趙爽,鄭華川
(中國(guó)醫(yī)科大學(xué)附屬盛京醫(yī)院實(shí)驗(yàn)?zāi)[瘤學(xué)實(shí)驗(yàn)室,遼寧 本溪 117004)
甘氨酸脫羧酶(GDC,P-protein)構(gòu)成甘氨酸裂解系統(tǒng),該系統(tǒng)還包含H蛋白,T蛋白和L-蛋白,上述蛋白的構(gòu)成比例為2P:27H:9T:1L[1-2]。該系統(tǒng)催化脊椎動(dòng)物體內(nèi)甘氨酸裂解的初始階段,產(chǎn)生CO2,NH3,N5,N10-亞甲基和NADH+H+,是甘氨酸代謝的主要途徑;在植物研究中發(fā)現(xiàn),葉線粒體含有大量的GDC蛋白,主要參與植物光合作用[2-3]593-597。GDC基因突變可導(dǎo)致人類血清甘氨酸累積,最終引起神經(jīng)系統(tǒng)疾病發(fā)生,如非酮癥性高甘氨酸血癥(NKH);同時(shí)還參與肺癌的形成[4-5]。目前研究發(fā)現(xiàn),所有的脊椎動(dòng)物所有組織中,雞與人類的GDC基因結(jié)構(gòu)和功能相似度較高,且雞體內(nèi)甘氨酸裂解活性較強(qiáng)[6]。因此,我們克隆出了雞GDC基因啟動(dòng)子前(-4.2~-2.2 kb)區(qū)域,繪制其基因圖譜,檢測(cè)其對(duì)GDC啟動(dòng)子的調(diào)節(jié)能力。
1.1 上游GDC基因KX DNA片段測(cè)繪
GDC基因5’端7.3 kb區(qū)域克隆自噬菌體λCPG301,再?gòu)腉DC基因5’端7.3 kb區(qū)域分離DNA片段-4.2~-2.2 kb。將分離出的DNA片段插入KpnI和XbaI位點(diǎn)之間,并篩選出陽性克隆命名為PBS-KXb。利用KpnI-Pst1、KpnI-HincII、KpnI-HindIII、KpnI-EcoRI、KpnI-SacI、KpnI-XbaI、XbaI-PstI、XbaI-HindIII雙酶切重組質(zhì)粒PBS-KXb并進(jìn)行瓊脂糖電泳,拍照。
1.2 質(zhì)粒構(gòu)建
以pGLΔXbaI-KX(KpnI-XbaI)為載體構(gòu)建KX區(qū)域的截?cái)囿w。用HindⅢ-XbaⅠ、PstI-XbaI、EcoRI-XbaI、HincⅡ-XbaI、HincII-HindIII或HincⅡ-KpnI酶切KXB區(qū)域全長(zhǎng)或部分DNA片段插入到pBS(-)質(zhì)粒,并轉(zhuǎn)化到大腸桿菌通過菌落PCR或限制性內(nèi)切酶酶切篩選陽性克隆,利用CUGA測(cè)序試劑盒測(cè)序(日本genetech),測(cè)序引物:T3、T7、MB FW、XK-R-2、XK-R-3、XK-F-2。進(jìn)一步構(gòu)建pGLΔXbaI-KpnI-XhoI(KX)、HindⅢ-XhoⅠ(HDX/S)、PstI-XhoⅠ(PX)、HindⅢ-XhoⅠ(HDX/L)、EcoRI-XhoI(EX2)、HincⅡ-XhoI(HIX)、HindII-HincIII(HDHI/L)或KpnI-HindII(HIK)并大規(guī)模制備這些質(zhì)粒DNA。
1.3 熒光素酶報(bào)告基因檢測(cè)
肝癌細(xì)胞HepG2利用DMEM培養(yǎng)基加入10%胎牛血清培養(yǎng)到80%。胰酶消化,離心收集細(xì)胞沉淀,計(jì)數(shù),15 000/孔鋪入96孔板,利用轉(zhuǎn)染試劑Lipo3000(lipofectamine3000)轉(zhuǎn)染野生型或重組質(zhì)粒pGL3-basic及pRL-SV40,48 h后,裂解細(xì)胞,利用雙熒光素酶報(bào)告基因試劑盒(Promega)檢測(cè)熒光素酶活性。
2.1 利用測(cè)序引物對(duì)KXb全長(zhǎng)測(cè)序,結(jié)果見圖1,KXb全長(zhǎng)2052 bp,含有限制性內(nèi)切酶KpnI、HincII、EcoRI、HindIII、PstI、XbaI。在760~790區(qū)域含有GATA重復(fù)序列。
2.2 本研究利用KpnI和XbaI雙酶切的方法從GDC基因5’端上游-4200~-2200區(qū)域分離出2.0 kb長(zhǎng)的DNA片段KXb,并將該片段插入到pBlueScript SK(+/-)載體中,成功構(gòu)建重組質(zhì)粒PBS-KXb,通過限制性內(nèi)切酶酶切重組質(zhì)粒發(fā)現(xiàn)GDC基因上游區(qū)域KXb段含有以下酶切位點(diǎn)KpnI、HincII、EcoRI、HindIII、PstI、XbaI。利用限制性內(nèi)切酶位點(diǎn)構(gòu)建KXb片段的截短體,并將截短體插入到載體pBlueScript SK(-)載體中,成功構(gòu)建以下重組質(zhì)粒pBS(-)KpnI-XbaI(KXb)、HindⅢ-XbaⅠ(HdXb/S)、PstI-XbaⅠ(PXb)、HindⅢ-XbaⅠ(HdXb/L)、EcoRI-XbaI(EXb)、HincⅡ-XbaI(HiXb)、HindII-HincIII(HdHi/L)或KpnI-HindII(Hik),見圖2。
2.3 構(gòu)建以下截?cái)囿w的重組質(zhì)粒pGLΔXbaI、KX(KpnI-XbaI)、HdX/S(HindⅢ-XbaⅠ)、PX(PstI-XbaⅠ)、HdX/L(HindⅢ-XbaⅠ)、EX2(EcoRI-XbaI)、HIX(HincⅡ-XbaI)、HDHI(HindII-HincIII)或HIk(KpnI-HindII),見圖3。
2.4 將重組質(zhì)粒(截短體)轉(zhuǎn)染到肝癌細(xì)胞中,觀察各截短體的熒光素酶活性,發(fā)現(xiàn)KX全長(zhǎng)和HDHI/L,HIK兩種截短體熒光素酶活性明顯高于空載體pGLΔXbaI、HDX/L截短體只有輕微升高,其他四種截短體HDX/S、PX、EX2、HIX熒光素酶活性則低于空載體pGLΔXbaI,見圖4。
甘氨酸脫羧酶廣泛存在于真核生物體內(nèi),植物體內(nèi)的甘氨酸脫羧酶主要參與光合作用,哺乳動(dòng)物體內(nèi)的甘氨酸脫羧酶則主要參與甘氨酸代謝[2-3]593-597,3692-3697?,F(xiàn)有研究發(fā)現(xiàn),甘氨酸脫羧酶基因突變導(dǎo)致非酮癥性高甘氨酸血癥,這種疾病中,甘氨酸脫羧酶基因突變多出現(xiàn)在該基因的5’端,5’端突變可能影響甘氨酸脫羧酶基因的轉(zhuǎn)錄,從而影響甘氨酸脫羧酶的mRNA表達(dá)水平[5]e69。雞GDC基因包括25個(gè)外顯子,共3572個(gè)堿基,處于202503和240569之間,位于Z染色體負(fù)鏈上(登錄號(hào):AC202790)[6]3323-3329。UpSp1、InvSp1和下游CP2基序是順式作用原件,可以啟動(dòng)雞GDC基因轉(zhuǎn)錄,而5’-端區(qū)域-4155/-83包括KX、UpR1S、UpR1A、UpR2S和UpR2A區(qū)域則可能會(huì)負(fù)向調(diào)節(jié)啟動(dòng)子活性[7]。所以本實(shí)驗(yàn)主要研究KX(-4200~-2200)區(qū)域,通過測(cè)序結(jié)果發(fā)現(xiàn),該區(qū)域確實(shí)含有CTTCTT重復(fù)序列,該序列可以通過結(jié)合蛋白,啟動(dòng)GDC基因轉(zhuǎn)錄[8]。但該區(qū)域含有的其他序列的作用還不明確,所以我們進(jìn)一步構(gòu)建了多種截短體來探究其調(diào)節(jié)作用。
通過雙熒光素酶報(bào)告基因檢測(cè),我們發(fā)現(xiàn)雞GDC基因5’-端區(qū)域-4200/-2200基因片段中,KX全長(zhǎng),HDHI和HIK截短體的熒光素酶活性升高,但是HDX/S、PX、EX2、HIX截短體的熒光素酶活性均有一定程度的降低,KX全長(zhǎng)含有完整的調(diào)節(jié)元件,可以啟動(dòng)GDC基因表達(dá),HDHI和HIK截短體區(qū)域則含有5′-CTTCTT-3′基序也可以啟動(dòng)GDC基因表達(dá),與Hong S等的研究結(jié)果一致,均可以增強(qiáng)GDC基因啟動(dòng)子活性[8]10523-10532。但是HDX/S、PX、EX2、HIX截短體的熒光素酶活性降低,則說明HDX/S區(qū)段可能抑制GDC基因啟動(dòng)子活性。雞GDC基因與人的GDC基因具有一定的相似度,且具有一些相同的原件,可以為人GDC基因的研究提供一定的依據(jù)。
圖1 GDC基因上游KXb區(qū)域基因圖譜
A
B
A:pBS-KX重組質(zhì)粒雙酶切瓊脂糖電泳,1:1 kb maker;2:KpnI-Pst1;3:KpnI-HincII;4:KpnI-HindIII;5:KpnI-EcoRI;6:KpnI-SacI;7:KpnI-XbaI;8:XbaI-PstI;9:noncut;10:100 bp maker;11:XbaI-HindIII;B:GDC上游KXb區(qū)域酶切圖譜
圖2 GDC上游KXb區(qū)域酶切圖譜
圖3 GDC基因上游KXb區(qū)域截短體熒光素酶報(bào)告基因的構(gòu)建
圖4 GDC基因上游KXb區(qū)域截短體的啟動(dòng)活性檢測(cè)
基因組DNA調(diào)取的方法有很多,long and accuracy PCR,genome walking及限制性內(nèi)切酶法調(diào)取DNA[9],而本研究采用的是酶切法調(diào)取DNA,根據(jù)現(xiàn)有研究預(yù)測(cè)GDC基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控區(qū)域,最后我們利用軟件查找轉(zhuǎn)錄調(diào)控區(qū)域內(nèi)的酶切位點(diǎn),選擇KpnI和XbaI兩種限制性內(nèi)切酶,調(diào)取GDC基因5’-端區(qū)域-4200/-2200基因,并將該片段插入到PBS(-)載體中,通過單酶切檢測(cè)片段長(zhǎng)度,進(jìn)一步用雙酶切鑒定單酶切的結(jié)果,最后得出GDC基因KX區(qū)域的物理圖譜。通過測(cè)序驗(yàn)證調(diào)取DNA的基因序列,繪制GDC基因KX區(qū)域的基因圖譜。酶切法調(diào)取DNA的方法相較于其他方法,用時(shí)較短,不易發(fā)生基因突變,結(jié)果的可行度較高,但DNA片段必須為單一限制性內(nèi)切酶,限制了該方法的使用。