王子涵,葉改映,趙 濤,張 俊,胡 瑜
(昆明醫(yī)科大學(xué) 口腔醫(yī)學(xué)院,云南 昆明 650500)
顳下頜關(guān)節(jié)骨關(guān)節(jié)炎(temporomandibular joint osteoarthritis,TMJOA)是一種常見的口腔頜面部疾病,臨床癥狀包括顳下頜關(guān)節(jié)(temporomandibular joint,TMJ)區(qū)疼痛,腫脹,張口受限,咀嚼效率低下等,嚴(yán)重影響人類的健康和生活質(zhì)量[1]。TMJOA 是多種致病因素所導(dǎo)致的結(jié)果,目前病因尚不完全清楚。TMJOA 典型病理變化包括髁突軟骨細(xì)胞凋亡,軟骨基質(zhì)降解以及軟骨下骨骨質(zhì)改變等,其中關(guān)節(jié)軟骨的退行性變是OA 病理變化的核心[2]。且在OA 中,自噬在抑制軟骨細(xì)胞凋亡的啟動過程發(fā)揮關(guān)鍵的調(diào)控作用[3]。自噬轉(zhuǎn)導(dǎo)信號網(wǎng)絡(luò)及其介導(dǎo)的自噬過程錯(cuò)綜復(fù)雜,包括P13K/Akt、mTOR、MAPK、和NF—KB 信號通路等[4]。有很多研究證據(jù)表明,使用哺乳動物雷帕霉素靶蛋白(mammalian target of rapamycin,mTOR)抑制劑[5]或或 mTOR 基因特異性敲除[6]的動物模型中,OA 的病程明顯減輕,這也使得通過調(diào)控mTOR 來治療TMJOA 成為一個(gè)重要的研究方向。本實(shí)驗(yàn)將構(gòu)建偏側(cè)咀嚼導(dǎo)致的大鼠TMJOA 動物模型,進(jìn)一步檢測mTOR 在髁突軟骨中的表達(dá),探討自噬對TMJOA 病程的影響,加深理解TMJOA 的發(fā)生、發(fā)展,對探索相應(yīng)的治療方法具有重要意義。
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動物8 周齡清潔級實(shí)驗(yàn)動物(sprague dawley,SD)大鼠購于昆明醫(yī)科大學(xué)動物實(shí)驗(yàn)中心[合格證編號:SCXK(滇)K2020-0004],飼養(yǎng)于昆明醫(yī)科大學(xué)SPF 動物實(shí)驗(yàn)中心,體重(250±25)g,普通清潔環(huán)境,自由活動,給予足量食物和水。
1.1.2 主要試劑及實(shí)驗(yàn)設(shè)備正畸絲(杭州西湖材料有限公司,浙江);蘇木素染液(珠海貝索生物技術(shù)有限公司,廣東);改良番紅O-固綠軟骨染色液(索萊寶,北京);兔抗SOX9(SRY-related high mobility group-box gene9)抗體(正能生物380995);兔抗mTOR 抗體(ORIGENE TA325696);DAB 顯色試劑盒(福州邁新生物技術(shù)開發(fā)有限公司,福建);石蠟切片機(jī)(Leica,德國);光學(xué)顯微鏡(CARL ZEIS,德國)。
1.2.1 動物選擇及分組選用45 只無明顯口腔頜面部疾病的8 周齡健康雄性SD 大鼠。將27 只大鼠按偏側(cè)咀嚼2、4、8 周隨機(jī)分為3 個(gè)組,每組9 只;同時(shí)設(shè)立相應(yīng)假手術(shù)對照組,每組6 只。
1.2.2 建模方法大鼠于手術(shù)前夜禁食禁水,提前一天配置好3%戊巴比妥備用。手術(shù)時(shí)按每只大鼠1.5 mL 麻醉量進(jìn)行麻醉,麻醉起效后,固定大鼠,并牽拉上下頜切牙及舌頭以暴露下頜牙列,固定其開口狀態(tài)。用持針器持一段長2 cm 的正畸絲從右側(cè)下頜第一磨牙近中舌側(cè)牙間隙穿入,纏繞牙頸部一圈,并在舌面將兩頭正畸絲纏繞打結(jié)固定。實(shí)驗(yàn)組將正畸絲結(jié)彎曲至牙合面并保留一定長度以造成咬合障礙;對照組將正畸絲彎曲至于鄰牙舌面頸部貼合,無咬合障礙,后用探針檢查穩(wěn)定情況。實(shí)驗(yàn)組大鼠右側(cè)耳朵減去小三角瓣作為標(biāo)記,對照組不做標(biāo)記。建模后,定期檢查正畸絲的穩(wěn)固情況和完整度。
1.2.3 取材、脫鈣、脫水及包埋建模后2、4、8周分別取材,用脫頸椎處死法處死大鼠,完整切取大鼠右側(cè)顳下頜關(guān)節(jié)髁突組織,用生理鹽水沖凈后以4%多聚甲醛固定液固定于標(biāo)記好的EP 管中,固定48 h 后將標(biāo)本放入組織標(biāo)本盒中,自來水沖洗過夜。沖洗后用快速脫鈣液進(jìn)行脫鈣,每四小時(shí)檢查一次脫鈣程度,待完全脫鈣后流水沖流過夜。將沖洗好的的髁突組織依照70%酒精、80%酒精、90%酒精、95%酒精、無水乙醇Ⅰ、無水乙醇Ⅱ各浸泡6 min 以脫水,再浸泡入二甲苯Ⅰ30 min、二甲苯Ⅱ15 min 以透明。脫水完畢后將髁突組織取出,依次放入60 ℃恒溫烘箱中的熔融石蠟Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ中各60 min(浸蠟時(shí)間隨大鼠周齡增加可適當(dāng)延長)。將浸好蠟的組織容納盒放入包埋機(jī)蠟池中,用鑷子將髁突組織平放于金屬包埋盒底,滴滿石蠟,蓋上塑料包埋框盒,標(biāo)號序列放于冷凍機(jī)上冷凍。待石蠟完全凝固后除去多余部分。
1.2.4 組織化學(xué)染色進(jìn)行病理學(xué)檢查組織蠟塊修整后常規(guī)切片、脫蠟、水化后行蘇木素-伊紅和番紅-固綠染色。應(yīng)用改良Mankind 評分和國際骨關(guān)節(jié)炎研究協(xié)會(OARSI)評分評估大鼠TMJ軟骨病損程度。
1.2.5 免疫組織化學(xué)染色法測定髁突軟骨細(xì)胞中SOX9 及mTOR 的表達(dá)組織蠟塊修整后常規(guī)切片、脫蠟、水化后,通過ABC 法進(jìn)行染色。SOX9 染色一抗為兔抗SOX9(稀釋1∶200),mTOR 染色一抗為兔抗mTOR(稀釋1∶100),所有切片用兔生物素化的二抗孵育,DAB 顯色,蘇木素復(fù)染。固定封片后用光學(xué)顯微鏡拍攝,應(yīng)用imageproplus 選取3 個(gè)樣本計(jì)算軟骨細(xì)胞的平均光密度值(AOD 值),其平均值作為該組的平均光密度值。所有切片放在相同的載玻片上,在相同條件下共同進(jìn)行處理。
使用 Graphpad Prism9.0 統(tǒng)計(jì)軟件對實(shí)驗(yàn)結(jié)果數(shù)據(jù)進(jìn)行作圖統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。采用完全隨機(jī)設(shè)計(jì)的方差分析(one-way ANOVA)檢驗(yàn),所有數(shù)據(jù)顯示為均數(shù)±均數(shù)的標(biāo)準(zhǔn)差(mean ± SD)。P< 0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
蘇木精-伊紅(HE)染色顯示,髁突的軟骨結(jié)構(gòu)由內(nèi)向外可依次分為鈣化軟骨層、肥大層、增殖層和纖維層。番紅O-固綠染色顯示,對照組大鼠的髁突軟骨結(jié)構(gòu)層次清晰,表面平整,蛋白多糖分布均勻。
隨著時(shí)間推移,實(shí)驗(yàn)組(TMD 組)大鼠的髁突軟骨結(jié)構(gòu)出現(xiàn)明顯的退行性病變。實(shí)驗(yàn)2 周組HE 染色顯示軟骨組織表面略不均勻;番紅O-固綠染色顯示蛋白多糖非均質(zhì)性染色。實(shí)驗(yàn)4 周組HE 染色顯示軟骨組織表面不均勻?qū)蛹八搅严?,軟骨層變薄,肥大層?xì)胞減少,部分標(biāo)本出現(xiàn)表層纖維化和無細(xì)胞區(qū)。番紅O-固綠染色顯示蛋白多糖染色進(jìn)一步丟失,番紅O 淡染。實(shí)驗(yàn)8 周組軟骨組織表面粗糙,裂隙增大,軟骨細(xì)胞排列紊亂,可見無細(xì)胞區(qū)。番紅O-固綠染色顯示蛋白多糖非均質(zhì)性染色,表層和中深層失染(圖1、2)。改良Mankin 評分[7]和OARSI 評分[8]結(jié)果顯示,對比對照組,實(shí)驗(yàn)組(TMD 組)評分明顯升高(P<0.05),且病損評分在4 周時(shí)最高,8 周略有回落(圖3)。
圖1 大鼠顳下頜關(guān)節(jié) HE 染色(50×)Fig.1 HE staining of TMJ in rats(50×)
圖2 大鼠顳下頜關(guān)節(jié)番紅-固綠染色(50×)Fig.2 HE staining of TMJ in rats(50×)
圖3 大鼠顳下頜關(guān)節(jié)組織病理學(xué)評分Fig.3 Histopathological scores of TMJ in rats
SOX9 作為軟骨細(xì)胞增殖、分化的重要調(diào)控因子,其表達(dá)水平反映了顳下頜關(guān)節(jié)的生長改建情況,免疫組織化學(xué)染色顯示SOX9 陽性細(xì)胞主要在細(xì)胞核呈棕色染色(圖4)。實(shí)驗(yàn)過程中隨著異常生物力學(xué)刺激的增加,實(shí)驗(yàn)2 周(P< 0.01)、4 周(P< 0.05)、8 周(P< 0.05)組大鼠髁突軟骨中SOX9 表達(dá)水平呈依次下降且均低于對照組的趨勢(圖5)。
圖4 SOX9 免疫組化染色(100×)Fig.4 Immunohistochemical staining of SOX9(100×)
圖5 mTOR 免疫組化染色(100×)Fig.5 Immunohistochemical staining of mTOR(100×)
mTOR 作為髁突軟骨細(xì)胞的自噬抑制因子,在顳下頜骨關(guān)節(jié)炎中影響細(xì)胞的自噬凋亡,免疫組織化學(xué)染色顯示mTOR 陽性細(xì)胞主要在細(xì)胞質(zhì)呈棕色染色。實(shí)驗(yàn)過程中隨著骨關(guān)節(jié)炎病情發(fā)展,實(shí)驗(yàn)組mTOR 表達(dá)水平呈2 周(P< 0.01)、4 周(P<0.001)下調(diào),8 周(P< 0.05)上調(diào)的趨勢(圖6)。
圖6 SOX9 和mTOR 免疫組化染色強(qiáng)度分析Fig.6 Immunohistochemical staining intensity of SOX9 and mTOR
雖然TMJOA 具體病因和發(fā)病機(jī)制尚不清楚,但研究表明過度的機(jī)械負(fù)荷可能是影響OA 發(fā)生發(fā)展的重要因素[9],因此偏側(cè)咀嚼常被用于制作一種廉價(jià)、高效、貼近于實(shí)際病理環(huán)境的小鼠顳下頜關(guān)節(jié)骨關(guān)節(jié)炎模型[10]。在本研究構(gòu)建的大鼠TMJOA 模型中,通過對髁突組織進(jìn)行HE 染色和番紅固綠染色可見軟骨組織表層不平整,出現(xiàn)裂隙;軟骨層變薄,軟骨細(xì)胞層次紊亂,部分標(biāo)本出現(xiàn)表層纖維化和無細(xì)胞區(qū);蛋白多糖非均質(zhì)性染色,表層和中深層失染,提示使用偏側(cè)咀嚼構(gòu)建SD 大鼠TMJOA 模型的方法得以成立。另外,在本研究中,通過對髁突組織進(jìn)行免疫組織化學(xué)染色可以觀察到,實(shí)驗(yàn)2、4、8 周組大鼠髁突軟骨中SOX9 表達(dá)水平依次下降且均低于對照組,進(jìn)一步顯示了實(shí)驗(yàn)組大鼠骨關(guān)節(jié)炎的炎癥加重情況。
目前的研究認(rèn)為,骨關(guān)節(jié)炎中軟骨細(xì)胞凋亡的增加在骨關(guān)節(jié)炎的發(fā)病機(jī)制中居于中心地位和始動環(huán)節(jié)[11]。自噬在抑制軟骨細(xì)胞凋亡的啟動過程中,發(fā)揮關(guān)鍵的調(diào)控作用。當(dāng)細(xì)胞器受損時(shí),自噬被激活,從而清除受損細(xì)胞器,抑制凋亡、促進(jìn)修復(fù),延緩OA 的病程[12]。
研究表明,在OA 病程中尤其是發(fā)病的早期階段,軟骨細(xì)胞的自噬水平(特別是淺層軟骨)是明顯增高的,并且通過對凋亡及活性氧的調(diào)控影響OA 相關(guān)基因的表達(dá)[13],Bouderlique T 等[14]使用Atg5cKO 鼠研究增齡性和創(chuàng)傷性O(shè)A 時(shí),發(fā)現(xiàn)抑制軟骨細(xì)胞的自噬可以使凋亡增加,加速增齡性O(shè)A 的進(jìn)程。Zhang M 等[3]通過改變機(jī)械應(yīng)力誘導(dǎo)顳下頜關(guān)節(jié)軟骨的退變,發(fā)現(xiàn)自噬增強(qiáng),mTOR 和MAP4K3 活性受抑制而降低。表明在OA 中自噬在抑制軟骨細(xì)胞凋亡的啟動過程發(fā)揮關(guān)鍵的調(diào)控作用。
經(jīng)研究發(fā)現(xiàn),mTOR 是一種自噬重要的負(fù)調(diào)節(jié)因子,軟骨的生長發(fā)育以及 OA 的病程均與mTOR 介導(dǎo)的信號通路密切相關(guān)。有很多研究證據(jù)表明,在使用 mTOR 抑制劑[5]或特異性敲除mTOR 基因[6]的動物模型中,OA 的嚴(yán)重程度顯著降低。在筆者構(gòu)建的大鼠TMJOA 早期模型(2W)中,也可以觀察到mTOR 的表達(dá)受到了抑制,提示了在TMJOA 早期,自噬程序被激活而凋亡程序受到抑制,減少了早期炎癥造成的顳下頜關(guān)節(jié)軟骨損失。
但隨著炎癥的進(jìn)展,建模4 周時(shí)mTOR 明顯下調(diào),而改良Mankin 和OARSI 評分顯示,與對照組相比,實(shí)驗(yàn)組(TMD 組)評分明顯升高,且病損評分在此時(shí)達(dá)到最高,這可能是由于短暫增加的自噬是對細(xì)胞應(yīng)激的一種補(bǔ)償反應(yīng),但當(dāng)長期應(yīng)激超過該機(jī)制的能力時(shí),就造成了嚴(yán)重的損傷[15]。
建模8 周后,mTOR 的表達(dá)又有回升的趨勢,這提示炎癥晚期,自噬受到抑制,而細(xì)胞的凋亡程序被激活,軟骨損失進(jìn)一步加劇。
綜上所述,在筆者構(gòu)建的TMJOA 大鼠模型中,炎癥早期,大鼠的mTOR 表達(dá)受到抑制,軟骨細(xì)胞的自噬被激活而凋亡受到抑制,促進(jìn)退變軟骨修復(fù),從而延緩了OA 的病理進(jìn)程;但是到了炎癥晚期,mTOR 的表達(dá)被激活,軟骨細(xì)胞的自噬受到了抑制而逐漸向凋亡轉(zhuǎn)化,軟骨損失加重。mTOR 信號在生物力學(xué)誘導(dǎo)的TMJ OA 進(jìn)展中,在將保護(hù)性自噬轉(zhuǎn)變?yōu)槠茐男缘牡蛲鲋邪l(fā)揮了關(guān)鍵作用。
研究表明,僅是通過降解細(xì)胞外基質(zhì)或抑制促炎因子往往不能減緩OA 的進(jìn)程,但通過調(diào)節(jié)自噬,則可以改變軟骨細(xì)胞的基因表達(dá),調(diào)控細(xì)胞的穩(wěn)態(tài)機(jī)制,從而阻止細(xì)胞凋亡[16]。抑制mTOR 的表達(dá),則可以激活軟骨細(xì)胞的自噬,抑制氧化應(yīng)激和炎癥反應(yīng),從而達(dá)到治療 OA 的目的[6]。這也使得將 mTOR 作為TMJOA 的治療靶點(diǎn)成為一種有價(jià)值的研究方向。本實(shí)驗(yàn)初步探討了機(jī)械應(yīng)力造成TMJOA 后髁突軟骨細(xì)胞的病理特征和mTOR 的表達(dá)變化,為以后靶向藥物的研發(fā)提供一定的參考。