可以降低其對藥物的敏感性。此外,miRNA-508-5p能夠直接靶向作用于P-gp基因和鋅指蛋白1基因,從而在蛋白質(zhì)和mRNA水平抑制其表達。鋅帶狀結(jié)構(gòu)域1(ZNRD1)是一個MDR相關(guān)基因,是Bcl-2蛋白的調(diào)節(jié)因子,在化療耐藥腫瘤細胞中高表達,并且其敲除可以增加胃癌細胞對多種抗腫瘤藥物的敏感性[11]。P-gp和ZNRD1表達的抑制消除了miRNA-508-5p沉默誘導(dǎo)的化療耐藥。此外,他們還發(fā)現(xiàn),耐藥胃癌細胞對DDP和5-氟尿嘧啶的敏感性受ZNRD1的調(diào)節(jié),而P-gp與DDP和5-氟尿嘧啶的耐藥性無相關(guān)性。總之,該研究結(jié)果顯示miRNA-508-5p可以通過靶向作用于P-gp(ABCB1)和ZNRD1,降低細胞內(nèi)抗腫瘤藥物水平及促進化療誘導(dǎo)的胃癌耐藥細胞凋亡,進而參與胃癌細胞MDR的調(diào)控。他們還證實了miRNA-508-5p能在體內(nèi)調(diào)節(jié)耐藥的形成。因此,miRNA-508-5p/ABCA1/ZNRD1信號通路在胃癌MDR表型中起著至關(guān)重要的作用。此外,miRNA-508-5p可能為克服胃癌患者耐藥提供一種新的治療策略。由于miRNA作為一種重要的新的基因表達調(diào)控機制且存在廣泛的作用靶點,其他miRNA分子也可能參與了胃癌MDR的調(diào)控。
1.2 miRNA-106a miRNA-106a是miRNA-17家族重要的致癌成員之一[12],在包括胃癌、肝癌、肺癌等多種腫瘤中過表達。miRNA-106a在胃癌MDR形成中發(fā)揮著重要作用[13],與親本細胞SGC7901相比,miRNA-106a在阿霉素耐藥細胞系SGC7901/ADR和VCR耐藥細胞系SGC7901/VCR中高表達。此外,上調(diào)或下調(diào)miRNA-106a表達可以改變胃癌細胞對抗腫瘤化療藥物的敏感性,如DDP、ADR和5-氟尿嘧啶,為進一步證實轉(zhuǎn)染miRNA-106a能夠顯著增強P-gp的表達,研究給予P-gp的抑制劑(維拉帕米)處理后,抑制miRNA-106a轉(zhuǎn)染導(dǎo)致了細胞內(nèi)ADR的升高,這表明miRNA-106a可能通過上調(diào)P-gp的表達來增加藥物的外排。此外,miRNA-106a可促進抗凋亡蛋白Bcl-2的表達,并抑制促凋亡蛋白Bax的表達,進而抑制了胃癌細胞對藥物介導(dǎo)的細胞凋亡的敏感性。此外,該課題組也驗證了RUNX3基因是miRNA-106a的作用靶點。胃癌中runt相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子3(RUNX3)被認為是一種腫瘤抑制因子。Guo等[14]研究表明,RUNX3通過抑制MDR基因MDR-1(P-gp)、MDR蛋白-1(MRP1)和Bcl-2的表達使胃癌細胞對抗腫瘤藥物更敏感。已有研究證明了RUNX3在結(jié)腸直腸癌、乳腺癌和神經(jīng)膠質(zhì)瘤等多種腫瘤中的表達下調(diào)[15]。這項研究結(jié)果表明,miRNA-106a可以抑制RUNX3的表達。在胃癌細胞系SGC7901中外源性表達RUNX3可以消除miRNA-106a對胃癌細胞化療敏感性的影響。這些結(jié)果表明miRNA-106a通過加快藥物外排,減少藥物介導(dǎo)的凋亡,最重要的是靶向作用于RUNX3來促進胃癌細胞對抗腫瘤藥物的耐藥。
1.3 miRNA-27a miRNA-27a也參與了胃癌細胞MDR的形成。miRNA-27a的下調(diào)增加了胃癌細胞MKN45對抗腫瘤藥物,如ADR、VCR、5-氟尿嘧啶的敏感性。如miRNA-27調(diào)節(jié)P-gp的表達一樣,其下調(diào)增加了ADR水平,降低了ADR的釋放指數(shù)。這些數(shù)據(jù)表明了胃癌細胞中miRNA-27a可能促進了MDR的發(fā)生,因此可以成為腫瘤治療的靶點[16]。
研究表明,細胞凋亡的減弱可促進MDR的發(fā)生、生長和凋亡途徑,如絲氨酸蘇氨酸蛋白激酶(Akt)、Bcl-2和NF-κB通路的變化,在決定化療療效中起重要作用[17]。癌細胞的無限增殖和生長通常依賴一些抗凋亡蛋白,這也是癌細胞的標志之一。Bcl-2家族是抗凋亡蛋白最典型的代表之一,也是一種原癌基因[18],其通過減少細胞色素C的釋放來調(diào)控線粒體途徑,從而使腫瘤細胞凋亡逃逸,研究發(fā)現(xiàn)Bcl-2過表達能夠促進腫瘤細胞克服對細胞凋亡誘導(dǎo)藥物的耐藥性[19]。Bcl-2作為調(diào)控胃癌化療耐藥復(fù)雜分子網(wǎng)絡(luò)中重要的一員,其表達水平受數(shù)個miRNA的調(diào)控。同源性磷酸酶-張力蛋白基因(PTEN)是一個重要的腫瘤抑制因子,并參與了腫瘤耐藥,它可以通過PIP3的去磷酸化拮抗PI3K活性負性調(diào)控Akt信號通路[20]。腫瘤中PTEN蛋白功能的缺失很常見,其主要激活A(yù)kt通路,該通路可以通過抑制下游多個靶點促進細胞的生長和增殖。Akt的活化通過磷酸化各種遞質(zhì)在細胞增殖和生長等細胞內(nèi)主要生理過程中起著至關(guān)重要的作用。研究發(fā)現(xiàn),胃癌細胞中PTEN過表達可以抑制抗腫瘤藥物誘導(dǎo)的Akt的活化,增加腫瘤細胞對ADR和依托泊苷的敏感性,而PI3K抑制劑可以降低腫瘤細胞對ADR和依托泊苷的敏感性[21]。
2.1 miRNA與胃癌Bcl-2調(diào)節(jié)因子
2.1.1 miRNA-15b與miRNA-16 Xia等[22]首次利用VCR耐藥細胞株SGC7901/VCR作為胃癌MDR細胞系來研究miRNA在胃癌MDR發(fā)展中的作用,該研究檢測了SGC7901/VCR與對照組的miRNA表達譜差異。miRNA-15b、miRNA-15a和miRNA-16在SGC7901/VCR細胞系中表達下調(diào),上調(diào)miRNA-15b或miRNA-16表達可提高SGC7901/VCR細胞對ADR、依托泊苷、VCR、DDP的敏感性,而使用反義寡核苷酸抑制其表達后,又可增加胃癌細胞對這些抗腫瘤藥物的耐藥。因此,SGC7901/VCR細胞中miRNA-16和miRNA-15b表達水平的降低與Bcl-2蛋白過表達相關(guān)。這些數(shù)據(jù)表明miRNA-16和miRNA-15b通過靶向作用于Bcl-2,在調(diào)控胃癌對藥物介導(dǎo)凋亡的敏感性中起著關(guān)鍵作用,進而調(diào)控胃癌MDR的發(fā)展[23]。另一項研究使用磁性納米顆粒(MNPs)作為miRNA的運載體在胃癌耐藥細胞系SGC7901/ADR中過表達miRNA-16,從而降低抗腫瘤藥物耐藥性[24]。體外實驗中觀察到,經(jīng)miRNA-16/MNP處理后,顯著提高了ADR介導(dǎo)的耐藥細胞的凋亡。Bcl-2(miRNA-16直接作用靶點)表達水平的降低進一步證實了miRNA-16的有效轉(zhuǎn)運。體內(nèi)實驗中將miRNA-16/MNP注射到荷瘤小鼠體內(nèi),腫瘤生長受到抑制,以及胃癌耐藥細胞SGC7901/ADR對ADR的敏感性提高了。以上研究表明miRNA-16/MNP有望成為一種新的胃癌MDR的治療策略。
2.1.2 miRNA-34 研究表明,miRNA-34是抑癌蛋白p53的一個作用靶點,p53可以有效地誘導(dǎo)細胞凋亡[25]。超過50%的人類腫瘤會發(fā)生p53的突變,不同形式miRNA-34(a、b和c)表達水平可能與p53相關(guān)。P53直接調(diào)控miRNA-34家族的3個成員在組織中的表達水平,而miRNA-34直接調(diào)控Bcl-2的表達[26]。Bcl-2表達的上調(diào)和p53表達的下調(diào)可能是腫瘤化療耐藥的部分原因。因此,抑制Bcl-2及恢復(fù)p53的功能為克服腫瘤耐藥提供了一種新的治療策略,進而提高p53基因突變胃癌患者的治療效果。上調(diào)KatoⅢ細胞中miRNA-34的表達水平可以降低Bcl-2的表達水平,抑制腫瘤進展,促進caspase-3的激活及細胞周期G1期的停滯。研究表明,miRNA-34是p53信號傳導(dǎo)通路下游的腫瘤抑制因子,p53突變抑制胃癌細胞的腫瘤信號傳導(dǎo)通路,并可能成為p53功能缺失腫瘤患者一項新的治療方法[27]。Bcl-2表達的上調(diào)和p53表達的下調(diào)可能是腫瘤化療耐藥的部分原因。因此,抑制Bcl-2及恢復(fù)p53的功能為克服腫瘤耐藥提供了一種新的治療策略,進而提高p53基因突變胃癌患者的治療效果。上調(diào)KatoⅢ細胞中miRNA-34的表達水平可以降低Bcl-2的表達水平,抑制腫瘤進展,促進caspase-3的激活及細胞周期G1期的停滯。研究表明,miRNA-34是p53信號傳導(dǎo)通路下游的腫瘤抑制因子,p53突變抑制胃癌細胞的腫瘤信號傳導(dǎo)通路,并可能成為p53功能缺失腫瘤患者一項新的治療方法[28]。
2.1.3 miRNA-204 Sacconi等[29]研究了miRNA-204在胃癌中的作用,與配對的胃癌瘤旁組織相比,胃癌標本中miRNA-204的表達顯著下調(diào),相反,胃癌標本中Bcl-2蛋白染色顯著提高,而且,胃癌標本中Bcl-2蛋白染色提高與miRNA-204的下調(diào)有關(guān),miRNA-204通過選擇性作用于Bcl-2基因下調(diào)其表達。此外,胃癌細胞中miRNA-204的異常表達可以提高胃癌細胞株對5-氟尿嘧啶和奧沙利鉑的治療療效。而Bcl-2的過表達可以削弱抗腫瘤藥物誘導(dǎo)miRNA-204的促細胞凋亡活性[30]??傊琺iRNA-204的失活可能通過激活原癌基因Bcl-2及調(diào)節(jié)其異常表達,參與胃癌對標準化療方案的耐藥,可能成為胃癌患者一種新的治療方法。
2.1.4 miRNA-181b miRNA-181b是另一種能靶向作用于抗凋亡蛋白Bcl-2的miRNA[31],與SGC7901相比,人胃癌MDR細胞系SGC7901/VCR中miRNA-181b的表達下調(diào)。該報道還顯示,miRNA-181b過表達導(dǎo)致了Bcl-2表達水平降低,表明了miRNA-181b直接靶向作用于Bcl-2基因。此外miRNA-181b的外源性表達增加了SGC7901/VCR細胞對VCR介導(dǎo)的細胞凋亡的敏感性,也可以增加SGC7901/VCR細胞對5-氟尿嘧啶、ADR和依托泊苷的敏感性,而不影響其對拓撲替康的敏感性,因為Bcl-2基本不參與拓撲替康促進腫瘤細胞凋亡途徑。這些結(jié)果表明了miRNA-181b可以通過靶向作用于Bcl-2來調(diào)控細胞凋亡,進而調(diào)節(jié)腫瘤對某些抗腫瘤藥物的敏感性,從而促進胃癌MDR的發(fā)展。
2.1.5 miRNA-497 在人胃癌耐藥細胞系SGC7901/VCR中,miRNA-497的下調(diào)與Bcl-2基因的過表達有關(guān)[32]。miRNA-497的上調(diào)能降低Bcl-2蛋白的表達水平,并提高了SGC7901/VCR細胞對VCR介導(dǎo)的腫瘤細胞凋亡的敏感性。miRNA-497影響了SGC7901/VCR細胞對DDP、依托泊苷、ADR的治療療效,但不影響其對5-氟尿嘧啶的治療療效。這可能是由于5-氟尿嘧啶能通過Fas/FasL途徑誘導(dǎo)某類細胞的凋亡。因此,影響線粒體細胞色素C釋放的因素,如Bcl-2的上調(diào),會輕微影響細胞對抗腫瘤藥物的治療療效??傊?,這些研究結(jié)果表明miRNA-497靶向作用于抗凋亡基因Bcl-2來調(diào)控細胞凋亡是其參與胃癌細胞MDR的一種機制。
2.1.6 miRNA-200bc/429家族 miRNA-200家族分為miRNA-200bc/429家族[33]和miRNA-200a/141家族[34]兩大類,其中miRNA-200bc/429家族包括miRNA-200b、miRNA-200c和miRNA-429,而miRNA-200a/141家族包括miRNA-200a和miRNA-141。這兩個亞群的種子區(qū)域只有一個核苷酸序列不同。miRNA-200b在乳腺癌DDP耐藥細胞系及非小細胞肺癌多西他賽耐藥細胞系中的表達下調(diào)。然而抑制miRNA-200b的表達提高了人膽管癌細胞系對吉西他濱誘導(dǎo)的細胞凋亡的敏感性。這些結(jié)果表明,miRNA的作用具有細胞類型特異性。miRNA-200bc/429家族也可以促進胃癌細胞MDR的發(fā)展,與親代細胞系相比,miRNA-200bc/429家族在人胃癌MDR細胞系SGC7901/VCR中的表達降低,熒光素酶報告方法證實了miRNA-200b/429靶向作用于Bcl-2和XIAP基因,miRNA-200b/429家族表達水平升高降低了Bcl-2和X連鎖凋亡抑制蛋白(XIAP)蛋白的水平,增加了胃癌耐藥細胞系SGC7901/VCR對VCR誘導(dǎo)的細胞凋亡的敏感性。XIAP屬于細胞凋亡蛋白家族(IAP),其在腫瘤耐藥的發(fā)展中發(fā)揮了作用。此外,miRNA-200b/429家族可以增加耐藥細胞對DDP、依托泊苷和ADR的敏感性,但不增加其對5-氟尿嘧啶的敏感性,可能原因在于5-氟尿嘧啶能通過Fas/FasL途徑誘導(dǎo)凋亡,因此影響細胞色素C釋放的因子,如XIAP和Bcl-2過表達,不會顯著影響細胞對5-氟尿嘧啶介導(dǎo)的凋亡的敏感性??傊?,miRNA-200b/429家族通過靶向作用于抗凋亡基因XIAP和Bcl-2來調(diào)控細胞凋亡是其調(diào)節(jié)胃癌MDR細胞對一些抗腫瘤藥物敏感性的通路之一[35]。
2.2 miRNA與PTEN/Akt信號通路調(diào)節(jié)因子
2.2.1 miRNA-21 研究發(fā)現(xiàn),miRNA-21在腦腫瘤、乳腺癌、宮頸癌、前列腺癌、肝癌和胃癌等許多腫瘤中表達上調(diào),下調(diào)miRNA-21可以顯著抑制胃癌細胞的增殖,促進細胞凋亡,并且miRNA-21在胃癌腫瘤的化療耐藥中發(fā)揮重要作用[36]。與親代細胞SGC7901相比,胃癌DDP耐藥細胞系SGC7901/DDP中miRNA-21的表達升高,miRNA-21的過表達可以抑制DDP誘導(dǎo)的細胞凋亡和抗增殖作用。研究表明,miRNA-21表達上調(diào)可以導(dǎo)致PTEN表達下調(diào)及PI3K/Akt通路的活化,進而促進腫瘤細胞生長并介導(dǎo)腫瘤細胞對DDP的耐藥。此外,利用PI3K抑制劑抑制Akt途徑能削弱miRNA-21介導(dǎo)的細胞生長。另一項研究表明,miRNA-21/PTEN通路在調(diào)控人表皮生長因子受體-2(HER-2)陽性胃癌細胞對抗腫瘤藥物曲妥珠單抗敏感性中發(fā)揮重要作用[37]。ErbB2是胃癌發(fā)生、發(fā)展的關(guān)鍵因子,曲妥珠單抗是一種靶向作用于ErbB2胞外域的重組抗ErbB2單克隆抗體,其作為特定腫瘤靶向治療的模式,為ErbB2過表達腫瘤患者的治療帶來了相當(dāng)大的優(yōu)勢。miRNA-21表達上調(diào)可以降低PTEN的表達及增加Akt的磷酸化,進而降低HER2陽性胃癌細胞對曲妥單抗介導(dǎo)的凋亡的敏感性,而抑制miRNA-21的表達,使腫瘤細胞對其敏感性增加。然而,胃癌細胞中miRNA-21表達水平的改變并沒有直接影響HER2的表達。這些結(jié)果表明,miRNA-21/PTEN通路有望為闡明胃癌細胞曲妥珠單抗耐藥的分子機制提供關(guān)鍵線索,進而為胃癌患者建立個體化的治療方案。
2.2.2 miRNA-19 胃癌MDR細胞系(SGC7901/VCR和SGC7901/ADR)中miRNA-19a的上調(diào)及miRNA-19a/b表達的變化可以調(diào)控胃癌細胞對細胞毒性藥物如DDP、5-氟尿嘧啶和ADR的敏感性[38]。
miRNA-19a/b影響了關(guān)鍵的凋亡相關(guān)分子,包括Bcl-2和Bax蛋白,降低了腫瘤細胞對細胞毒性藥物介導(dǎo)凋亡的敏感性,進而誘導(dǎo)胃癌細胞MDR的發(fā)生。PTEN也是miRNA-19a/b的直接作用靶點。在人胃癌MDR細胞中轉(zhuǎn)染miRNA-19a/b可以上調(diào)Akt的表達,下調(diào)PTEN的表達。這些數(shù)據(jù)說明了miRNA-19a/b可以通過調(diào)控PTEN/Akt通路來抑制藥物誘導(dǎo)的細胞凋亡。此外胃癌細胞中miRNA-19a/b促進MDR的發(fā)生還可以通過加速藥物外排來實現(xiàn),研究證實了在人胃癌MDR細胞系中轉(zhuǎn)染miRNA-19a/b可顯著上調(diào)P-gp的表達,使用維拉帕米抑制P-gp可以降低由miRNA-19a/b介導(dǎo)的細胞內(nèi)升高的ADR,這表明P-pg過表達能促進miRNA-19a/b介導(dǎo)的藥物外排。總之,這些發(fā)現(xiàn)證實了人胃癌細胞中的miRNA-19a/b能靶向作用于PTEN來調(diào)控MDR的發(fā)展。
2.2.3 miRNA-106 miRNA-106a在胃癌中表達上調(diào),胃癌細胞中miRNA-106a異常表達可以促進DDP耐藥的發(fā)展,在SGC7901/DDP細胞中轉(zhuǎn)染miRNA-106a抑制劑可以增加DDP的細胞毒性[39]。進一步研究表明,miRNA-106a介導(dǎo)DDP耐藥機制涉及PTEN的表達及其下游通路,miRNA-106a表達上調(diào)可以下調(diào)PTEN蛋白的表達,并可放大PI3K/Akt信號通路,這表明PTEN是miRNA-106a的作用靶點。同樣地,用PI3K抑制劑治療胃癌可削弱miRNA-106a誘導(dǎo)的Akt通路的激活,并可顯著抑制miRNA-106a介導(dǎo)的細胞生長和對DDP的耐藥。
3.1 miRNA-34C-5P[40]藥物靶點的改變是細胞化療耐藥的另一機制,miRNA也能通過影響藥物作用靶點來改變細胞對抗腫瘤藥物的反應(yīng)。微管相關(guān)蛋白(MAPT)通過促進微管蛋白形成微管來穩(wěn)定微管結(jié)構(gòu),在幾種腫瘤中發(fā)現(xiàn)其與微管靶向藥物耐藥有關(guān)。研究發(fā)現(xiàn)胃癌患者中MAPT表達的減少與紫杉醇治療有效相關(guān),MAPT下調(diào)可能提高微管對紫杉醇的敏感性[41]。最近研究發(fā)現(xiàn)miRNA-34C-5P可以調(diào)節(jié)MAPT蛋白的表達,MAPT的3′非翻譯末端有miRNA-34C-5P的結(jié)合位點,紫杉醇耐藥胃癌組織的細胞中miRNA-34c-5P表達下調(diào)及MAPT蛋白升高。miRNA-34C-5P的上調(diào)顯著降低了MAPT的表達,進而增加了胃癌耐藥細胞對紫杉醇的敏感性。進一步研究表明,胃癌細胞中miRNA-34C-5P的表達主要受miRNA-34C-5P啟動子附近CpG島甲基化的調(diào)控。因此,miRNA-34c基因啟動子甲基化的調(diào)節(jié)可能在miRNA-34c-5P的表達中起著至關(guān)重要的作用。此外,miRNA-34啟動子附近CpG島甲基化能夠調(diào)控miRNA-34C-5P的表達,因此其可以間接影響胃癌細胞的化療敏感性。miRNA-34C-5P與胃癌細胞耐藥表型有關(guān),恢復(fù)其表達有望為胃癌患者提供一個有前景的治療策略。
3.2 miRNA let-7i miRNA let-7i是最重要的腫瘤抑制miRNA之一,研究發(fā)現(xiàn)其在許多腫瘤中表達下調(diào),并與腫瘤進展和化療耐藥相關(guān)[42]。最近一項研究探討了其在預(yù)測中晚期胃癌患者新輔助治療療效中可能的作用,let-7i表達下調(diào)與患者化療耐藥和總生存期短顯著相關(guān)。let-7i直接作用于幾個功能性分子靶點,其中MYC、RAS、HMGA2、E2F2和NF2是眾所周知的癌基因。然而,let-7i在腫瘤進展和抗腫瘤藥物耐藥中的作用仍不完全清楚[43]??傊琹et-7i可能成為調(diào)控化療敏感性的治療靶點和預(yù)測晚期胃癌患者生存期及預(yù)后的潛在性生物標志物。
[1]Kachalaki S,Ebrahimi M,Mohamed Khosroshahi L,et al.Cancer chemoresistance;biochemical and molecular aspects:a brief overview[J].Eur J Pharm Sci,2016,89:20-30.
[2]Marin JJ,Al-Abdulla R,Lozano E,et al.Mechanisms ofresistance to chemotherapy in gastric cancer[J].Anticancer Agents Med Chem,2016,16(3):318-334.
[3]Magee P,Shi L,Garofalo M.Role of microRNAs in chemoresistance[J].Ann Transl Med,2015,3(21):332.
[4]Bourguignon LY.Matrix hyaluronan promotes specific microRNA upregulation leading to drug resistance and tumor progression[J].Int J Mol Sci,2016,17(4):517.
[5]Riquelme I,Letelier P,Riffo-Campos A L,et al.Emerging role of miRNAs in the drug resistance of gastric cancer[J].Int J Mol Sci,2016,17(3):424.
[6]Holohan C,Van Schaeybroeck S,Longley DB,et al.Cancer drug resistance:an evolving paradigm[J].Nat Rev Cancer,2013,13(10):714-726.
[7]Mohseni M,Samadi N,Ghanbari P,et al.Co-treatment by docetaxel and vinblastine breaks down P-glycoprotein mediated chemo-resistance[J].Iran J Basic Med Sci,2016,19(3):300-309.
[8]Noguchi K,Katayama K,Sugimoto Y.Human ABC transporter ABCG2/BCRP expression in chemoresistance:basic and clinical perspectives for molecular cancer therapeutics[J].Pharmgenomics Pers Med,2014,7:53-64.
[9]Geng M,Wang L,Chen X,et al.The association between chemosensitivity and Pgp,GST-pi and Topo II expression in gastric cancer[J].Diagn Pathol,2013,8:198.
[10]Shang Y,Zhang Z,Liu Z,et al.miR-508-5p regulates multidrug resistance of gastric cancer by targeting ABCB1 and ZNRD1[J].Oncogene,2014,33(25):3267-3276.
[11]Hong L,Qiao T,Han Y,et al.ZNRD1 mediates resistance of gastric cancer cells to methotrexate by regulation of IMPDH2 and Bcl-2[J].Biochem Cell Biol,2006,84(2):199-206.
[12]Dylla L,Jedlicka P.Growth-promoting role of the miR-106a~363 cluster in Ewing sarcoma[J].PLoS One,2013,8(4):e63032.
[13]Zhang Y,Lu Q,Cai X.MicroRNA-106a induces multidrug resistance in gastric cancer by targeting RUNX3[J].FEBS Lett,2013,587(18):3069-3075.
[14]Guo C,Ding J,Yao L,et al.Tumor suppressor gene Runx3 sensitizes gastric cancer cells to chemotherapeutic drugs by downregulating Bcl-2,MDR-1 and MRP-1[J].Int J Cancer,2005,116(1):155-160.
[15]Chen F,Liu X,Bai J,et al.The emerging role of RUNX3 in cancer metastasis(Review)[J].Oncol Rep,2016,35(3):1227-1236.
[16]Zhao XH,Yang L,Hu JG.Down-regulation of miR-27a might inhibit proliferation and drug resistance of gastric cancer cells[J].J Exp Clin Cancer Res,2011,30:55.
[17]Fulda S.Targeting apoptosis for anticancer therapy[J].Semin Cancer Biol,2015,31(12):84-88.
[18]Ryszczuk E,Roszko-Kirpsza I,Guzinska-Ustymowicz K,et al.EGFR and Bcl-2 in gastric mucosa of children infected with Helicobacter pylori[J].Postepy Hig Med Dosw(Online),2016,70:258-264.
[19]de Graaff MA,de Rooij MA,van den Akker BE,et al.Inhibition of Bcl-2 family members sensitises soft tissue leiomyosarcomas to chemotherapy[J].Br J Cancer,2016,114(11):1219-1226.
[20]Ma Y,Zhang P,Gao Y,et al.Evaluation of AKT phosphorylation and PTEN loss and their correlation with the resistance of rituximab in DLBCL[J].Int J Clin Exp Pathol,2015,8(11):14875-14884.
[21]Yu HG,Ai YW,Yu LL,et al.Phosphoinositide 3-kinase/Akt pathway plays an important role in chemoresistance of gastric cancer cells against etoposide and doxorubicin induced cell death[J].Int J Cancer,2008,122(2):433-443.
[22]Xia L,Zhang DX,Du R,et al.miR-15b and miR-16 modulate multidrug resistance by targeting BCL2 in human gastric cancer cells[J].Int J Cancer,2008,123(2):372-379.
[23]Zhang JP,Song Y,Zhang CL,et al.Circulating MiR-16-5p and MiR-19b-3p as two novel potential biomarkers to indicate progression of gastric cancer[J].Theranostics,2015,5(7):733-745.
[24]Sun Z,Song X,Li X,et al.In vivo multimodality imaging of miRNA-16 iron nanoparticle reversing drug resistance to chemotherapy in a mouse gastric cancer model[J].Nanoscale,2014,6(23):14343-14353.
[25]Chang TC,Wentzel EA,Kent OA,et al.Transactivation of miR-34a by p53 broadly influences gene expression and promotes apoptosis[J].Mol Cell,2007,26(5):745-752.
[26]Bommer GT,Gerin I,F(xiàn)eng Y,et al.p53-mediated activation of miRNA34 candidate tumor-suppressor genes[J].Curr Biol,2007,17(15):1298-1307.
[27]Cortez MA,Ivan C,Valdecanas D,et al.PDL1 Regulation by p53 via miR-34[J].J Natl Cancer Inst,2015,108(1):pii:djv303.
[28]Ji Q,Hao X,Meng Y,et al.Restoration of tumor suppressor miR-34 inhibits human p53-mutant gastric cancer tumorspheres[J].BMC Cancer,2008,8:266.
[29]Sacconi A,Biagioni F,Canu V,et al.miR-204 targets Bcl-2 expression and enhances responsiveness of gastric cancer[J].Cell Death Dis,2012,3:e423.
[30]Wang X,Qiu W,Zhang G,et al.MicroRNA-204 targets JAK2 in breast cancer and induces cell apoptosis through the STAT3/BCl-2/survivin pathway[J].Int J Clin Exp Pathol,2015,8(5):5017-5025.
[31]Zhu W,Shan X,Wang T,et al.miR-181b modulates multidrug resistance by targeting BCL2 in human cancer cell lines[J].Int J Cancer,2010,127(11):2520-2529.
[32]Zhu W,Zhu D,Lu S,et al.miR-497 modulates multidrug resistance of human cancer cell lines by targeting BCL2[J].Med Oncol,2012,29(1):384-391.
[33]Uhlmann S,Zhang JD,Schw?ger A,et al.miR-200bc/429 cluster targets PLCgamma1 and differentially regulates proliferation and EGF-driven invasion than miR-200a/141 in breast cancer[J].Oncogene,2010,29(30):4297-4306.
[34]Pogribny IP,F(xiàn)ilkowski JN,Tryndyak VP,et al.Alterations of microRNAs and their targets are associated with acquired resistance of MCF-7 breast cancer cells to cisplatin[J].Int J Cancer,2010,127(8):1785-1794.
[35]Zhu W,Xu H,Zhu D,et al.miR-200bc/429 cluster modulates multidrug resistance of human cancer cell lines by targeting BCL2 and XIAP[J].Cancer Chemother Pharmacol,2012,69(3):723-731.
[36]Yang SM,Huang C,Li XF,et al.miR-21 confers cisplatin resistance in gastric cancer cells by regulating PTEN[J].Toxicology,2013,306:162-168.
[37]Eto K,Iwatsuki M,Watanabe M,et al.The microRNA-21/PTEN pathway regulates the sensitivity of HER2-positive gastric cancer cells to trastuzumab[J].Ann Surg Oncol,2014,21(1):343-350.
[38]Wang F,Li T,Zhang B,et al.MicroRNA-19a/b regulates multidrug resistance in human gastric cancer cells by targeting PTEN[J].Biochem Biophys Res Commun,2013,434(3):688-694.
[39]Fang Y,Shen HL,Li H,et al.miR-106a confers cisplatin resistance by regulating PTEN/Akt pathway in gastric cancer cells[J].Acta Biochim Et Biophys Sin(Shanghai),2013,45(11):963-972.
[40]Wu H,Huang M,Lu MJ,et al.Regulation of microtubule-associated protein tau(MAPT) by miR-34c-5p determines the chemosensitivity of gastric cancer to paclitaxel[J].Cancer Chemother Pharmacol,2013,71(5):1159-1171.
[41]Mimori K,Sadanaga N,Yoshikawa Y,et al.Reduced tau expression in gastric cancer can identify candidates for successful paclitaxel treatment[J].Br J Cancer,2006,94(12):1894-1897.
[42]Liu K,Qian T,Tang LM,et al.Decreased expression of microRNA let-7i and its association with chemotherapeutic response in human gastric cancer[J].World J Surg Oncol,2012,10:225.
[43]Loffe Y,Hill A,McCarthy M,et al.The epithelial-mesenchymal transition factor Snail represses the tumor suppressor microRNA let-7 and contributes to invasiveness of ovarian cancer cells[J].Clin Cancer Res,2016,22(2 Suppl):S52.
金錦蓮(1975-),副主任醫(yī)師,碩士,主要從事消化道腫瘤方面的研究。
△通信作者,E-mail:13274259@qq.com。
10.3969/j.issn.1671-8348.2017.21.041
R735.2
A
1671-8348(2017)21-3003-05
2017-02-03
2017-04-08)