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響應(yīng)面法優(yōu)化產(chǎn)木聚糖酶耐熱菌株的發(fā)酵條件

2022-09-13 14:18王瑞君
宜春學(xué)院學(xué)報 2022年3期
關(guān)鍵詞:產(chǎn)酶氯化銨麩皮

王瑞君,袁 欣

(宜春學(xué)院 化學(xué)與生物工程學(xué)院,江西 宜春 336000)

半纖維素是自然界中含量僅次于纖維素的可再生資源,半纖維素的主要成分為木聚糖,是構(gòu)成植物細(xì)胞壁的主要成分之一,占植物細(xì)胞干重的30-40%。[1]自然界中木聚糖含量豐富,但因其難以降解而無法被人類充分利用。在高等植物中木聚糖是主鏈以木糖殘基通過β-1,4糖苷鍵連接而成的線性分子,木聚糖的降解離不開木聚糖酶。

木聚糖酶是一類能夠降解木聚糖為木寡糖、木糖的復(fù)合酶系,木聚糖酶可應(yīng)用于能源、飼料、醫(yī)藥、食品、造紙、生物脫膠等領(lǐng)域。[2-3]木聚糖酶加入面粉中可以延緩了面包的水分遷移速率和失水速率、增強面包抗老化能力。[4]王茜等[5]在研究復(fù)合菌群脫膠效果時發(fā)現(xiàn),脫膠效果較好的復(fù)合菌系的組合中木聚糖酶的活力也較高。木聚糖酶可用于紙漿漂白,芬蘭森林公司在1988年首次進行木聚糖酶工廠化制漿實驗。[6]木聚糖酶來源廣泛,可來源于動物、植物、微生物。[7-8]因微生物產(chǎn)生的木聚糖酶因具有多樣性和微生物生長周期短等優(yōu)點,應(yīng)用于工業(yè)生產(chǎn)的木聚糖酶大部分來源于微生物。[9-10]

產(chǎn)木聚糖酶菌株的環(huán)境來源廣泛,可來源于土壤[11]、也可來源于水體[12],或者腐爛的植物[13]以及某些動物的腸道[14]。本文從江西宜春溫湯溫泉水淤泥中分離到一株產(chǎn)耐熱木聚糖酶菌株,對產(chǎn)酶條件進行優(yōu)化,有利于為木聚糖酶的進一步工業(yè)化利用奠定基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 試劑

木聚糖(sigma)、玉米芯木聚糖(成都)、燕麥木聚糖(sigma)、麩皮(購于農(nóng)貿(mào)市場),其他主要試劑購于國藥集團。

1.1.2 培養(yǎng)基

普通營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基:牛肉膏0.3%,蛋白胨1%,NaCl 0.5%,瓊脂2%。

木聚糖酶菌株篩選培養(yǎng)基:普通營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上添加1%的木聚糖。

基礎(chǔ)產(chǎn)酶培養(yǎng)基:麩皮15 g/L,蛋白胨5 g/L,1000 mL蒸餾水。

1.1.3 DNS溶液[15]

10g 3,5-二硝基水楊酸、16g NaOH、5.0g苯酚、5.0g亞硫酸鈉、300g酒石酸鉀鈉、超純水定容1L。

1.2 方法

1.2.1 菌株富集及篩選

從江西宜春溫湯的溫泉中取帶有淤泥的溫泉水,混勻,50 mL加入無菌錐形瓶中,同時加入1 g木聚糖,放入搖床中,55℃,180 r/min,培養(yǎng)12 h進行產(chǎn)木聚糖酶菌株的富集。

富集液10倍梯度進行稀釋,取合適濃度的稀釋液100 μL涂布于木聚糖酶菌株篩選培養(yǎng)基,放于生化培養(yǎng)箱,在55℃下培養(yǎng)24h。測量并記錄各菌落直徑d1、透明圈直徑d2,計算出透明圈與菌落直徑之比(d2/d1)。挑取透明圈與菌落直徑之比較大的菌株在普通營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基平板上劃線,55℃下培養(yǎng)24h。重復(fù)上述操作3次,最后挑取單菌落于營養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基中,液體培養(yǎng)純化菌株,以用于后續(xù)的試驗。

1.2.2 木糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備

按表1加入不同體積的1 mg/mL木糖溶液和蒸餾水后,在各試管中加入1 mL的DNS試劑,煮沸5 min,流水迅速冷卻,加入8 mL的蒸餾水,混勻,測定540 nm波長處的光吸收值。以吸光度值為縱坐標(biāo),木糖濃度(質(zhì)量)為橫坐標(biāo),繪制木糖標(biāo)準(zhǔn)曲線。得出標(biāo)準(zhǔn)曲線為Y=1.982X-0.03,(R2=0.999)。

表1 木糖標(biāo)準(zhǔn)曲線溶液的配制

1.2.3 木聚糖酶酶活力的測定

將發(fā)酵液在10000 r/min、4℃條件下離心5 min,所得上清液為粗酶液。木聚糖酶粗酶液200 μL加入到800 μL的用檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液配制的1%木聚糖底物溶液中,60℃水浴反應(yīng)5 min,采用DNS法測定所釋放的還原糖。

酶活力單位(U)定義為:在合適的條件下,單位時間(以每分鐘表示)內(nèi)水解木聚糖釋放1μg還原糖(以木糖表示)所需的酶量為1個酶活力單位。[16]

即:酶活力(U)=1000M × N/(T×L)

公式中M為還原糖(木糖)的質(zhì)量(mg),N代表酶液稀釋倍數(shù),T為反應(yīng)時間(min),L為反應(yīng)酶液的體積(mL)。

1.2.4 酶學(xué)性質(zhì)

最適溫度:木聚糖溶于pH5.5的0.1M的檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液中,配制1%的木聚糖底物溶液。800μL的底物溶液分別放置于45℃、50℃、55℃、60℃、65℃、70℃溫度條件下保溫10min后添加200μL粗酶液在相應(yīng)的溫度條件下反應(yīng)5min,測定酶活。

最適pH:配制pH5、pH5.5、pH6、pH6.5的0.1M的檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液與pH值為7.0的磷酸鹽緩沖液。木聚糖溶于不同酸堿度的緩沖液中配制不同pH的1%的木聚糖底物溶液。60℃測定不同pH值條件下的木聚糖酶活。

1.2.5 單因素試驗

最適碳源及最適添加量:在產(chǎn)酶培養(yǎng)基的氮源為蛋白胨、pH7.0±0.2的基礎(chǔ)上,改變碳源,分別添加10g/L的麩皮、燕麥木聚糖、玉米芯木聚糖、苧麻半纖維素,接種2%發(fā)酵液,在60 ℃,180r/min的條件下發(fā)酵24h,然后測定發(fā)酵液的酶活,確定最佳碳源。確定最佳碳源后,在氮源不變的基礎(chǔ)上,改變最適碳源的濃度,分別設(shè)定添加量為5g/L、10g/L、15g/L、20g/L、25g/L、30g/L,60 ℃,180r/min的條件下發(fā)酵24h,然后測定發(fā)酵液的酶活,確定最佳碳源的最適濃度。

最適氮源及最適添加量:在產(chǎn)酶培養(yǎng)基的碳源為麩皮、pH7.0±0.2的基礎(chǔ)上,改變氮源,分別添加1%的酵母浸粉、蛋白胨、尿素、NH4Cl,接種2%發(fā)酵液,在60 ℃,180r/min的條件下發(fā)酵24h,然后測定發(fā)酵液的酶活,確定最佳氮源。確定最佳氮源后,在碳源不變的基礎(chǔ)上,改變最適氮源的濃度,分別設(shè)定添加量為1g/L、2g/L、3g/L、4g/L、5g/L、6g/L、7g/L,60 ℃,180r/min的條件下發(fā)酵24h,然后測定發(fā)酵液的酶活,確定最佳氮源的最適濃度。

發(fā)酵時間的檢測:利用最佳發(fā)酵培養(yǎng)基發(fā)酵,培養(yǎng)12h后,每間隔4h取10mL發(fā)酵液,離心后測定上清液的酶活,確定最適發(fā)酵時間。

1.2.6 響應(yīng)面實驗設(shè)計

分析單因素試驗的數(shù)據(jù),以木聚糖酶活(Y)為響應(yīng)值對麩皮濃度(A)、氯化銨濃度(B)、發(fā)酵時間(C)進行響應(yīng)面優(yōu)化,根據(jù)Box-Behnken設(shè)計的原理,將數(shù)據(jù)進行二次多項回歸擬合并分析其變化情況,以確定該菌株產(chǎn)酶的最適組合。

2 結(jié)果分析

2.1 耐熱菌株的篩選

在選擇培養(yǎng)基上挑選到4株透明圈與菌落直徑比較大的菌株(結(jié)果見表2),產(chǎn)酶量與比值呈正相關(guān),可見菌株XY1菌株產(chǎn)酶量較大,對XY1分離純化并進行后續(xù)試驗。

表2 透明圈與菌落大小

2.2 木聚糖酶的酶學(xué)特性

2.2.1 木聚糖酶的最適溫度和最適pH值

圖1(a)為酶活力隨溫度變化趨勢圖。從圖1可以看出,在一定的溫度范圍內(nèi),木聚糖酶的酶活力隨著溫度的升高而升高,60℃時酶活力達到最大,溫度高于60℃后,隨著溫度的升高,酶活力急劇下降,結(jié)果顯示,該酶的最適溫度為60℃。在55~65℃的溫度范圍內(nèi),相對酶活力(以酶活最高者為100%)達到最適溫度酶活的70%以上。不同pH值下的木聚糖酶變化圖1(b)所示,數(shù)據(jù)表明,在pH5.5時,木聚糖酶的酶活最高,該酶最適反應(yīng)pH為5.5,屬于弱酸性水解酶。在pH5-7.0的范圍,相對酶活達到最適酶活的65%以上。

圖1 溫度和pH值對木聚糖酶活力的影響

2.3 產(chǎn)木聚糖酶培養(yǎng)基優(yōu)化

2.3.1 碳源及用量對酶活的影響

在初始產(chǎn)酶培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上,替換不同碳源(添加量為1%)(苧麻半纖維參考文獻[17]制備)進行試驗。由圖2(a)可知當(dāng)碳源為麩皮時酶活力最高,燕麥木聚糖次之,苧麻半纖維素為底物時,木聚糖酶的活力最低。麩皮為制備面粉時的副產(chǎn)物,為重要的農(nóng)業(yè)廢棄物,作為發(fā)酵培養(yǎng)基時可充分利用農(nóng)業(yè)廢棄物生產(chǎn)高附加值的木聚糖酶,因此在后續(xù)的發(fā)酵研究中選擇麩皮為發(fā)酵培養(yǎng)基的碳源。以麩皮為碳源改變其添加量進行發(fā)酵,圖2(b)數(shù)據(jù)顯示,當(dāng)麩皮添加量為20 g/L時菌株產(chǎn)酶能力最強,增大麩皮的添加量,酶活反而降低。這可能是由于麩皮添加量較高時體系中溶氧過低導(dǎo)致的。

圖2 不同碳源和氮源對產(chǎn)酶的影響

2.3.2 氮源及用量對酶活的影響

固定其他因素,替換不同氮源(添加量均為1%),由圖2(c)可知氯化銨為氮源時,菌株發(fā)酵過程中產(chǎn)酶能力較好,蛋白胨次之。尿素為氮源時,產(chǎn)酶能力最低??赡苁怯捎诼然@為速效氮源,易于吸收。改變氯化銨添加量為1 g/L、2 g/L、3 g/L、4 g/L、5 g/L、6 g/L、7 g/L分別進行發(fā)酵實驗,圖2(d)結(jié)果顯示,木聚糖酶的酶活在氯化銨濃度為5 g/L時酶活達到最高值。

2.3.3 發(fā)酵時間對酶活的影響

圖3結(jié)果顯示XY1菌株在發(fā)酵28h時其酶活達到最高值之后逐漸降低,經(jīng)spss26.0軟件對兩組數(shù)據(jù)分析發(fā)現(xiàn),在24h和28h的酶活數(shù)據(jù)沒有明顯差異(p>0.05),故選擇24h作為該酶的最適發(fā)酵時間。

圖3 相對酶活隨培養(yǎng)時間的變化

2.4 響應(yīng)面設(shè)計方案與結(jié)果

根據(jù)單因素試驗的結(jié)果,令麩皮濃度(A)、氯化銨濃度(B)、發(fā)酵時間(C)為自變量,木聚糖酶酶活力(Y)為響應(yīng)值,以Box-Behnken設(shè)計的原理設(shè)計響應(yīng)面,其因素與水平見表3,Box-Behnken設(shè)計試驗及結(jié)果見表4,方差分析結(jié)果見表5。

表3 Box-Behnken設(shè)計實驗因素與水平

表4 Box-Behnken試驗設(shè)計與結(jié)果

表5 回歸模型方差分析

利用軟件Design-Expert對實驗結(jié)果進行回歸分析,得出Y木聚糖酶酶活(U/mL)關(guān)于A麩皮(g/L)、B氯化銨(g/L)、C發(fā)酵時間(h)的回歸方程為:

Y=+133.87+9.34A+3.30B+12.37C-0.99AB-2.37AC-3.20BC-19.18A2-21.34B2-21.63C2

根據(jù)表5可知p<0.0001,表明該模型極顯著;失擬項p = 0.2017>0.05,不顯著,說明該回歸方程較準(zhǔn)確,可以用作發(fā)酵產(chǎn)木聚糖酶的優(yōu)化模型。R2=0.9508,調(diào)整R2=0.9897,說明該方程擬合度較高,且該模型可以解釋98.97%數(shù)據(jù)的變化。由于表中BC的p<0.05,而AB、AC的p值大于0.05,說明氯化銨與發(fā)酵時間的交互影響較為顯著,而麩皮與氯化銨、麩皮與發(fā)酵時間的交互影響相對之下不顯著。同時表中A2、B2、C2均對響應(yīng)值產(chǎn)生較為顯著的影響(p<0.0001)。

圖4是木聚糖酶酶活(Y)對應(yīng)各因素麩皮(A)、氯化銨(B)、發(fā)酵時間(C)形成的三維空間曲面圖。令某一因素不變,圖8(A)結(jié)果顯示,在麩皮濃度不變時,酶活隨著氯化銨濃度的增大呈現(xiàn)出先增大后減小的趨勢,氯化銨濃度不變時,麩皮濃度增大時,酶活也出現(xiàn)先增大后減小的情形。圖4(B)與圖4(C)表明麩皮與發(fā)酵時間、氯化銨與發(fā)酵時間的交互影響同樣使得酶活出現(xiàn)先增大后減小的趨勢。經(jīng)過Design-Expert優(yōu)化,分析得到最佳的發(fā)酵培養(yǎng)基為:麩皮22.25 g/L,氯化銨5.05 g/L,發(fā)酵時間為26.16 h。在此優(yōu)化條件下所產(chǎn)木聚糖酶酶活理論值為136.68 U/mL。

A麩皮與氯化銨交互作用的等高線圖與三維圖

2.6 模型驗證

為了確定該模型的準(zhǔn)確性,在軟件給出的優(yōu)化條件下實驗3次,比對分析。測得木聚糖酶酶活的平均值為139.37 U/mL,與理論值誤差僅有1.96%,由結(jié)果可知此發(fā)酵條件能夠適用于該菌株發(fā)酵產(chǎn)木聚糖酶。

3 討論與結(jié)論

常用于微生物發(fā)酵條件優(yōu)化的方法有單因素法、正交實驗、響應(yīng)面法等。單因素法可篩選出影響發(fā)酵的關(guān)鍵因素,但無法反映最佳因素組合,正交實驗法可以找出最佳因素水平之間的組合,但難以尋找到因素與組合之間的回歸方程,無法考查各因素之間的交互作用。響應(yīng)面法可以得到高精度的回歸方程,在微生物的發(fā)酵優(yōu)化中應(yīng)用越來越多。Shakir等[23]用響應(yīng)面法優(yōu)化提高一株芽孢桿菌產(chǎn)蛋白酶的產(chǎn)量。Vijayaraghavan[24]利用響應(yīng)面法優(yōu)化培養(yǎng)基提高了稻黃單胞菌IND3產(chǎn)纖溶酶的活性。

在本研究中,首先采用單因素法確定碳源、氮源、發(fā)酵時間等因素,然后利用響應(yīng)面法確定各因素的最佳值,得到了最佳發(fā)酵條件:麩皮22.25 g/L、氯化銨5.05 g/L、發(fā)酵時間26.16 h,在此優(yōu)化的發(fā)酵條件下產(chǎn)酶的最大值為139.37 U/mL,比本文中單因素試驗最大值提高了29.05%,證明根據(jù)響應(yīng)面法所得的回歸方程以及據(jù)此優(yōu)化得到的發(fā)酵工藝條件是有效的。

通常情況下,篩選的野生菌株發(fā)酵時產(chǎn)酶水平不高,本文通過響應(yīng)面法優(yōu)化產(chǎn)酶條件,XY1菌株所產(chǎn)酶活達到139.37 U/mL。粗酶液的酶學(xué)性質(zhì)結(jié)果表明,該酶的最適反應(yīng)溫度為60℃,最適反應(yīng)pH為5.5。該系列結(jié)果表明,該菌株產(chǎn)木聚糖酶具有進一步研究的價值和一定工業(yè)應(yīng)用潛力。

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