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TRPM2基因敲除通過調(diào)控GSK3β改善脂多糖誘導(dǎo)小鼠抑郁樣行為

2021-06-05 02:58張占琴王輝蔣永潑
實(shí)用醫(yī)學(xué)雜志 2021年10期
關(guān)鍵詞:皮層陽性細(xì)胞膠質(zhì)

張占琴 王輝 蔣永潑

西安交通大學(xué)第一附屬醫(yī)院1麻醉手術(shù)部&腦科學(xué)中心,2疼痛科(西安710061);3浙江大學(xué)臺(tái)州醫(yī)院重癥醫(yī)學(xué)科(浙江臺(tái)州317000)

抑郁癥是一種以對事物失去興趣或愉快感,持續(xù)性情緒低落或悲觀等為主要臨床特征的精神障礙性疾?。?]。臨床上目前常用的抗抑郁藥物多通過抑制去甲腎上腺素轉(zhuǎn)運(yùn)體功能和5?羥色胺(5?HT)再攝取來改善抑郁癥狀,然而當(dāng)前的抗抑郁藥物存在起效慢、有效率低、停藥易復(fù)發(fā)等缺點(diǎn)[2]。越來越多的證據(jù)表明炎癥反應(yīng)與抑郁的發(fā)病密切相關(guān),促炎細(xì)胞因子腫瘤壞死因子?α(TNF?α)、白細(xì)胞介素?6(IL?6)和白細(xì)胞介素?1β(IL?1β)在抑郁癥過程中發(fā)揮關(guān)鍵作用[3],抑郁癥患者外周血促炎因子TNF?α、IL?6 和IL?1β明顯升高[4]。另外,約30%左右的膿毒癥存活者表現(xiàn)出不同程度的抑郁樣癥狀,嚴(yán)重影響患者的生活質(zhì)量[5]。瞬時(shí)受體電位通道M2(transient receptor potential melastatin 2,TRPM2)是細(xì)胞膜上的一種多功能鈣離子通透性的非選擇性陽離子通道,在中樞神經(jīng)系統(tǒng)免疫細(xì)胞中高表達(dá)[6]。生理狀態(tài)下,TRPM2優(yōu)先定位于中樞神經(jīng)系統(tǒng)的小膠質(zhì)細(xì)胞,在星形膠質(zhì)細(xì)胞中較弱表達(dá)[7]。它同時(shí)又具有ADP 核糖及NAD 結(jié)合位點(diǎn),能夠被H2O2及TNF?α調(diào)控,是體內(nèi)氧化應(yīng)激敏感的Ca2+通道[6]。研究發(fā)現(xiàn)缺血缺氧損害可以通過激活細(xì)胞膜上的TRPM2 通道介導(dǎo)Ca2+的出入胞活動(dòng),引起鈣超載和細(xì)胞凋亡,阻斷TRPM2 通道可顯著降低細(xì)胞凋亡[8]。膠質(zhì)細(xì)胞激活及其介導(dǎo)的神經(jīng)炎癥反應(yīng)參與膿毒癥介導(dǎo)的小鼠抑郁樣行為[9],然而目前關(guān)于TRPM2是否在脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)在誘導(dǎo)小鼠抑郁樣行為中的作用及其機(jī)制均不明確。本研究通過觀察TRPM2基因敲除(TRPM2-/-)對LPS誘導(dǎo)小鼠抑郁樣行為的影響,以期為其相關(guān)臨床應(yīng)用提供新思路。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物及模型制備雄性C57 小鼠為背景的野生型和TRPM2-/-小鼠飼養(yǎng)于無病原體、12 h 光照循環(huán)(8:00 ~20:00)、室溫(24±2)℃的動(dòng)物房,整個(gè)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)遵從西安交通大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理委員會(huì)要求進(jìn)行。6 ~8 周齡(體質(zhì)量20 ~25 g)的雄性WT 和TRPM2-/-小鼠共分為野生小鼠對照組(WT)、野生小鼠模型組(WT+LPS)、TRPM2-/-小鼠對照組(TRPM2-/-)和TRPM2-/-小鼠模型組(TRPM2-/-+LPS)四組。其中將60 只TRPM2-/-小鼠,分為TRPM2-/-組和TRPM2-/-+LPS組各30只;另取60只同基因型背景的野生型小鼠,分為WT 組和WT+LPS組各30 只。模型組腹腔注射0.83 mg/kg LPS[10],對照組腹腔注射等量體積的生理鹽水。參照文獻(xiàn)報(bào)道,4 組小鼠造模后24 h 觀察行為學(xué)(懸尾實(shí)驗(yàn)和強(qiáng)迫游泳實(shí)驗(yàn))[10-12],隨后處死所有小鼠進(jìn)行ELISA、免疫熒光和Western blot 等檢測。

1.2 主要試劑LPS(血清型:0127:B8,美國Sigma公司);5?HT 檢測試劑盒(美 國Abcam 公司);TNF?α和IL?1β酶聯(lián)免疫吸附(Elisa)試劑盒(欣博盛生物科技有限公司);Iba?1、GFAP、NeuN、t?GSK?3β和GAPDH 抗體(武漢三鷹生物技術(shù)有限公司);p?GSK?3β(美 國cell signaling technology 公司);BCA蛋白濃度測定試劑盒及ECL 發(fā)光試劑盒(美國Thermo 公司);熒光二抗(西安壯志生物有限公司);DAPI 和RIPA 裂解液(上海碧云天生物技術(shù)有限公司)。

1.3 實(shí)驗(yàn)方法

1.3.1 5?HT 含量測定處死小鼠后冰上取出腦組織,分離海馬和前額葉皮層。按照5?HT 檢測試劑盒的操作步驟,檢測小鼠海馬和前額葉皮層5?HT的含量。

1.3.2 免疫熒光染色甲醛灌注及固定腦組織后依次用含20%和30%蔗糖的PB 溶液沉底。冰凍切片機(jī)進(jìn)行冠狀切片,厚度為6 μm。5 % BSA 室溫封閉2 h 后,分別用Iba?1(1∶100)、GFAP(1∶200)和NeuN(1∶200)抗體孵育18 h。然后用相應(yīng)的熒光二抗避光孵育2 h,DAPI(1∶300)核染色5 min。正置顯微鏡下拍照觀察,Image J 軟件統(tǒng)計(jì)每張腦片Iba?1、GFAP 和NeuN 陽性細(xì)胞數(shù)。

1.3.3 ELISA 法測定海馬組織TNF?α和IL?1β的含量處死小鼠后分離海馬組織并加入預(yù)冷的PBS,勻漿、4 ℃、8 000×g離心10 min,取上清。按照TNF?α和IL?1β檢測試劑盒的操作步驟,檢測小鼠海馬TNF?α和IL?1β的含量。

1.3.4 Western blot檢測采用RIPA 裂解液(10 mL/g)、廣譜磷酸酶抑制劑(1∶100)和PMSF(1∶100)提取海馬組織的總蛋白,冰上超聲破碎以及重新裂解后,4 ℃、13 000×g離心10 min,取上清行BCA蛋白定量。按照每孔60 μg 上樣量進(jìn)行SDS?PAGE電泳,電泳結(jié)束后將蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF膜上。加入一抗p?GSK?3β(1∶1 000)、t?GSK?3β(1∶1 000)和GAPDH(1∶3 000)后4 ℃過夜后,加入相應(yīng)的二抗羊抗兔(1∶10 000)或羊抗鼠(1∶5 000)室溫孵育1 h,ECL 顯影,Bio?Rad 凝膠成像系統(tǒng)采集圖像并進(jìn)行灰度值分析。

1.3.5 懸尾實(shí)驗(yàn)固定小鼠尾部1 cm 處,將小鼠懸掛于30 cm 的觀察箱中,保持小鼠鼻尖距地面約20 ~25 cm。記錄6 min 內(nèi)小鼠的不動(dòng)時(shí)間,并計(jì)算不動(dòng)時(shí)間百分比。

1.3.6 強(qiáng)迫游泳實(shí)驗(yàn)將小鼠置于高20 cm,直徑12 cm,水深10 cm 的圓柱形透明缸中,水溫(24 ±2)℃。攝像機(jī)采集6 min,記錄后4 min 內(nèi)累計(jì)不動(dòng)時(shí)間。

1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,使用SPSS 20.0 軟件進(jìn)行分析。多組間均數(shù)比較采用單因素方差分析,兩兩比較方差齊性采用t檢驗(yàn),方差不齊采用非參數(shù)秩和檢驗(yàn)。P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 TRPM2 基因敲除對LPS 模型前額葉皮層和海馬5?HT 含量的影響與WT 組比較,TRPM2-/-組小鼠前額葉皮層和海馬5?HT 含量無明顯差異,WT+LPS 組小鼠前額葉皮層和海馬5?HT 含量顯著降低(P<0.01);與WT+LPS 組比較,TRPM2-/-+LPS組小鼠前額葉皮層5?HT 含量無明顯差異,而海馬5?HT 含量顯著升高。見表1。

2.2 神經(jīng)元和膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)志物表達(dá)變化與WT組比較,TRPM2-/-組小鼠海馬GFAP、Iba?1 和NeuN 陽性細(xì)胞數(shù)無明顯差異,WT+LPS 組小鼠海馬GFAP和Iba?1 陽性細(xì)胞數(shù)增多(P<0.05),而NeuN 陽性細(xì)胞數(shù)無明顯差異;與WT+LPS 組比較,TRPM2-/-+LPS組小鼠海馬GFAP和Iba?1陽性細(xì)胞數(shù)明顯減少(P<0.05),而NeuN 陽性細(xì)胞數(shù)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。見圖1、表2。

表1 四組小鼠前額葉皮層和海馬5?HT 含量Tab.1 5?HT expressions of hippocampus and prefrontal cortex tissues in 4 groups of mice±s,ng/g

表1 四組小鼠前額葉皮層和海馬5?HT 含量Tab.1 5?HT expressions of hippocampus and prefrontal cortex tissues in 4 groups of mice±s,ng/g

注:與WT 組比較,##P <0.01;與WT+LPS 組比較,*P <0.05

組別 前額葉皮層 海馬WT 組618.92±45.17726.33±105.12 TRPM2-/-組625.16±34.53699.15±86.29 WT+LPS 組TRPM2-/-+LPS 組426.01±58.14##442.97±80.36 457.98±38.55##605.19±23.76*

圖1 四組小鼠海馬CA3 區(qū)神經(jīng)元和膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)志物表達(dá)變化情況Fig.1 Changes of neuronal and glial cell markers of hippocampal CA3 region in 4 groups of mice

2.3 TRPM2 基因敲除對LPS 模型海馬TNF?α和IL?1β水平的影響與WT 組比較,TRPM2-/-組小鼠海馬TNF?α和IL?1β水平無明顯差異,WT+LPS 組小鼠海馬TNF?α和IL?1β水平顯著升高(P<0.05);與WT+LPS 組比較,TRPM2-/-+LPS 組小鼠海馬TNF?α和IL?1β水平顯著降低(P<0.05)。見表3。

2.4 TRPM2基因敲除對LPS 模型海馬p?GSK?3β和t?GSK?3β蛋白表達(dá)的影響Western blot 檢測結(jié)果顯示,四組小鼠海馬組織的t?GSK?3β的相對蛋白表達(dá)水平差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,但WT+LPS 組小鼠海馬組織p?GSK?3β的相對表達(dá)與WT 組比較明顯下降。而TRPM2-/-+LPS 組小鼠海馬p?GSK?3β的相對表達(dá)水平較WT+LPS 組升高。見圖2、表4。

表2 四組小鼠海馬神經(jīng)元和膠質(zhì)細(xì)胞陽性細(xì)胞數(shù)(40×)Tab.2 The number of NeuN,GFAP and Iba?1 positive cells of hippocampus in 4 groups of mice(40×)

表3 四組小鼠海馬TNF?α和IL?1β含量Tab.3 TNF?α and IL?1β contents of hippocampus in 4 groups of mice ±s

表3 四組小鼠海馬TNF?α和IL?1β含量Tab.3 TNF?α and IL?1β contents of hippocampus in 4 groups of mice ±s

注:與WT 組比較,##P <0.01;與WT+LPS 組比較,**P <0.01

組別WT 組TRPM2-/-組WT+LPS 組TRPM2-/-+LPS 組TNF?α(pg/mL)96±16 87±14 228±26##141±22**IL?1β(pg/mL)69±21 71±15 178±34##113±29**

表4 四組小鼠海馬區(qū)p?GSK?3β和t?GSK?3β表達(dá)的相對光密度值Tab.4 Relative optical density value of hippocampal p?GSK?3β and t?GSK?3β expressions in 4 groups of mice x±s

圖2 四組小鼠海馬區(qū)p?GSK?3β、t?GSK?3β和GAPDH 的電泳條帶圖Fig.2 p?GSK?3β,t?GSK?3β and GAPDH expressions of hippocampal tissues in 4 groups of mice

2.5 TRPM2基因敲除改善LPS誘導(dǎo)的小鼠抑郁樣行為與WT組比較,TRPM2-/-組小鼠在懸尾和強(qiáng)迫游泳實(shí)驗(yàn)中的不動(dòng)時(shí)間差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,WT+LPS 組小鼠在2 個(gè)實(shí)驗(yàn)中不動(dòng)時(shí)間顯著延長(P<0.05);與WT+LPS 組比較,TRPM2-/-+LPS 組小鼠在2 個(gè)實(shí)驗(yàn)中不動(dòng)時(shí)間顯著縮短(P<0.05)。見表5。

表5 四組小鼠在懸尾和強(qiáng)迫游泳實(shí)驗(yàn)中的不動(dòng)時(shí)間Tab.5 The mobility time of tail suspension test and forced swim test in 4 groups of mice ±s,s

表5 四組小鼠在懸尾和強(qiáng)迫游泳實(shí)驗(yàn)中的不動(dòng)時(shí)間Tab.5 The mobility time of tail suspension test and forced swim test in 4 groups of mice ±s,s

注:與WT 組比較,##P <0.01;與WT+LPS 組比較,*P <0.05,**P <0.01

組別WT 組TRPM2-/-組WT+LPS 組TRPM2-/-+LPS 組懸尾實(shí)驗(yàn)176.24±7.53 172.19±6.28 224.47±12.82##185.33±9.46**強(qiáng)迫游泳實(shí)驗(yàn)111.07±23.26 115.45±17.31 162.69±35.24##123.18±24.09*

3 討論

抑郁癥的病因和發(fā)病機(jī)制目前尚不清楚,研究發(fā)現(xiàn)抑郁癥患者外周血炎性細(xì)胞因子濃度升高[4],各種動(dòng)物抑郁模型顯示腦內(nèi)炎癥因子表達(dá)升高[13],說明抑郁的發(fā)病與炎癥的發(fā)生密切相關(guān)。TRPM2 是一種非選擇性的鈣離子通道,廣泛表達(dá)于腦內(nèi)的免疫細(xì)胞上。近年來發(fā)現(xiàn)TRPM2 基因敲除對神經(jīng)系統(tǒng)疾病如阿爾茨海默病、癲癇及缺血性腦血管病均具有良好的保護(hù)作用,其機(jī)制可能與其抗炎、抗氧化和抗凋亡等作用有關(guān)[14]。本研究結(jié)果顯示,TRPM2 基因敲除顯著逆轉(zhuǎn)LPS 誘導(dǎo)的海馬5?HT 含量降低和不動(dòng)時(shí)間延長,同時(shí)海馬異常升高的炎癥細(xì)胞因子TNF?α和IL?1β水平也明顯下降,說明TRPM2 基因敲除能夠改善LPS 誘導(dǎo)的小鼠抑郁樣行為,而且這種作用可能和降低海馬炎癥反應(yīng)有關(guān)。

LPS 是一種常用的促炎內(nèi)毒素,可觸發(fā)小膠質(zhì)細(xì)胞激活,誘導(dǎo)免疫激活和行為改變,類似于人類抑郁的臨床癥狀[15],因此常經(jīng)小鼠中樞或者外周給予LPS 誘導(dǎo)抑郁動(dòng)物模型。研究證實(shí)LPS 誘導(dǎo)的抑郁行為包括懸尾和強(qiáng)迫游泳實(shí)驗(yàn)不動(dòng)時(shí)間增加[10],這與本研究結(jié)果一致。LPS 引起的小鼠病態(tài)行為(豎毛、眼瞼下垂和嗜睡等)通常在給藥后6 h 達(dá)峰值時(shí)進(jìn)行測量,24 h 后小鼠自主活動(dòng)便可恢復(fù)正常,此時(shí)LPS 誘導(dǎo)的抑郁樣行為可與LPS 誘導(dǎo)的病態(tài)行為分離[16],對抑郁樣行為的觀察多在24 h 這一時(shí)間點(diǎn)進(jìn)行[10]。在本實(shí)驗(yàn)中,0.83 mg/kg LPS 腹腔注射24 h 后,小鼠自發(fā)活動(dòng)恢復(fù)正常,強(qiáng)迫游泳實(shí)驗(yàn)中不動(dòng)時(shí)間增多,與既往文獻(xiàn)報(bào)道一致[10]。先前的研究證實(shí)外周LPS 刺激誘導(dǎo)產(chǎn)生的炎性細(xì)胞因子能激活吲哚胺2,3-雙加氧酶(indole?amine2,3?dioxygenase,IDO),引起色氨酸代謝異常,最終導(dǎo)致5?HT 合成水平下降,并出現(xiàn)抑郁樣行為[17],給予小膠質(zhì)細(xì)胞刪除劑米諾環(huán)素后可間接阻斷IDO 激活,阻止抑郁癥的發(fā)展[18]。炎性細(xì)胞因子可直接或/和間接損傷神經(jīng)細(xì)胞,導(dǎo)致額葉皮層、海馬、杏仁核和基底核等與情緒有關(guān)腦區(qū)的神經(jīng)細(xì)胞功能受損[19]。本研究結(jié)果顯示LPS 誘導(dǎo)小鼠海馬和前額葉皮層5?HT 含量顯著降低,而TNF?α和IL?1β水平升高,并出現(xiàn)抑郁樣行為,進(jìn)一步說明炎癥反應(yīng)在抑郁癥發(fā)病中發(fā)揮重要作用。

在新生兒缺血缺氧性腦損傷模型中,TRPM2基因敲除可以降低星形膠質(zhì)細(xì)胞和小膠質(zhì)細(xì)胞激活,其機(jī)制可能與促進(jìn)GSK3β磷酸化有關(guān)[8]。本研究在LPS 模型中證實(shí)了TRPM2 基因敲除可以減輕小鼠抑郁樣行為,同時(shí)與抑郁發(fā)病密切相關(guān)的腦區(qū)海馬的TNF?α和IL?1β水平明顯下降,進(jìn)一步揭示了TRPM2 基因敲除改善抑郁樣行為可能和降低腦內(nèi)炎癥反應(yīng)程度有關(guān)。GSK3β的活性受到5?HT 信號的影響,GSK3 是5?HT1B 受體調(diào)控的Giα信號的功能選擇性調(diào)制器,刺激5?HT1 和5?HT7 激活PI3K/AKT 通路,增加GSK3β的磷酸化[20-21]。細(xì)胞中GSK3β的活性和表達(dá)受到神經(jīng)遞質(zhì)、神經(jīng)調(diào)質(zhì)和神經(jīng)營養(yǎng)因子等的調(diào)節(jié),這其中有許多被作為抗抑郁的靶標(biāo),GSK3β蛋白激酶活性異常、表達(dá)改變和基因多態(tài)性與重度抑郁癥的發(fā)病機(jī)制、發(fā)病年齡和嚴(yán)重程度相關(guān)[22]。然而,GSK3β活性增強(qiáng)是情緒障礙的因還是果,仍需進(jìn)一步的研究來充分闡明。腦內(nèi)過度的氧化應(yīng)激也是導(dǎo)致抑郁的原因[23],TRPM2 介導(dǎo)ROS 依賴的NLRP3 炎性體激活,TRPM2 基因敲除可以降低腦內(nèi)氧化應(yīng)激程度[6]。

綜上所述,TRPM2 基因敲除可以改善LPS 誘導(dǎo)的小鼠抑郁樣行為,可能與上調(diào)海馬p?GSK3β的蛋白表達(dá)有關(guān),但確切的抗抑郁機(jī)制有待進(jìn)一步研究。因此,仍需深入研究TRPM2 與GSK3β的聯(lián)系以及TRPM2 在抑郁等情緒調(diào)控中的作用,為抑郁癥的發(fā)病機(jī)制和治療提供新途徑。

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