張衛(wèi)飛 孫軍營 王方曦 李國慶 康斌 王德利 曾暉
(骨科生物材料國家地方聯(lián)合工程研究中心,北京大學(xué)深圳醫(yī)院骨關(guān)節(jié)科,廣東深圳 518036)
關(guān)節(jié)軟骨損傷是由于各種原因引起的關(guān)節(jié)透明軟骨的缺損,因關(guān)節(jié)軟骨缺乏淋巴和血管,因此自身的修復(fù)能力有限[1,2]。Curl等[3]回顧了31516例膝關(guān)節(jié)鏡檢查情況,發(fā)現(xiàn)63%患者存在膝關(guān)節(jié)軟骨損傷。正常關(guān)節(jié)面有透明軟骨覆蓋,一旦損傷透明軟骨,會(huì)引起關(guān)節(jié)的疼痛、不穩(wěn)和僵硬,加速關(guān)節(jié)退變,導(dǎo)致骨關(guān)節(jié)炎的發(fā)生[4,5]。
人間充質(zhì)干細(xì)胞(human mesenchymal stem cells,hMSCs)是一類具有強(qiáng)大的自我更新能力、多向分化潛能的細(xì)胞。近年來,隨著對(duì)hMSCs 和基因治療研究的不斷地深入,經(jīng)基因修飾的hMSCs 以良好的增殖能力、安全而可控的定向成軟骨細(xì)胞分化在軟骨損傷修復(fù)中展現(xiàn)出重要的價(jià)值和誘人的應(yīng)用前景[6-9]。
Kormish 等[10]發(fā)現(xiàn),Wnt/β-catenin 信號(hào)通路直接影響hMSCs 向軟骨細(xì)胞分化的過程,促進(jìn)hMSCs 的自我更新,抑制其向軟骨細(xì)胞和脂肪細(xì)胞分化,而使其向成骨細(xì)胞分化的作用。Bi 等[11]在研究小鼠嵌合體模型時(shí)證實(shí),Sox9基因敲除(Sox9-/-)的間充質(zhì)細(xì)胞或胚胎干細(xì)胞經(jīng)過誘導(dǎo)不會(huì)表達(dá)軟骨細(xì)胞特異性的Ⅱ型膠原α1 鏈基因(Col2αl)、Col9α2、Col11α2和ACAN,推斷Sox9是軟骨形成中最關(guān)鍵的基因。
因此,β-catenin基因抑制hMSCs 成軟骨分化,Sox9基因促進(jìn)hMSCs 成軟骨分化。但兩者聯(lián)合在hMSCs 早期成軟骨分化中的作用尚不明確。本研究擬通過將β-catenin基因敲減與Sox9基因過表達(dá)的腺相關(guān)病毒(adeno-associated virus,AAV)一起轉(zhuǎn)染進(jìn)hMSCs 成軟骨分化培養(yǎng),與單獨(dú)的β-catenin基因敲減組及Sox9基因過表達(dá)組的成軟骨指標(biāo)進(jìn)行比較,探究β-catenin基因敲減與Sox9過表達(dá)聯(lián)合對(duì)hMSCs早期成軟骨分化的作用。
故本研究通過腺相關(guān)病毒將β-catenin基因敲減與Sox9過表達(dá)轉(zhuǎn)染進(jìn)hMSCs,轉(zhuǎn)染24 h 后通過RTPCR檢測基因的轉(zhuǎn)染效率,之后成軟骨分化培養(yǎng)7 d,通過番紅固綠染色和甲苯胺藍(lán)染色檢測軟骨細(xì)胞基質(zhì),通過RT-PCR 檢測COL2A1 和ACAN 的mRNA 表達(dá)量,通過免疫細(xì)胞化學(xué)檢測COL2A1和Aggrecan的蛋白表達(dá)量。
實(shí)驗(yàn)材料、試劑包括骨髓來源hMSCs(中國科學(xué)院典型培養(yǎng)物保藏委員會(huì)細(xì)胞庫),細(xì)胞培養(yǎng)基(Gibco 公司),胚牛血清(Gibco 公司),成軟骨分化培養(yǎng)基(賽業(yè)生物),Trizol(TaKaRa公司),反轉(zhuǎn)錄試劑盒、熒光PCR 試劑盒(TaKaRa 公司),rAAV-β-catenin-RNAi 與rAAV-FLAG-Sox9(吉?jiǎng)P基因),熒光定量PCR引物[生工生物(上海)股份有限公司設(shè)計(jì)合成],anti-COL2A1抗體、anti-Aggrecan抗體(英國Cohesion公司)。
首先將購買的原代細(xì)胞進(jìn)行傳代,加入0.25%胰蛋白酶1 ml 消化細(xì)胞1 min,之后加入2 ml 的完全培養(yǎng)基中止消化,然后進(jìn)行2 min 的離心,速度1000 r/min,棄去上清液后加入3 ml的完全培養(yǎng)基,分裝到3個(gè)T25 細(xì)胞培養(yǎng)瓶中,待長滿之后進(jìn)行第二次傳代,傳至第三代時(shí)細(xì)胞用來進(jìn)行成軟骨分化培養(yǎng)。將細(xì)胞消化后接種至六孔板,使六孔板的細(xì)胞密度在50%左右,加入2 ml成軟骨分化培養(yǎng)基,3 d換一次液,7 d后進(jìn)行下一步操作。
根據(jù)轉(zhuǎn)染的腺相關(guān)病毒不同分為4組:陰性對(duì)照組(empty vector),β-catenin基因敲減組(rAAV-βcatenin-RNAi),Sox9過表達(dá)組(rAAV-FLAG-Sox9),β-catenin基因敲減與Sox9過表達(dá)聯(lián)合組(β-catenin-RNAi+rAAV-FLAG-Sox9)。
收集需要進(jìn)行實(shí)時(shí)定量聚合酶鏈反應(yīng)的細(xì)胞,用Trizol 法提取細(xì)胞中的總RNA。用反轉(zhuǎn)錄試劑盒合成cDNA,利用PrimerPrimer5 設(shè)計(jì)引物,根據(jù)目的基因選擇三步法進(jìn)行擴(kuò)增。完成循環(huán)數(shù)40 次,以肌動(dòng)蛋白β-actin 為內(nèi)參,根據(jù)熔解曲線判斷RT-PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的特異性。引物序列見表1。
在六孔板加入新鮮配制的Weigert 染液染色3~5 min,水洗,酸性分化液分化15 s,蒸餾水洗10 min,在固綠染色液內(nèi)浸染5 min,快速用弱酸溶液洗滌切片10~15 s,以便去除殘留的固綠。加入番紅浸染5 min,用PBS 洗3 遍,鏡下觀察,然后采用image pro plus 6軟件測定其平均吸光度值。
用20%的乙醇溶液稀釋甲苯胺藍(lán)染色液,稀釋至0.1%,六孔板加入4%的多聚甲醛固定細(xì)胞,滴加稀釋后的甲苯胺藍(lán)染色液進(jìn)行滴染,加蓋玻片讓染料滲透到細(xì)胞中。將玻片豎起,稍加壓力,使多余染料被紙巾吸去。無需干燥,直接鏡檢后用image pro plus 6軟件測定其平均吸光度值。
表1 實(shí)時(shí)定量聚合酶鏈反應(yīng)引物序列
在六孔板加入PBS 清洗細(xì)胞3次,每次1 min,之后4%多聚甲醛中固定30 min,PBS 清洗細(xì)胞3 次,每次3 min,0.5%Triton X-100 通透細(xì)胞20 min,PBS 清洗細(xì)胞3次,每次3 min,3%過氧化氫處理15 min;PBS清洗細(xì)胞3 次,每次3min,用5%的BSA 封閉20 min,一抗孵育4℃過夜,PBS 清洗細(xì)胞3 次,每次3 min;二抗工作液孵育30 min(37℃),PBS清洗細(xì)胞3次,每次3 min;SABC 濕盒內(nèi)孵育在37℃下30 min,PBS 清洗細(xì)胞3 次,每次3 min,DAB 顯色(避光,鏡下觀察至棕色)3~10 min,PBS 清洗細(xì)胞3 次,每次3 min,鏡下觀察,之后用image pro plus 6 軟件測定其平均吸光度值。
采用SPSS 19.0進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,組間比較采用單因素方差分析,P<0.05為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
在鏡下觀察骨髓來源hMSCs,第一代細(xì)胞呈長梭形、三角形。第三代時(shí),細(xì)胞形態(tài)基本均一,長梭形或扁平狀,呈典型密集旋渦狀、魚群樣排列、貼壁、增殖(圖1)。
hMSCs 轉(zhuǎn)染腺相關(guān)病毒24 h 后,收集細(xì)胞,檢測各組β-catenin和Sox9的表達(dá)量。發(fā)現(xiàn)β-catenin基因敲減組和聯(lián)合組β-catenin的mRNA 表達(dá)量顯著下降,而Sox9的mRNA 表達(dá)量增加。說明β-catenin基因敲減的效率較高,Sox9基因過表達(dá)成功(圖2)。
圖1 鏡下觀察骨髓來源人間充質(zhì)干細(xì)胞(200×)
圖2 轉(zhuǎn)染腺相關(guān)病毒后各組β-catenin和Sox9的mRNA表達(dá)量
番紅固綠染色后發(fā)現(xiàn),陰性對(duì)照組的平均吸光度為28.0±4.6,β-catenin基因敲減組為45.0±6.8,Sox9過表達(dá)組為69.0±2.4,β-catenin基因敲減與Sox9過表達(dá)聯(lián)合組為120.0±5.5。聯(lián)合組的平均吸光度顯著高于其他三組(P<0.05),由此可知聯(lián)合組蛋白多糖的含量高于其他三組(圖3)。
甲苯胺藍(lán)染色后發(fā)現(xiàn),陰性對(duì)照組的平均吸光度為60.0±2.6,β-catenin基因敲減組為73.0±1.8,Sox9過表達(dá)組為97.0±8.3,聯(lián)合組為171.0±8.0。聯(lián)合組的平均吸光度顯著高于其他三組(P<0.05),由此可知聯(lián)合組軟骨基質(zhì)的含量高于其他三組(圖4)。
hMSCs 成軟骨分化7 d 后,檢測COL2A1 的mRNA 相對(duì)表達(dá)量:陰性對(duì)照組為0.99±0.16,βcatenin基因敲減組為1.89±0.18,Sox9過表達(dá)組為3.69±0.07,聯(lián)合組為5.21±0.10。4 組ACAN 的mRNA相對(duì)表達(dá)量分別為0.93±0.17、1.54±0.28、1.93±0.12、2.78±0.09。聯(lián)合組的COL2A1、ACAN 的mRNA 相對(duì)表達(dá)量均高于其他三組,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。
在六孔板中加入COL2A1 和Aggrecan 的一抗之后做免疫細(xì)胞化學(xué)。COL2A1的免疫組化中:陰性對(duì)照組的吸光度為8.0±1.5,β-catenin基因敲減組為35.0±3.2,Sox9過表達(dá)組為68.0±6.6,聯(lián)合組為121.0±7.2。在Aggrecan 的免疫組化中,上述各組的吸光度分別為9.0±2.7、21.0±4.2、58.0±8.4、100.0±6.4。COL2A1和Aggrecan 的免疫細(xì)胞化學(xué)中,聯(lián)合組的平均吸光度值高于其他三組,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,圖5,圖6)。
圖3 成軟骨分化后各組番紅固綠染色(200×)
圖4 人間充質(zhì)干細(xì)胞成軟骨分化后各組甲苯胺藍(lán)染色(200×)
關(guān)節(jié)軟骨是滑膜關(guān)節(jié)重要的結(jié)構(gòu)和功能單位,主要由終末分化的軟骨細(xì)胞(占軟骨組織體積的5%~10%)和細(xì)胞外基質(zhì)(66%~78%的水、13%~18%的膠原和7%~10%的蛋白多糖)構(gòu)成,軟骨的功能包括傳導(dǎo)載荷、吸收震蕩、潤滑和抗磨損等[12]。由于關(guān)節(jié)軟骨自身特殊的解剖及組織學(xué)特點(diǎn)(如缺乏血管和淋巴管分布,缺乏修復(fù)損傷和缺損的未分化細(xì)胞以及軟骨細(xì)胞包埋于致密的膠原/蛋白多糖基質(zhì)中而限制了細(xì)胞的增殖和遷移能力),導(dǎo)致其自我修復(fù)能力極其有限,一旦發(fā)生病損,受損關(guān)節(jié)往往發(fā)生不可逆的病理改變,并逐步惡化而最終進(jìn)展為骨關(guān)節(jié)炎(OA),大多數(shù)患者會(huì)出現(xiàn)關(guān)節(jié)反復(fù)疼痛、行走困難、活動(dòng)受限,甚至殘疾等,嚴(yán)重影響正常的日?;顒?dòng)和生活質(zhì)量[13-15]。因此,通過人工方法修復(fù)軟骨損傷具有重要的臨床意義。
Wnt信號(hào)通路是在1973年Sharma發(fā)現(xiàn)的無翅基因(wingless)與1982 年Nusse 等發(fā)現(xiàn)的int-1基因的基礎(chǔ)上命名的重要信號(hào)通路[16]。已發(fā)現(xiàn)的Wnt 信號(hào)通路有兩個(gè):依賴β-catenin(Wnt/β-catenin)信號(hào)通路和非依賴β-catenin(Wnt/Ca2+和Wnt/Planar polarity)信號(hào)通路,其中以Wnt/β-catenin 信號(hào)通路最為經(jīng)典[17-19]。Wnt/β-catenin 信號(hào)通路調(diào)節(jié)出生后軟骨發(fā)生、成骨細(xì)胞和破骨細(xì)胞生成、軟骨內(nèi)成骨、骨重塑、骨折修復(fù)等多種生理與病理過程。此外,還對(duì)軟骨修復(fù)起重要的調(diào)控作用[20-22]。
人類Sox9基因是一種重要的早期胚胎發(fā)育相關(guān)基因,位于17號(hào)染色體的長臂上,其翻譯的Sox9蛋白的結(jié)構(gòu)特點(diǎn)是含有位于羥基端HMG結(jié)構(gòu)域及位于氨基端轉(zhuǎn)錄激活結(jié)構(gòu)域,在除肥大的軟骨細(xì)胞外的所有軟骨前體細(xì)胞和軟骨細(xì)胞中均有表達(dá)[23,24]。Bell等發(fā)現(xiàn),Sox9能結(jié)合于Col2αl的軟骨細(xì)胞特異增強(qiáng)子,直接調(diào)控其表達(dá);而與Sox9突變密切相關(guān)的骨骼發(fā)育異常綜合征的骨骼異常是由于在軟骨形成過程中Sox9對(duì)Col2αl異常調(diào)控造成的,認(rèn)為Col2αl是Sox9的靶基因[25,26]。
圖5 成軟骨分化后細(xì)胞COL2A1的免疫組化(200×)
圖6 成軟骨分化后細(xì)胞Aggrecan的免疫組化(200×)
Akiyama 等研究發(fā)現(xiàn),Sox9可通過與核心轉(zhuǎn)錄因子TCF/LEF 競爭性結(jié)合β-catenin而抑制β-catenin/TCF/LEF 的活性;同時(shí),Sox9還可以通過與β-catenin結(jié)合后形成Sox9/β-catenin復(fù)合體而促進(jìn)其泛素/26S蛋白酶體途徑的降解[27]。Venkatesan 等[28]和Frisch等[29]均發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)染Sox9后將抑制hMSCs 的β-catenin表達(dá);在體內(nèi)軟骨修復(fù)過程中也發(fā)現(xiàn),Sox9過表達(dá)能抑制β-catenin的水平[30]。以上結(jié)果表明,在軟骨分化過程中,Sox9和β-catenin存在復(fù)雜的相互調(diào)控關(guān)系。
鑒于Sox9與Wnt/β-catenin信號(hào)通路均在hMSCs成軟骨分化過程中起著重要作用,而兩者之間又存在著復(fù)雜而緊密的相互調(diào)節(jié)關(guān)系,我們?cè)O(shè)想:能否通過增強(qiáng)Sox9表達(dá)的同時(shí),調(diào)控Wnt/β-catenin 信號(hào)通路的激活以促進(jìn)骨髓來源的hMSCs 更多、更安全和更穩(wěn)定地向我們期望的透明軟骨細(xì)胞分化和細(xì)胞外基質(zhì)的合成。
本研究結(jié)果顯示,腺相關(guān)病毒轉(zhuǎn)染后β-catenin基因的表達(dá)量下降,Sox9基因的表達(dá)量上升,提示基因敲減與過表達(dá)效率較高。番紅固綠染色顯示β-catenin敲減與Sox9過表達(dá)聯(lián)合組比其他三組紅色染色更深,提示β-catenin敲減與Sox9過表達(dá)聯(lián)合組蛋白多糖的含量比其他三組更高。甲苯胺藍(lán)染色顯示β-catenin敲減與Sox9過表達(dá)聯(lián)合組比其他三組藍(lán)色染色更深,說明聯(lián)合組的軟骨基質(zhì)更多。成軟骨分化后RT-PCR 結(jié)果顯示β-catenin敲減與Sox9過表達(dá)聯(lián)合組的COL2A1 和ACAN 的mRNA 表達(dá)量更高。另外,免疫細(xì)胞化學(xué)結(jié)果顯示β-catenin敲減與Sox9過表達(dá)聯(lián)合組棕色比其他三組更深,說明聯(lián)合組的COL2A1 和Aggrecan 蛋白表達(dá)量更高。以上結(jié)果說明,β-catenin基因敲減與Sox9過表達(dá)聯(lián)合對(duì)hMSCs早期成軟骨分化有促進(jìn)作用,為關(guān)節(jié)軟骨損傷的治療提供了新的思路。
綜上所述,β-catenin基因敲減與Sox9過表達(dá)聯(lián)合對(duì)hMSCs 早期成軟骨分化具有促進(jìn)作用,能使骨髓來源的hMSCs 更多、更安全和更穩(wěn)定地向我們期望的透明軟骨細(xì)胞分化和細(xì)胞外基質(zhì)的合成,為關(guān)節(jié)軟骨損傷的治療提供了新的思路。然而本研究沒有建立間充質(zhì)干細(xì)胞培養(yǎng)微聚模型成軟骨球培養(yǎng),需要進(jìn)一步探索。另外,本實(shí)驗(yàn)沒有建立動(dòng)物的關(guān)節(jié)軟骨缺損模型,將轉(zhuǎn)染的細(xì)胞植入,這可以使得結(jié)果更具有說服力,需要在下一步實(shí)驗(yàn)中完善。