李澤洋,伍時(shí)華,龍秀鋒*,吳軍,易弋
1(廣西科技大學(xué) 生物與化學(xué)工程學(xué)院,廣西 柳州,545006)2(廣西糖資源綠色加工重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣西 柳州,545006)3(廣西科技大學(xué)教學(xué)質(zhì)量監(jiān)控與評(píng)估中心,廣西 柳州,545006)
“曲為酒之骨”,酒曲在釀酒過程中發(fā)揮著重要作用,酒曲中具有不同功能的多種微生物將原料發(fā)酵成酒并使其具有獨(dú)特風(fēng)味[1-2]。微生物不能直接利用淀粉質(zhì)原料進(jìn)行發(fā)酵,酒曲中存在一類微生物,其產(chǎn)生的液化酶和糖化酶可將淀粉結(jié)構(gòu)中的α-1,4糖苷鍵和α-1,6糖苷鍵切斷,將淀粉轉(zhuǎn)化為葡萄糖等可發(fā)酵糖,從而提高淀粉利用率[3-5],此過程稱為糖化;這類微生物稱之為糖化菌。酒曲中糖化菌種類眾多,如霉菌、細(xì)菌和一些酵母等,多數(shù)以霉菌為主[6-10]。酒曲中常見的霉菌包括曲霉屬(Aspergillus)[11]、根霉屬(Rhizopus)[12-13]、毛霉屬(Mucor)、犁頭霉屬(Absidia)[14]、青霉屬(Penicillium)[15-16]等,其中曲霉屬和根霉屬菌種與其他菌種相比糖化能力尤為突出[17],在糧醅糖化過程中的作用十分顯著,廣泛應(yīng)用于大多數(shù)酒曲中[18-19]。部分糖化菌對(duì)釀酒起糖化作用的同時(shí)也兼具其他作用,如改善酒的口感,增加香氣物質(zhì)等,對(duì)釀造酒的風(fēng)味及風(fēng)格的形成都具有積極作用[20-21]。
為獲得在米酒釀造中淀粉糖化能力強(qiáng)的菌株,本研究采用孢子純化法從9種不同來源的酒曲中初篩得到純菌株,通過比較純菌株所制酒曲的液化力和糖化力復(fù)篩得到糖化能力突出的菌株,并對(duì)其進(jìn)行形態(tài)學(xué)和分子生物學(xué)鑒定,同時(shí)對(duì)菌株進(jìn)行試飯?jiān)囼?yàn)、蛋白酶活力測(cè)定及發(fā)酵風(fēng)味物質(zhì)分析。
酒曲:通過多種途徑收集得到9種不同酒曲,詳細(xì)信息見表1;秈米(市售)、麩皮(網(wǎng)購),無霉、無蛀保存完好。
表1 酒曲樣品信息Table 1 Information of the samples of Jiuqu
二氯甲烷、NaOH、CuSO4·5H2O、酒石酸鉀鈉、乳酸、乙酸、乙酸鈉、葡萄糖、三氯乙酸、Na2CO3、KI,西隴科學(xué)股份有限公司;可溶性淀粉(酶制劑行業(yè)檢測(cè)專用),湖州展望藥業(yè)有限公司;福林酚試劑,福州文萊生物科技有限公司;L-酪氨酸、酪蛋白,合肥博美生物科技有限責(zé)任公司;碘,天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司;乳酸鈉,天津市光復(fù)精細(xì)化工研究所。
PDA培養(yǎng)基:去皮馬鈴薯200 g,切塊沸水加熱20 min,8層紗布過濾取濾液,20 g葡萄糖,15 g瓊脂加熱溶解,加水補(bǔ)足至1 000 mL,自然pH,高壓蒸汽115 ℃滅菌20 min。
麩皮培養(yǎng)基:m(麩皮)∶m(水)=1∶0.8,每20 g麩皮分裝至500 mL三角瓶,高壓蒸汽121 ℃滅菌20 min,滅菌完畢振蕩三角瓶,確保麩皮培養(yǎng)基疏松不結(jié)塊。
米飯培養(yǎng)基:m(大米)∶m(水)=1∶3,每50 g米分裝至500 mL三角瓶,高壓蒸汽115 ℃滅菌20 min。
UV-8000S紫外可見分光光度計(jì),上海元析儀器有限公司;BX43生物顯微鏡,日本奧林巴斯有限公司;pHS-25CW臺(tái)式酸度計(jì),上海般特儀器制造有限公司;Tpersonal聚合鏈?zhǔn)椒磻?yīng)儀,德國Biometra公司;DYY-6D電泳儀,濟(jì)南東儀實(shí)驗(yàn)室設(shè)備有限公司;ZXSD-R1430生化培養(yǎng)箱,上海智城分析儀器制造有限公司;SW-CJ-TB標(biāo)準(zhǔn)凈化工作臺(tái),蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司;LS-B35L-I立式壓力蒸汽滅菌器,江陰濱江醫(yī)療設(shè)備有限公司;SBA生物傳感分析儀,濟(jì)南延和生物科技有限公司;TRACE 1300 ISQ QD 氣相色譜質(zhì)譜聯(lián)用儀、HP5-MS色譜柱(30 m×0.25 mm×0.25 μm),賽默飛世爾科技有限公司。
1.5.1 糖化菌的初篩
1.5.1.1 菌株的分離
稱取5.0 g曲粉(塊狀需研磨)溶于45 mL無菌水中,振蕩混勻2 min,靜置取上層菌(孢子)懸液,以10倍系列稀釋制備菌(孢子)懸液,分別取10-3、10-4、10-5、10-6、10-7菌(孢子)懸液100 μL,涂布于PDA平板培養(yǎng)基,30 ℃培養(yǎng)2~4 d,以點(diǎn)植法取具有典型糖化菌菌落特征的菌落孢子(曲霉、根霉),接種到新的PDA平板中培養(yǎng),30 ℃培養(yǎng)2~4 d。
1.5.1.2 菌株的純化
將1.5.1.1中分離的菌株,以點(diǎn)植法接種培養(yǎng)多代,直至肉眼觀察所培養(yǎng)菌落無其他外觀雜菌干擾,做到初步純化。
使用解剖刀將菌落切割并移至50 mL無菌水中振蕩,紗布過濾除菌絲取孢子懸液,以10倍系列稀釋制備10-7、10-8、10-9孢子懸液,取100 μL孢子懸液涂布于PDA平板培養(yǎng)基,30 ℃培養(yǎng),以一點(diǎn)為中心生長且不與其他菌落生長相連的單菌落視為純菌落(即此菌落為1個(gè)孢子生長繁殖而成),每個(gè)平板生長的菌落控制在1~3個(gè)為宜,過多則菌落生長易相連難以純化,此時(shí)需繼續(xù)稀釋孢子懸液,防止孢子飛散繁殖,在整個(gè)平板所有菌落產(chǎn)孢子前,以接種針挑取菌絲于PDA斜面培養(yǎng)基,培養(yǎng)至產(chǎn)孢子后4 ℃保存。
1.5.2 糖化菌的復(fù)篩
將已純化的菌株制備孢子懸液,調(diào)整其濃度為1×107個(gè)/mL,按照1×107個(gè)/20g麩皮接種于麩皮培養(yǎng)基,均勻攪拌, 30 ℃培養(yǎng)3 d(每日扣瓶3次),40 ℃烘干10 h,制成糖化曲,4 ℃密封保存。
參考QB/T 4257—2011中方法測(cè)定麩曲的液化力、糖化力[22],進(jìn)行3次平行測(cè)定。
1.5.3 形態(tài)學(xué)鑒定
將復(fù)篩得到的菌株以點(diǎn)植法接種于PDA平板中,30 ℃培養(yǎng)3 d,觀察菌落形態(tài)特征,并通過顯微鏡觀察其微觀形態(tài),參考《真菌鑒定手冊(cè)》對(duì)其進(jìn)行判斷[23]。
1.5.4 分子生物學(xué)鑒定
1.5.4.1 DNA體外擴(kuò)增
引物:ITS1(5′-GCATATCAATAAGCGGAGGAAAAG-3′)、ITS4(5′-GGTCCGTGTTTCAAGACGG-3′)。
PCR反應(yīng)體系:預(yù)混酶:25 μL;引物ITS1:2 μL;引物ITS4:2 μL;菌液:2 μL;ddH2O:19 μL。
擴(kuò)增條件:預(yù)變性:94 ℃、5 min;變性:94 ℃、1 min;退火:55 ℃、1 min;延伸:72 ℃、1 min;30個(gè)循環(huán);延伸:72 ℃、10 min;4 ℃保存。
1.5.4.2 測(cè)序及鑒定
取50 μL PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,通過1%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測(cè)。選取電泳條帶大小在600 bp左右的樣品切膠回收,產(chǎn)物送至廣州賽默飛世爾科技公司進(jìn)行測(cè)序。將測(cè)序結(jié)果提交于美國國立生物技術(shù)信息中心(National Center for Biotechnology Information,NCBI)的GenBank數(shù)據(jù)庫進(jìn)行BLAST序列比對(duì),使用Mega 5.0軟件中鄰接法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,并采用Bootstraping法評(píng)估其準(zhǔn)確度。
1.5.5 糖化試飯?jiān)囼?yàn)
1.5.5.1 試飯
稱取大米40 g,浸泡8 h,蒸米至熟而不爛,超凈臺(tái)內(nèi)放涼,稱重使米水質(zhì)量比達(dá)到1∶1.5,若質(zhì)量不足,均勻噴無菌水至米飯。以大米質(zhì)量的0.3%拌曲,移至500 mL無菌三角瓶培養(yǎng),透氣膜包扎,30 ℃培養(yǎng)72 h,每隔12 h取糖化飯10 g,加水50 mL,高壓蒸汽100 ℃滅菌10 min,迅速冷卻,測(cè)定葡萄糖含量,進(jìn)行3次平行測(cè)定。
1.5.5.2 米飯總糖測(cè)定
取米水質(zhì)量比達(dá)到1∶1.5的米飯100 g打漿,添加0.1 mL液化酶,95 ℃液化2 h,降溫至65 ℃,添加0.5 mL糖化酶糖化2 h,液化、糖化過程中加水,防止水分蒸干,糖化完畢充分過濾定容至1 000 mL,測(cè)定葡萄糖含量,進(jìn)行3次平行測(cè)定。
1.5.6 蛋白酶活力測(cè)定
參考GB/T 23527—2009,測(cè)定復(fù)篩得到的菌株的酸性和中性蛋白酶活力[24],進(jìn)行3次平行測(cè)定。
1.5.7 發(fā)酵風(fēng)味物質(zhì)分析
將篩選出的菌株制備孢子懸液,調(diào)整孢子懸液濃度為1×107個(gè)/mL,按照1×106個(gè)/g米接種到米飯培養(yǎng)基,30 ℃培養(yǎng)5 d,每日無菌條件下攪拌3次,11 000 r/min,4 ℃離心15 min,取30 mL上清液,分別加入30、20、10 mL二氯甲烷在搖床中(100 r/min)萃取1 h、30 min、10 min,分液漏斗取有機(jī)相,減壓濃縮至5 mL,使用GC-MS測(cè)定風(fēng)味物質(zhì)。
氣相色譜條件:40 ℃保持5 min,以5 ℃/min升至180 ℃保持5 min,再以5 ℃/min升至260 ℃保持2 min;進(jìn)樣口溫度280 ℃;氦氣流速1 mL/min;進(jìn)樣量1 μL;不分流進(jìn)樣。
質(zhì)譜條件:離子源溫度300 ℃;傳輸通道溫度280 ℃;電離方式EI電離源;電子能量70 eV;質(zhì)譜掃描范圍40~600 amu。
1.5.8 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析
利用Origin、Excel對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,分析結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。
目前普遍采用點(diǎn)植法純化霉菌,但此方法存在不足之處,霉菌具有蔓延生長和孢子易飛散的特點(diǎn),點(diǎn)植時(shí)蘸取的孢子難以確定是由同一株菌繁殖產(chǎn)生,菌落相似的菌株更加難以分辨,不能達(dá)到純化的目的。本研究首先采用點(diǎn)植法多代培養(yǎng),排除與所需分離菌株外觀不同的雜菌干擾,之后制取其孢子懸液涂布于培養(yǎng)基,以一點(diǎn)為中心生長且不與其他菌落生長相連的單菌落視為純菌落,即由單孢子繁殖而來,在整個(gè)平板所有菌落產(chǎn)孢子前盡快以接種針挑取保藏,此方法雖較繁瑣,但更加嚴(yán)謹(jǐn)。本研究以此方法從9種酒曲中初篩得到13株具有糖化菌特征的霉菌,初篩結(jié)果見表2。
表2 酒曲中菌株分離純化結(jié)果Table 2 Results of isolation and purification of strains from Jiuqu
2.2.1 液化力的測(cè)定
在釀酒過程中,液化酶可將淀粉質(zhì)原料水解為糊精、麥芽三糖、直鏈麥芽低聚糖及葡萄糖等微生物所需營養(yǎng)物質(zhì),有利于發(fā)酵的進(jìn)行,對(duì)酒風(fēng)味的形成也起到一定的促進(jìn)作用,因此液化力是衡量菌株糖化能力的指標(biāo)之一。在35 ℃,pH 4.6的條件下,記錄麩曲浸出液將淀粉完全液化的時(shí)間(以碘液檢驗(yàn)),以1 g 絕干曲1 h能液化的淀粉毫克數(shù)表示液化力,結(jié)果如圖1所示。菌株7M1、5M2、1M5、9M1、1M4、5M3均具有良好的液化力,液化力依次為(1 929±94.55)、(1 868±92.74)、(1 315±46.54)、(1 125±73.84)、(1 130±66.95)、(1 034±65.16) mg/(g·h),其他菌株液化力均小于1 000 mg/(g·h)。
圖1 13株霉菌所制麩曲液化力Fig.1 Liquefying power of Fuqu made by 13 molds
2.2.2 糖化力的測(cè)定
糖化酶能將淀粉全部轉(zhuǎn)化為葡萄糖,也可以將淀粉液化產(chǎn)物轉(zhuǎn)化為葡萄糖,解決了部分微生物對(duì)非葡萄糖碳源利用率低或不能利用的問題,提高了淀粉利用率,因此糖化力能直接反映菌株糖化能力。在35 ℃,pH 4.6的條件下,用菲林法測(cè)定麩曲浸出液將淀粉轉(zhuǎn)化為葡萄糖的量,以1 g絕干曲1 h轉(zhuǎn)化可溶性淀粉生成葡萄糖的毫克數(shù)表示糖化力,結(jié)果如圖2所示。菌株5M2、1M5和7M1均具有較好的糖化力,糖化力依次為(1 556±15.56)、(1 252 ±63.78)、(1 054±21.11) mg/(g·h),其他菌株糖化力均小于1 000 mg/(g·h)。
圖2 13株霉菌所制麩曲糖化力Fig.2 Saccharifying power of Fuqu made by 13 molds
在釀酒中,糖化酶水解液化產(chǎn)物為葡萄糖相比于直接水解淀粉更容易且迅速,因此在生產(chǎn)中,液化力和糖化力突出的菌株常搭配使用,達(dá)到最終糖化的目的。綜合分析,菌株1M5、5M2和7M1的液化力及糖化力均突出,具有單獨(dú)使用的潛力。
將菌株1M5、5M2和7M1接種在PDA培養(yǎng)基中,30 ℃培養(yǎng)3 d,觀察菌落形態(tài)及顯微形態(tài),如圖3所示。
a-菌株1M5菌落正面、背面和顯微形態(tài);b-菌株5M2菌落正面、背面和顯微形態(tài);c-菌株7M1菌落正面、背面和顯微形態(tài)圖3 菌株1M5、5M2和7M1菌落及顯微形態(tài)Fig.3 Morphological characteristics of strains 1M5, 5M2 and 7M1
菌株1M5菌落的正面及背面初為白色,后中心變?yōu)楹谏⑾蜻吘墧U(kuò)散,直徑達(dá)6 cm,邊緣不整齊,菌落疏松呈絮狀,菌絲發(fā)達(dá)。顯微觀察,孢囊梗直立叢生,不分支與假根對(duì)生,直徑達(dá)8~10 μm。孢子囊呈球形,直徑35~50 μm,孢子近似球形,直徑2.5~4 μm,符合根霉特征。
菌株5M2菌落正面初為白色,后中心變?yōu)槟G色并向邊緣擴(kuò)散,背面呈淡黃色,有以接種點(diǎn)為中心放射狀溝紋,直徑達(dá)2.5 cm,邊緣整齊,顯微觀察,孢囊梗直徑達(dá)13~18 μm。孢子囊呈棒狀,長直徑達(dá)40~50 μm,孢子近似球形,直徑3~4.5 μm,符合棒曲霉特征。
菌株7M1菌落正面初為白色,后中心變?yōu)楹谏⑾蜻吘墧U(kuò)散,背面呈淡黃色,直徑達(dá)3 cm。顯微觀察,孢囊梗與基地部位可見足細(xì)胞,孢囊梗直徑達(dá)13~18 μm。孢子囊呈球形,直徑35~45 μm,雙層小梗呈放射狀排列,孢子近似球形,直徑3~5 μm,符合黑曲霉特征。
將菌株1M5,5M2和7M1的測(cè)序結(jié)果在NCBI進(jìn)行BLAST比對(duì),結(jié)合鄰接法構(gòu)建進(jìn)化樹,結(jié)果如圖4和圖5所示。
圖4 采用鄰接法構(gòu)建菌株1M5與相關(guān)分類群的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.4 Neighbor-joining phylogenetic tree of strain 1M5 and related taxa constructed
圖5 采用鄰接法構(gòu)建菌株5M2、7M1與相關(guān)分類群的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.5 Neighbor-joining phylogenetic tree of strains 5M2,7M1 and related taxa constructed
經(jīng)BLAST比對(duì),菌株1M5與RhizopusmicrosporusCNM-CM—5165 (JX120681.1)、菌株5M2與AspergillusclavatusHAk 2-M26 (KU052566.1)及菌株7M1與AspergillusnigerCMXY 25845 (MG991652.1)相似性均達(dá)到100%,在系統(tǒng)發(fā)育樹中也分別聚于同一分支,自展值均達(dá)到100%。結(jié)合形態(tài)學(xué)鑒定結(jié)果,可以確定菌株1M5為根霉屬的小孢根霉,菌株5M2為曲霉屬的棒曲霉,菌株7M1為曲霉屬的黑曲霉。
將小孢根霉1M5、棒曲霉5M2和黑曲霉7M1制成的麩曲,與實(shí)驗(yàn)室保存的重陽酒曲做對(duì)比,接種到米飯中,使用SBA生物傳感分析儀測(cè)定米飯中葡萄糖含量,結(jié)果如圖6所示。
圖6 小孢根霉1M5、棒曲霉5M2、黑曲霉7M1所制麩曲和重陽酒曲糖化米飯生成的葡萄糖含量Fig.6 Glucose contents of rice saccharified by Chongyang Jiuqu and Fuqu made by strains Rhizopus microsporus 1M5, Aspergillus clavatus 5M2, Aspergillus niger 7M1
發(fā)酵0~24 h,自制酒曲中葡萄糖積累量增加緩慢,24~48 h,葡萄糖積累量快速增加;重陽酒曲中,12 h后葡萄糖開始大量積累,比自制酒曲更早進(jìn)入葡萄糖積累快速增加階段;自制酒曲48~72 h葡萄糖積累緩慢增加,重陽酒曲48~60 h,葡萄糖積累緩慢增加,60~72 h出現(xiàn)葡萄糖積累量下降的情況,自制酒曲60~72 h積累量仍在上升??芍?種酒曲應(yīng)用到釀酒中,使用重陽酒曲所需糖化培菌時(shí)間更短,但自制酒曲可通過加大酒曲用量提前進(jìn)入葡萄糖大量積累階段,并且縮短糖化時(shí)間。4種酒曲試飯葡萄糖積累量存在差異,小孢根霉7M1酒曲72 h試飯葡萄糖積累量最高、其次為重陽酒曲、棒曲霉1M5酒曲和黑曲霉5M2酒曲,每100 g米飯分別含(21.9±0.66)、(21.43±1.45)、(20.43±1.22)和(18.17±0.93) g葡萄糖。將未加入酒曲的米飯中添加液化酶、糖化酶使米飯全部糖化,測(cè)得100 g米飯含(32.67±1.01) g葡萄糖,通過計(jì)算,酒曲7M1、1M5和5M2的72 h試飯?zhí)腔史謩e為67.04%、62.55%和55.61%,重陽酒曲為65.51%。重陽酒曲60 h葡萄糖積累量達(dá)到最大,最大糖化率為69.79%,之后積累量下降,但自制酒曲60 h后葡萄糖仍在積累,具有超越重陽酒曲最大糖化率的潛力。綜上所述,篩選得到的小孢根霉1M5、棒曲霉5M2和黑曲霉7M1糖化能力良好,具有釀造米酒的潛力。
釀酒過程處于酸性和中性環(huán)境,原料中的蛋白質(zhì)能夠被酒曲中微生物分泌的酸性和中性蛋白酶水解,能夠提供更多的碳源和氨基酸,促進(jìn)微生物生長繁殖[25-27],改善營養(yǎng)價(jià)值,并且對(duì)產(chǎn)品風(fēng)味的形成起到重要作用[28-29]。因此制作了L-酪氨酸標(biāo)準(zhǔn)曲線,并使用Folin-酚法測(cè)定了小孢根霉1M5、棒曲霉5M2和黑曲霉7M1所制麩曲的酸性和中性蛋白酶活力。1 g絕干曲粉,在40 ℃和一定pH值(pH 3:酸性;pH 7.5:中性)條件下,以1 min水解酪蛋白產(chǎn)生酪氨酸的微克數(shù),表示蛋白酶活力,結(jié)果如表3所示。
在L-酪氨酸標(biāo)準(zhǔn)液濃度范圍內(nèi)(0~50 μg/mL)線性關(guān)系良好(R2=0.997 4,y=0.010 2x+0.003 3),符合檢測(cè)要求。由表3可知,黑曲霉7M1酸性蛋白酶活力最大,其次為棒曲霉5M2和小孢根霉1M5。棒曲霉5M2中性蛋白酶活力最大,其次為小孢根霉1M5和黑曲霉7M1。綜合考慮,菌株5M2酸性和中性蛋白酶活力均較高,對(duì)整個(gè)發(fā)酵過程而言,更具有優(yōu)勢(shì),因此篩選出菌株5M2并使用GC-MS分析其風(fēng)味成分。
表3 小孢根霉1M5、棒曲霉5M2和黑曲霉7M1所制麩曲的酸性及中性蛋白酶活力Table 3 Acid and neutral protease activities of Fuqu made by strains Rhizopus microsporus 1M5, Aspergillus clavatus 5M2 and Aspergillus niger 7M1
將棒曲霉5M2的孢子懸液接種到米飯培養(yǎng)基發(fā)酵,利用GC-MS對(duì)發(fā)酵代謝的風(fēng)味物質(zhì)進(jìn)行測(cè)定。經(jīng)過發(fā)酵后,培養(yǎng)基帶有淡淡的花香和果香。棒曲霉5M2發(fā)酵產(chǎn)生的主要特征風(fēng)味物質(zhì)共13種,如表4所示。分為4大類:酸類、烷烴類、酯類、醇類。3-甲基戊酸、苯甲醇、苯乙醇、苯乙酸、十五酸乙酯都有令人愉悅的香味,其中苯乙醇是米香型酒中主體香氣之一[30],烷烴類、醇類和酸類化合物可以作為風(fēng)味物質(zhì)的前體物質(zhì),對(duì)產(chǎn)品的口感也起到一定的促進(jìn)作用。
表4 棒曲霉5M2發(fā)酵主要風(fēng)味物質(zhì)Table 4 Main flavor compounds of Aspergillus clavatus 5M2
(1)從酒曲中以孢子分離純化法初篩得到13株具有糖化菌特征的霉菌,經(jīng)復(fù)篩并鑒定得到糖化能力突出的小孢根霉1M5、棒曲霉5M2和黑曲霉7M1,其液化力分別為(1 315±46.54)、(1 868±92.74)、(1 929±94.55) mg/(g·h),糖化力分別為(1 252±63.78)、(1 556±15.56)、(1 054±21.11) mg/(g·h)。
(2)對(duì)小孢根霉1M5、棒曲霉5M2和黑曲霉7M1進(jìn)行酸性及中性蛋白酶活力測(cè)定,結(jié)果表明菌株5M2分泌的蛋白酶更適用于發(fā)酵,其酸性及中性蛋白酶活力分別為(879±44.34)和(1 207±38.86) μg/(g·min),對(duì)其進(jìn)行發(fā)酵風(fēng)味物質(zhì)分析,發(fā)酵產(chǎn)生的3-甲基戊酸、苯甲醇、苯乙醇、苯乙酸和十五酸乙酯都有令人愉悅的香味。
(3)小孢根霉1M5、棒曲霉5M2和黑曲霉7M1在米酒釀造中具有應(yīng)用潛力。