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(1. 北京中醫(yī)藥大學(xué) 中藥學(xué)院,北京102488;2. 北京師范大學(xué)良鄉(xiāng)附屬中學(xué),北京102488;3. 北京林業(yè)大學(xué) 林學(xué)院,北京100083)
艾納香[Blumeabalsamifera(L.) DC.]為菊科多年生植物,其葉片和嫩枝是提取艾片(左旋龍腦)的原料[1]?,F(xiàn)代醫(yī)學(xué)研究表明,艾片有抗炎鎮(zhèn)痛、抗茵、抗病毒、保護(hù)心腦、雙向調(diào)節(jié)神經(jīng)系統(tǒng)、提高其他藥物生物利用等作用[2],并且其解熱持續(xù)作用及持續(xù)強(qiáng)度大于天然冰片及合成冰片[3]。新鮮或干燥地上部分也作藥用,具有溫中止瀉、活血解毒、祛風(fēng)除濕功能[4],在臨床上的應(yīng)用極為廣泛。
目前,左旋龍腦的提取工藝較為成熟,但是其在艾納香葉片和嫩枝中的含量較低,范圍在0.015%~0.220%[5],嚴(yán)重制約了艾納香產(chǎn)業(yè)升級,選育出高含量的優(yōu)良品種是其產(chǎn)業(yè)開發(fā)的重點。另一方面,多倍體植物具有器官“巨大性”,并且其營養(yǎng)成分及內(nèi)源物質(zhì)含量含量增加[6]。因此,培育四倍體植物新品種是中藥材豐產(chǎn)優(yōu)質(zhì)的有效途徑之一,特別是對于以單體化合物提取的某些藥用植物而言意義重大。
前人對艾納香的化學(xué)組成及提取工藝研究較多,如王秋萍等建立HPLC-RID同時測定艾納香葉中左旋樟腦、左旋龍腦及異龍腦含量的方法[7];吳麗芬等人研究出建立GC法測定艾納香油中β-蒎烯、芳樟醇、樟腦、L-龍腦、β-石竹烯5個成分的含量[8]。本課題組以艾納香植株不同部位葉片和莖為材料,系統(tǒng)開展了總黃酮提取工藝優(yōu)化方法研究,并確定了總黃酮含量測定的方法[9]。到目前為止,仍未見四倍體艾納香誘導(dǎo)及倍性鑒定的研究報道。本研究應(yīng)用組織培養(yǎng)技術(shù),采用秋水仙素誘導(dǎo)艾納香組培苗,產(chǎn)生變異體并對其進(jìn)行倍性鑒定為研究內(nèi)容,研究結(jié)果為艾納香新品種選育提供科學(xué)依據(jù)。
2013年4月,艾納香一年生苗取自貴州羅甸,種植于北京中醫(yī)藥大學(xué)藥用植物園。2013年5月,取艾納香植株莖尖,經(jīng)過75%乙醇30 s及0.1%升汞5 min消毒處理后,再用無菌水沖洗3次,在培養(yǎng)基MS+6-BA 1.0 %+NAA 1.5 %+蔗糖3% +瓊脂1%(pH5.8)上誘導(dǎo)并繼代培養(yǎng)。培養(yǎng)條件: 溫度(25±2) ℃,光照強(qiáng)度1 000~1 500 lx,光照時間14 h/d。繼代培養(yǎng)出的艾納香組培苗應(yīng)用于本研究。
觀察艾納香組培苗生長動態(tài),確定組培苗分裂旺盛期范圍,繪制Logistic生長曲線。采用浸泡法和混合培養(yǎng)兩種方法進(jìn)行多倍體誘導(dǎo),每種方法均設(shè)置若干組處理時間和濃度梯度,研究不同秋水仙素濃度及處理時間對誘變率的影響。
1.2.1 Logistic生長曲線
選取(0.2±0.02) g的艾納香莖尖組織,在繼代培養(yǎng)基上進(jìn)行培養(yǎng),每天取出稱重,算出每天的增重量(g),繪出Logistic生長曲線。
1.2.2 秋水仙素誘導(dǎo)
浸泡法:在組培苗繼代培養(yǎng)7 d后,挑選生長一致、莖節(jié)粗壯的組培苗,切成長1~2 cm的帶節(jié)莖段,放入經(jīng)過高壓滅菌濃度為0.04%、0.06%、0.08%的秋水仙素溶液中,分別浸泡6 h、12 h、18 h,以無菌水浸泡為對照。將各處理后的材料用無菌水沖3遍后,培養(yǎng)在繼代培養(yǎng)基上,培養(yǎng)30 d后及下一代進(jìn)行死亡率和變異率調(diào)查。
混合培養(yǎng)法:在組培苗繼代培養(yǎng)7 d后,選取生長一致、莖節(jié)粗壯的組培苗,切成長1~2 cm的帶節(jié)莖段,接種到分別添加0.015%、0.025%、0.035%秋水仙素溶液的繼代培養(yǎng)基上,分別經(jīng)過5 d、7 d、9 d誘導(dǎo)培養(yǎng)后,將處理后的材料轉(zhuǎn)入不含秋水仙素的繼代培養(yǎng)基中繼續(xù)培養(yǎng),培養(yǎng)30 d后及下一代進(jìn)行死亡率和變異率調(diào)查。
1.2.3 形態(tài)學(xué)考察
以二倍體為參照,對變異植株從形態(tài)學(xué)進(jìn)行考察,包括株高、葉長、葉寬、葉厚、莖粗等指標(biāo)。
1.2.4 細(xì)胞學(xué)考察
上午9:00~10:00取全展葉片,用水保濕,用鑷子撕取葉片下表皮制片,用OLYMPUS 光學(xué)顯微鏡觀測氣孔及其保衛(wèi)細(xì)胞的大小,并計算氣孔密度。
1.2.5 細(xì)胞中DNA含量檢測
采用流式細(xì)胞儀檢測分析細(xì)胞中DNA含量,參考周玉麗等[10]和張虹等[11]的方法。將艾納香嫩葉在盛有3 mL提取緩沖液的培養(yǎng)皿中剪碎,200目尼龍網(wǎng)過濾,1 000 r/min離心漂洗3次。制備的核懸液離心后棄去上層液體,加入2 mL染色緩沖液,暗處低溫下染色10 min,500目尼龍網(wǎng)過濾,濾液用標(biāo)準(zhǔn)試管收集,隨即上機(jī)測定。提取緩沖液成分:15 mol/L Tris-HCl (pH 7.5),80 mol/L KCl,20 mol/L NaCl,20 mol/L EDTA-Na2,15 mol/L 巰基乙醇,0.05%的 TritionX-100。染色緩沖液為提取緩沖液內(nèi)加入20 mg/L RNA酶A和20 mg/L碘化丙啶。
艾納香組培苗Logistic生長曲線如圖1所示。圖1表明,在接種第7 d時增重量最大,此時為植株細(xì)胞分裂旺盛期,故選擇接種7 d左右的組培苗作為秋水仙素誘導(dǎo)的材料。
圖1 艾納香組培苗Logistic生長曲線
以形態(tài)學(xué)和氣孔變異顯著作為變異的指標(biāo),考察秋水仙素浸泡法和混合培養(yǎng)法對艾納香組培苗變異率的影響,結(jié)果如表1和表2所示。表1表明,在浸泡法處理中,秋水仙素濃度為0.06%、時間為12 h組合時,艾納香組培苗的變異率最高,達(dá)到36.7%,以及子二代變異率也最高(63.3%)。表2表明,在混合培養(yǎng)法處理中,秋水仙素濃度為0.025%、時間為9 d組合時,艾納香組培苗的變異率最高,達(dá)到65%,以及子二代變異率也較高(74.4%)。本研究結(jié)果表明,浸泡法和混合培養(yǎng)法均能有效的誘導(dǎo)艾納香植株發(fā)生變異,以混合培養(yǎng)法更適合艾納香植株誘變,其秋水仙素濃度為0.025%并處理7~9 d為宜。
表1 秋水仙素浸泡法對艾納香組培苗變異率的影響
表2 秋水仙素混合培養(yǎng)法對艾納香組培苗變異率的影響
與對照相比,經(jīng)過秋水仙素處理的艾納香變異植株的生長較為緩慢,株高較二倍體矮小了40.5%,而葉長、葉寬、葉厚及莖基部粗度較二倍體,分別顯著或極顯著增加了70.8%、96.5%、86.1%、53.8%(表3和圖2)。
表3 二倍體和四倍體艾納香組培苗的形態(tài)學(xué)比較
圖2 二倍體(左)四倍體(右)艾納香組培苗
細(xì)胞學(xué)考察表明,四倍體艾納香植株葉片氣孔長徑、短徑以及保衛(wèi)細(xì)胞長和寬,均較二倍體差異顯著或極顯著(表4)。表4表明,二倍體艾納香植株葉片氣孔為63.3 μm × 42.4 μm,而四倍體則為84.9 μm ×50.3 μm,極顯著或顯著增加34.1%和18.6%。同樣,四倍體艾納香植株葉片的保衛(wèi)細(xì)胞的長和寬,較二倍體分別顯著增加49.6%和47.1%。四倍體艾納香植株葉片氣孔密度為6.0個/mm2,極顯著低于二倍體(6.0個/mm2)。
表4 二倍體和四倍體艾納香組培苗的氣孔及其保衛(wèi)細(xì)胞比較
流式細(xì)胞儀檢驗結(jié)果如圖3所示。圖3表明,直方圖的縱坐標(biāo)為細(xì)胞數(shù)(表示的是細(xì)胞的相對數(shù)),橫坐標(biāo)為道數(shù)(Channel No.),實質(zhì)上是所測的熒光的強(qiáng)度。二倍體植株僅在相對熒光強(qiáng)度值為256的位置上出現(xiàn)1個單峰(圖3左),而四倍體植株在約在512的位置上出現(xiàn)1個單峰(圖3右),后者為前者的 2 倍,這表明四倍體植株細(xì)胞中的DNA 含量也相應(yīng)增加了一倍,表明四倍體細(xì)胞中DNA含量已倍增,說明秋水仙素誘導(dǎo)四倍體艾納香植株獲得了成功。
圖3 二倍體(左)和四倍體(右)艾納香組培苗葉片細(xì)胞中DNA含量
艾納香組培苗進(jìn)行Logistic生長曲線表明,組培苗細(xì)胞的旺盛分裂期約在繼代培養(yǎng)第6~8 d,故在此期誘導(dǎo)能夠提高誘變成功率,這是本研究后續(xù)誘變成功的關(guān)鍵。
四倍體誘導(dǎo)率因秋水仙素濃度和處理時間不同而差異顯著。在本研究中,混合培養(yǎng)法在 0.015%~0.025%濃度范圍內(nèi),均表現(xiàn)出多倍體誘導(dǎo)率隨處理時間的增加而升高,但隨著處理時間延長,生長點都會受到嚴(yán)重傷害,組培苗的存活率降低;當(dāng)濃度大于0.025%時,多倍體誘導(dǎo)率隨處理時間的增加而降低且死亡率顯著升高。在浸泡法中,秋水仙素的濃度變化對植株影響不如混培法明顯,但是處理時間對植株的死亡率影響也很大,并且其誘變率明顯低于混合培養(yǎng)法。本研究認(rèn)為,與浸泡法相比,混合培養(yǎng)法更適合四倍體艾納香誘導(dǎo)。
秋水仙素誘導(dǎo)的變異株表現(xiàn)為葉色變綠,葉片變大、變厚,莖段變粗等。同時,其氣孔大小及密度均與二倍體有顯著差異,這與相關(guān)研究報道相一致[12]。因此,根據(jù)形態(tài)學(xué)及細(xì)胞學(xué)上的顯著差異進(jìn)行多倍體初步篩選,再結(jié)合細(xì)胞中DNA含量及染色體數(shù)目檢測是確定其倍性的有效方法。
本研究建立了誘導(dǎo)同源四倍體艾納香的方法,通過繼代培養(yǎng)獲得了更多的四倍體無菌苗,現(xiàn)正在進(jìn)行煉苗移栽,下一步進(jìn)行田間觀察與測試,期望篩選出藥用成分含量高、豐產(chǎn)且抗逆性好的優(yōu)良品種。