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長鏈非編碼RNA SPRY4-IT1 對結(jié)直腸癌細胞HT-29 增殖凋亡的影響及機制

2017-05-04 02:13張德保邢春根蘇州大學(xué)附屬第二醫(yī)院江蘇蘇州215000
山東醫(yī)藥 2017年13期
關(guān)鍵詞:無義細胞株空白對照

張德保,邢春根 (蘇州大學(xué)附屬第二醫(yī)院,江蘇蘇州215000)

·論著·

長鏈非編碼RNA SPRY4-IT1 對結(jié)直腸癌細胞HT-29 增殖凋亡的影響及機制

張德保,邢春根
(蘇州大學(xué)附屬第二醫(yī)院,江蘇蘇州215000)

目的 探討長鏈非編碼RNA(LncRNA) SPRY4-IT1對結(jié)直腸癌細胞HT-29增殖、凋亡的影響及機制。方法 采用qRT-PCR方法檢測LncRNA SPRY4-IT1在結(jié)直腸癌細胞株(HT-29、HCT-116、SW-480、SW-620、Caco-2)和正常腸上皮細胞(FHC)的表達。選擇其相對表達最高的HT-29細胞,以慢病毒載體介導(dǎo)構(gòu)建SPRY4-IT1過表達(上調(diào)組)和干擾的(下調(diào)組)穩(wěn)轉(zhuǎn)細胞株,并設(shè)立無義轉(zhuǎn)染組和空白對照組;qRT-PCR檢測各組HT-29細胞中SPRY4-IT1 mRNA的表達量;CCK-8法檢測細胞增殖活力;克隆試驗檢測細胞的克隆形成率;流式細胞術(shù)檢測細胞凋亡率和細胞周期。Western blotting法檢測凋亡蛋白Bax、Bcl-2的表達量。結(jié)果 LncRNA SPRY4-IT1在結(jié)直腸細胞株(HT-29、HCT-116、SW-480、SW-620、Caco-2)相對FHC的表達增高,以HT-29細胞株中的表達最高(P均<0.05)。相對于空白對照組、無義轉(zhuǎn)染組,上調(diào)組SPRY4-IT1 mRNA表達量升高,HT-29細胞增殖活力增強,克隆形成率升高,凋亡率降低(P<0.05或<0.01);而下調(diào)組SPRY4-IT1 mRNA表達量下降,細胞增殖活力減弱,克隆形成率降低,凋亡率升高(P<0.05或<0.01);在各組細胞間,細胞周期分布比較,P均>0.05。相對于空白對照組、無義轉(zhuǎn)染組,上調(diào)組細胞Bcl-2蛋白表達量增多,Bax蛋白表達量減少(P<0.05或<0.01);下調(diào)組Bcl-2蛋白表達量減少,Bax蛋白表達量增多(P均<0.01)。結(jié)論 LncRNA SPRY4-IT1可能通過促進Bcl-2表達,抑制Bax表達而促進結(jié)直腸癌細胞增殖、抑制其凋亡。

結(jié)直腸癌細胞HT-29;長鏈非編碼RNA;SPRY4-IT1;細胞增殖;細胞凋亡

長鏈非編碼RNA(LncRNA)是指長度超過200個核苷酸,不具有蛋白質(zhì)編碼功能的RNA。早年研究認為,LncRNA是轉(zhuǎn)錄后的“暗物質(zhì)”或“噪音”[1,2]。近年研究證實,LncRNA雖不編碼蛋白質(zhì),可以和蛋白質(zhì)相互作用[3],并參與細胞分化過程的調(diào)節(jié),在干細胞的生長、凋亡和腫瘤細胞的轉(zhuǎn)移中發(fā)揮著重要作用[4,5]。在結(jié)直腸癌的發(fā)生、發(fā)展中發(fā)揮著重要作用的LncRNA有BRAF-actived LncRNA(BANCR)、LncRNA HOTAIR、LncRNA MALAT1、LncRNA-CCAT1等[6~9]。有研究表明,LncRNA SPRY4-IT1在黑色素瘤、腦膠質(zhì)瘤、食管癌、胃癌、腎透明細胞癌、膀胱癌中均有報道[10~15],與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展及預(yù)后具有一定的相關(guān)性。2016年5~12月,本研究主要探討了LncRNA SPRY4-IT1在結(jié)直腸癌細胞株中的表達,以及SPRY4-IT1對HT-29細胞增殖、凋亡的影響,為將來結(jié)直腸癌臨床分子靶向診斷和治療提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料 人結(jié)直腸癌細胞株(HT-29、HCT-116、SW-480、SW-620、Caco-2)和正常人腸上皮細胞(FHC)均購于中國科學(xué)院上海細胞庫。RPMI-1640、胎牛血清購自美國Gibco公司。SPRY4-IT1引物序列、內(nèi)參GAPDH引物購自上海生工。過表達和干擾序列由南京Abm公司合成。CCK-8試劑盒購自日本同仁;7-aad/PE試劑盒購自BD公司;細胞周期與細胞凋亡試劑盒及BCA蛋白濃度測定試劑盒購自碧云天;Bax、Bcl-2抗體(兔抗人)購自Abcam公司,β-actin內(nèi)參(鼠抗人)及抗兔、抗鼠二抗購自碧云天。BioRad CFX96 Touch 熒光定量PCR儀購自美國BioRad公司;TECAN Infinite 200 Pro多功能酶標(biāo)儀購自瑞士;恒壓恒流電泳儀購自美國Bio-RAD公司;電泳儀和電泳槽購自中國上海輝煌科學(xué)儀器公司;化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)購自中國基因有限公司。

1.2 細胞培養(yǎng) 用含10%已滅活的胎牛血清及1%青鏈霉素RPMI1640培養(yǎng)基培養(yǎng)結(jié)直腸癌細胞株(HT-29、HCT-116、SW-480、SW-620、Caco-2)及FHC。根據(jù)培養(yǎng)基的顏色每2~3 d換液一次,待細胞融合至90%左右,進行細胞傳代,并取對數(shù)生長期細胞進行后續(xù)實驗。

1.3 LncRNA SPRY4-IT1 mRNA的檢測 采用qRT-PCR法。TRIzol法抽提總RNA,逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA。qRT-PCR:所有cDNA樣品分別配制內(nèi)參和目的基因的實時定量PCR反應(yīng)體系。每個反應(yīng)管配置3個復(fù)孔,并設(shè)計陰性對照,即反應(yīng)體系中以去離子水代替模板cDNA。將配制好的PCR反應(yīng)溶液置于qPCR儀上進行qPCR擴增反應(yīng)。反應(yīng)條件:95 ℃ 2 min預(yù)變性,然后按95 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s(收集熒光信號),72 ℃ 30 s,共45個循環(huán),反應(yīng)結(jié)束后設(shè)置熔解曲線分析程序。所用引物序列如下:SPRY4-IT1(上游引物:5′-AGCCACATAAATTCAGCAGA-3′,下游引物:5′-CGATGTAGTAGGATTCCTTTCA-3′);內(nèi)參GAPDH引物(上游引物:5′-GACTCATGACCACAAGTCCATGC-3′,下游引物:5′-AGAGGCAGGGATGATGTTCTG-3′)。采用2-ΔΔCT法分析LncRNA SPRY4-IT1的相對表達。

1.4 穩(wěn)轉(zhuǎn)細胞株的構(gòu)建及分組 以慢病毒載體介導(dǎo)構(gòu)建SPRY4-IT1過表達、敲低及無義序列的穩(wěn)轉(zhuǎn)細胞株,慢病毒載體及穩(wěn)轉(zhuǎn)細胞株由南京Abm公司合成并構(gòu)建。將細胞分為上調(diào)組(SPRY4-IT1過表達的穩(wěn)轉(zhuǎn)細胞株)、下調(diào)組(SPRY4-IT1敲低的穩(wěn)轉(zhuǎn)細胞株)及無義轉(zhuǎn)染組(無義轉(zhuǎn)染的細胞株),設(shè)置空白對照組。干擾序列為:CCCAGATGTTGACAGCTGCCTCT。用qRT-PCR法檢測各組HT-29細胞中SPRY4-IT1的相對表達,方法和反應(yīng)條件同1.3。

1.5 細胞增殖活力的檢測 采用CCK-8法。取對數(shù)生長期胰酶消化懸浮細胞,調(diào)整細胞為104/mL,取100 μL加入96孔板,繼續(xù)培養(yǎng)24 h。每組細胞設(shè)3個復(fù)孔,并設(shè)陰性對照(只加培養(yǎng)基和CCK-8,沒有細胞)。分別于細胞接種到96孔板后的第1天至第5天加CCK-8液10 μL,于加液后繼續(xù)正常培養(yǎng)4 h,在酶標(biāo)儀上450 nm波長處測定每孔吸光度(OD)值。

1.6 細胞克隆形成能力的檢測 采用克隆形成試驗。取對數(shù)生長期各組HT-29細胞,胰酶消化細胞,培養(yǎng)基懸浮細胞,細胞計數(shù)板計數(shù),用6孔板培養(yǎng),每孔加300個細胞,加含10%胎牛血清1640培養(yǎng)基至3 mL。細胞在標(biāo)準(zhǔn)條件下,培養(yǎng)2~3周,3~5 d換液一次,觀察克隆形成,以肉眼可見克隆時終止培養(yǎng)。棄培養(yǎng)基,用PBS清洗2次,每孔加甲醇1 mL固定15 min。棄固定液,用姬姆薩染液染色30 min。每組細胞接種3個復(fù)孔。計算克隆形成率,克隆形成率=克隆數(shù)目/接種細胞數(shù)×100%。

1.7 細胞凋亡率及細胞周期的檢測 采用流式細胞術(shù)。細胞凋亡率的檢測:取對數(shù)生長期各組HT-29細胞,用胰酶消化,培養(yǎng)基懸浮,取1×105~5×105個細胞用PBS洗滌2次(1 000 r/min離心5 min),加Binding Buffer 100 μL懸浮細胞,每管中加7-aad 5 μL和PE染料5 μL,再加Binding Buffer 400 μL混勻。同時,設(shè)空白對照(不加染料),單染管(分別用7-aad 5 μL和PE 5 μL染料)室溫避光反應(yīng)15 min。進行流式細胞凋亡率檢測,結(jié)果用總凋亡的百分比表示。細胞周期的檢測:取對數(shù)生長期各組HT-29細胞,用胰酶消化,培養(yǎng)基懸浮,取1×105~5×105個細胞用PBS洗滌2次(1 000 r/min離心5 min),棄上清,用PBS 0.5 mL重懸細胞, 70%乙醇5 mL固定,4 ℃過夜。1 000 r/min,離心15 min,棄上清,用PBS洗滌2次,棄上清,加緩沖液500 μL,加RNase 10 μL,37 ℃水浴30 min,加PI 25 μL,避光反應(yīng)30 min,進行流式細胞周期檢測。

1.8 各組HT-29細胞中Bcl-2和Bax蛋白表達量的檢測 采用Western blotting法。取對數(shù)生長期各組HT-29細胞,棄培養(yǎng)基,用PBS清洗兩遍,配制含抑制劑的蛋白抽提試劑(RIPA抽提試劑1 mL中加入蛋白酶抑制劑PMSF 10 μL),1×106~5×106個細胞,輕輕搖動5 min,用細胞刮將貼壁細胞刮下來,轉(zhuǎn)移細胞懸浮液至離心管中,12 000 r/min離心15 min,取上清,即為所提的蛋白。采用BCA法測定蛋白濃度,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)蛋白BSA曲線計算目的蛋白濃度,5×蛋白上樣緩沖液SDS-PAGE 50 μL加目的蛋白200 μL,95 ℃煮沸5 min,-20 ℃保存或后續(xù)實驗。按比例配制12%分離膠和5%濃縮膠,根據(jù)目的蛋白濃度加上樣量,跑電泳→轉(zhuǎn)膜→封閉→孵一抗過夜→回收一抗→洗膜(10 min×4次)→孵二抗(1 h)→洗膜(10 min×4次)→ECL化學(xué)成像發(fā)光,觀察目的蛋白表達。用目的蛋白的灰度值除以內(nèi)參β-actin的灰度值以校正誤差,所得結(jié)果代表某樣品的目的蛋白相對含量。

2 結(jié)果

2.1 結(jié)直腸癌細胞株和FHC中SPRY4-IT1 mRNA的表達量比較 FHC、HT-29、HCT-116、SW480、SW620、Caco-2細胞株中SPRY4-IT1 mRNA的表達量分別為1.00、36.76±7.98、4.49±0.38、19.88±4.88、15.46±3.30、8.81±1.81。相對于FHC,其他細胞中的表達均升高,以HT-29細胞株為著(P均<0.05)。

2.2 各組細胞中SPRY4-IT1 mRNA的表達量比較 上調(diào)組、下調(diào)組、空白對照組、無義轉(zhuǎn)染組SPRY4-IT1 mRNA的表達量分別為5.81±0.33、0.24±0.03、1.00、1.03±0.04,相對于無義轉(zhuǎn)染組、空白對照組,上調(diào)組SPRY4-IT1 mRNA表達量升高(P均<0.01),下調(diào)組SPRY4-IT1 mRNA表達量下降(P均<0.01);無義轉(zhuǎn)染組、空白對照組比較,P>0.05。

2.3 各組細胞增殖活力的比較 上調(diào)組、下調(diào)組、無義轉(zhuǎn)染組、空白對照組第1、2、3、4、5天OD值分別為0.45±0.01、0.85±0.01、1.19±0.01、2.15±0.02、2.52±0.02,0.44±0.01、0.60±0.01、0.62±0.01、0.65±0.01、0.82±0.01,0.46±0.01、0.66±0.01、0.77±0.03、1.12±0.02、1.23±0.03,0.45±0.03、0.66±0.01、0.77±0.03、1.18±0.01、1.28±0.01。相對于無義轉(zhuǎn)染組、空白對照組,除第1天外,其余各時間上調(diào)組細胞增殖活力增強(P均<0.01),下調(diào)組細胞增殖活力下降(P均<0.05);無義轉(zhuǎn)染組、空白對照組比較,P均>0.05。

2.4 各組細胞克隆形成率比較 上調(diào)組、下調(diào)組、無義轉(zhuǎn)染組、空白對照組克隆形成率分別為61.67%±2.91%、13.00%±1.16%、28.33%±1.76%、30.33%±1.67%。相對于無義轉(zhuǎn)染組、空白對照組,上調(diào)組細胞克隆形成率升高(P均<0.01),下調(diào)組細胞克隆形成率下降(P均<0.01);無義轉(zhuǎn)染組、空白對照組比較,P>0.05。

2.5 各組細胞凋亡率比較 上調(diào)組、下調(diào)組、無義轉(zhuǎn)染組、空白對照組總凋亡率分別為0.69%±0.08%、3.34%±0.21%、1.60%±0.22%、1.29%±0.16%。相對于無義轉(zhuǎn)染組、空白對照組,上調(diào)組細胞凋亡率降低(P均<0.05),下調(diào)組細胞凋亡率升高(P均<0.01);無義轉(zhuǎn)染組、空白對照組比較,P﹥0.05。

2.6 各組細胞周期比較 上調(diào)組細胞在G0/G1期、S期、G2/M期所占百分比分別為77.20%±0.81%、6.93%±0.51%、13.76%±0.36%,下調(diào)組分別為71.41%±0.99%、12.86%±1.24%、13.53%±1.76%,無義轉(zhuǎn)染組分別為73.93%±1.20%、10.62%±1.01%、15.01%±0.60%,空白對照組分別為72.98%±0.44%、10.77%±0.46%、13.25%±0.44%。各組之間各期細胞所占百分比比較,P均﹥0.05。

2.7 各組Bcl-2、Bax蛋白表達量比較 上調(diào)組、下調(diào)組、無義轉(zhuǎn)染組、空白對照組Bcl-2蛋白表達量分別為1.31±0.07、0.37±0.03、0.70土0.01、0.71±0.09,Bax蛋白表達量分別為0.51±0.01、1.42±0.05、0.82±0.01、0.71±0.02。相對于空白對照組、無義轉(zhuǎn)染組,上調(diào)組Bcl-2蛋白表達量增多(P均<0.01),Bax蛋白表達量減少(P均<0.01);下調(diào)組Bcl-2蛋白表達量減少(P均<0.05),Bax蛋白表達量增多(P均<0.01);無義轉(zhuǎn)染組、空白對照組比較,P均﹥0.05。

3 討論

研究發(fā)現(xiàn),LncRNA參與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展,影響腫瘤患者的治療及預(yù)后,調(diào)節(jié)腫瘤細胞的增殖、遷移及凋亡等過程,但眾多LncRNA的生物學(xué)功能及其作用機制仍不是很清晰,需要進一步研究。LncRNA SPRY4-IT1是Sprouty4內(nèi)含子轉(zhuǎn)錄本1,長度為687個核苷酸,其基因庫編碼:GC05M142318,位于5q31.3,源自于Sprouty4基因。Khaitan等[10]在2011年首次報道SPRY4-IT1在黑色素瘤細胞中的高表達,并調(diào)節(jié)黑色素瘤細胞的凋亡和遷移。本研究發(fā)現(xiàn),SPRY4-IT1在結(jié)直腸癌細胞株HT-29中相對表達最高。上調(diào)HT-29細胞SPRY4-IT1的表達,促進細胞增殖和克隆形成,抑制其凋亡;而下調(diào)SPRY4-IT1的表達抑制HT-29的增殖和克隆形成,促進其凋亡。B淋巴細胞瘤-2基因簡稱Bcl-2,是細胞凋亡研究中最受重視的基因,它具有抑制凋亡的作用,此外Bcl-2可增強細胞對大多數(shù)DNA損傷因子的抵抗作用;Bax是另一類與凋亡相關(guān)的蛋白因子,主要表現(xiàn)為促進細胞凋亡的作用。上調(diào)HT-29細胞SPRY4-IT1的表達,可促進Bcl-2的表達,抑制Bax表達,從而抑制了細胞凋亡;下調(diào)HT-29細胞SPRY4-IT1的表達,可抑制Bcl-2表達,促進Bax表達,從而促進了細胞凋亡。因此,我們認為SPRY4-IT1在結(jié)直腸癌細胞中表現(xiàn)為癌基因特性,敲低HT-29細胞中SPRY4-IT1的表達,通過調(diào)節(jié)凋亡相關(guān)蛋白Bax和Bcl-2能抑制結(jié)直腸癌細胞的生長和增殖,促進其凋亡,為將來結(jié)直腸癌臨床診斷和分子靶向治療提供理論依據(jù),SPRY4-IT1有可能成為結(jié)直腸癌分子靶向治療重要靶點。

[1] Blake WJ, Kaem M, Cantor CR, et al. Noise in eukaryotic gene expression[J]. Nature, 2003,422(6932):633-637.

[2] Ravasi T, Suzuki H, Pang KC, et al. Experimental validation of the regulated expression of large number of non-coding RNAs from the mouse genome[J]. Genome Res, 2006,16(1):11-19.

[3] Ponting CP, Oliver PL, Reik W. Evolution and functions of long non-coding RNAs[J]. Cell, 2009,136(4):629-641.

[4] Loewer S, Cabili MN, Guttman M, et al. Large intergenic non-coding RNA-RoR modulates reprogramming of human inducing pluripotent stem cells[J]. Nat Genet, 2010,42(12):1113-1117.

[5] Tsai MC, Spitale RC, Chang HY. Long intergenic noncoding RNAs: new links in cancer progression[J]. Cancer Res, 2011,71(1):3-7.

[6] Guo Q, Zhao Y, Chen J, et al. BRAF-activated long non-coding RNA contributes to colorectal cancer migration by inducing epithelial-mesenchymal transition[J]. Oncol Lett, 2014,8(2):869-875.

[7] Kogo R, Shimamura T, Mimori K, et al. Long noncoding RNA HOTAIR regulates polycomb-dependent chromatin modification and is associated with poor prognosis in colorectal cancers[J]. Cancer Res, 2011,71(20):6320-6326.

[8] Zheng HT, Shi DB, Wang YW, et al. High expression of lncRNA MALAT1 suggests a biomarker of poor prognosis in colorectal cancer[J]. Int J Clin Exp Pathol, 2014,7(6):3174-3181.

[9] Ye Z, Zhou M, Tian B, et al. Expression of LncRNA-CCAT1,E-cadherin and N-cadherin in colorectal cancer and its clinical significance[J]. Int J Clin Exp Med, 2015,8(3):3707-3715.

[10] Khaitan D, Dinger ME, Mazar J, et al. The melanoma-upregulated long noncoding RNA SPRY4-IT1 modulates apoptosis and invasion[J]. Cancer Res, 2011,71(11):3852-3862.

[11] Liu H, Lv Z, Guo E. Knockdown of long noncoding RNA SPRY4-IT1 suppresses glioma cell proliferation, metastasis and epithelial-mesenchymal transition[J]. Int J Clin Exp Pathol, 2015,8(8):9140-9146.

[12] Xie HW, Wu QQ, Zhu B, et al. Long noncoding RNA SPRY4-IT1 is upregulated in esophageal squamous cell carcinoma and associated with poor prognosis[J]. Tumour Biol, 2014,35(8):7743-7754.

[13] Peng W, Wu G, Fan H, et al. Long noncoding RNA SPRY4-IT1 predicts poor patient prognosis and promotes tumorigenesis in gastric cancer[J]. Tumour Biol, 2015,36(9):6751-6758.

[14] Zhang HM , Yang FQ , Yan Y, et al. High expression of long non-coding RNA SPRY4-IT1 predicts poor prognosis of clear cell renal cell carcinoma[J]. Int J Clin Exp Pathol, 2014,7(9):5801-5809.

[15] Zhao XL, Zhao ZH, Xu WC, et al. Increased expression of SPRY4-IT1 predicts poor prognosis and promotes growth and metastasis in bladder cancer[J]. Int J Clin Exp Pathol, 2015,8(2):1954-1960.

Influence of long non-coding RNA SPRY4-IT1 on proliferation and apoptosis of colorectal cancer cells HT-29

ZHANGDebao,XINGChungen

(TheSecondAffiliatedHospitalofSoochowUniversity,Suzhou215000,China)

Objective To explore the influence and mechanism of long non-coding RNA (Lnc RNA) SPRY4-IT1 on proliferation and apoptosis of colorectal cancer cells HT-29. Methods Quantitative real-time polymerase chain reaction (qRT-PCR) was performed to detect the expression of LncRNA SPRY4-IT1 in the colorectal cancer cell lines (HT-29, HCT-116, SW-480, SW-620, Caco-2) and the normal intestinal epithelial cell line FHC. We selected HT-29 cells with the relative highest expression of SPRY4-IT1 for this study. Lentivirus-mediated recombinant plasmid target SPRY4-IT1 was constructed and transfected into colorectal cancer HT-29 cells to establish the stably transfection cells of over-expression (up-regulation group) and interference (knock-down group). Meanwhile, the negative control group and blank control group were established. qRT-PCR was used to detect the expression of SPRY4-IT1 mRNA in HT-29 cells of each group. CCK-8 was applied to detect the proliferation of HT-29. cells Clone formation assay was used to test the colony forming efficincy of HT-29 cells. Flow cytometry was applied to detect the apoptosis and cell cycle of HT-29 cells. Western blotting was used to testify the expression of Bax and Bcl-2.Results The relative expression of LncRNA SPRY4-IT1 in colorectal cancer cell lines (HT-29, HCT-116, SW-480, SW-620, Caco-2) was significantly higher than that in the normal intestinal epithelial cell line FHC, and the expression of SPRY4-IT1 was the highest in HT-29 cells (allP<0.05). Compared with the negative control group and blank control group, the expression of SPRY4-IT1 mRNA, the proliferation and the colony forming efficincy of HT-29 cells in the up-regulation group were enhanced, and apoptosis rate was decreased (P<0.05 orP<0.01), and the opposite trend was observed in the knock-down group (P<0.05 orP<0.01). There was no significant difference in cell cycle of HT-29 cells among these groups (allP>0.05). Compared with the negative control group and blank control group, the expression of Bcl-2 was increased and Bax was decreased in HT-29 cells of the up-regulation group (P<0.05 orP<0.01), the expression of Bcl-2 was decreased and Bax was increased in HT-29 cells of the knock-down group (allP<0.01). Conclusion LncRNA SPRY4-IT1 may significantly accelerate proliferation and restrain apoptosis of colorectal cancer cell via promoting the expression of Bax and depressing the expression of Bcl-2.

colorectal cancer cells HT-29; long non-coding RNA; SPRY4-IT1; cell proliferation; apoptosis

國家自然科學(xué)基金資助項目(81672970)。

張德保(1979-),男,碩士研究生在讀,主要研究方向為普外科胃腸道疾病。E-mail:18706202833@163.com

邢春根(1965-),男,主任醫(yī)師(教授),主要研究方向為普外科胃腸道腫瘤。E-mail:xingcg@126.com

10.3969/j.issn.1002-266X.2017.13.001

R735.3

A

1002-266X(2017)13-0001-04

2017-01-12)

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無義突變與“遺傳補償效應(yīng)”
悼李維嘉老仙逝(外一首)
過表達H3K9me3去甲基化酶對豬克隆胚胎體外發(fā)育效率的影響(內(nèi)文第 96 ~ 101 頁)圖版
鏡像治療截肢后幻肢痛的隨機對照試驗
穩(wěn)定敲低MYH10基因細胞株的建立
Rab27A和Rab27B在4種不同人肝癌細胞株中的表達