摘要利用水熱法合成了納米氧化鋅-還原氧化石墨烯(rGO)復(fù)合材料,采用傅里葉變換紅外光譜、X 射線衍射和X 射線光電子能譜確定此復(fù)合材料的價態(tài)結(jié)構(gòu)。以ZnO-rGO 作為光電化學(xué)傳感器的光電轉(zhuǎn)換材料,以土霉素(OTC)為模板分子,通過電聚合OTC 和吡咯(Py)的方法構(gòu)建分子印跡光電化學(xué)傳感器。將聚吡咯(PPy)膜中的OTC 洗脫后,在PPy 膜中留下OTC 的特異性“印跡孔穴”,從而可對OTC 選擇性識別。在優(yōu)化的條件下,此傳感器的光電流變化值與OTC 濃度(0.1~200 nmol/L)的對數(shù)值具有良好的線性關(guān)系,檢出限為0.05 nmol/L(S/N=3)。采用此傳感器對市售牛奶和蜂蜜中的OTC 進(jìn)行測定,回收率為95%~107%。
關(guān)鍵詞光電化學(xué)傳感器;氧化鋅-還原氧化石墨烯;聚吡咯;分子印跡;土霉素
土霉素(OTC)是一種廣譜抗菌藥物,具有抗菌性能好、成本低和副作用少等特點(diǎn)[1],被廣泛用于畜牧業(yè)和魚類養(yǎng)殖[2]。殘留在環(huán)境中的OTC 會導(dǎo)致細(xì)菌產(chǎn)生抗藥性,人類食用含有OTC 殘留的食品會導(dǎo)致OTC 在體內(nèi)積聚并對人體造成損害[3]。2019 年,我國發(fā)布的食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)(GB 31650—2019)[4]規(guī)定牛奶中的OTC 殘留量不得超過100 μg/kg。因此,開發(fā)簡單、快速和靈敏檢測食品中OTC 的方法具有重要的應(yīng)用價值。
目前,常用OTC 檢測方法主要有高效液相色譜法(HPLC)[5]、液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法[6]、熒光法[7]和電化學(xué)法[8-9]等。色譜法的準(zhǔn)確度高,但是樣品前處理方法復(fù)雜,并且需要昂貴的儀器和專業(yè)的操作人員,難以普遍應(yīng)用,因此需要研究一種簡便、高效的食品中痕量OTC 的檢測方法,以更好地保障食品安全和消費(fèi)者健康。光電化學(xué)傳感器(Photoelectrochemical sensor, PEC sensor)結(jié)合了傳統(tǒng)光化學(xué)和電化學(xué)技術(shù)的優(yōu)點(diǎn),實(shí)現(xiàn)了檢測信號和激發(fā)信號完全分離,可以降低背景噪音的干擾,因此具有更高的靈敏度,受到了研究者的廣泛關(guān)注[10]。半導(dǎo)體光活性材料在PEC 傳感器中起著極其重要的作用,近年來,研究者已經(jīng)開發(fā)了多種可有效地將紫外光或可見光轉(zhuǎn)化為光電流的光活性半導(dǎo)體材料,如TiO2[11]、ZnO[12]和Co3O4[13]等。
ZnO 是一種n 型半導(dǎo)體,具有性能穩(wěn)定、無毒和價廉等優(yōu)點(diǎn),在制備ZnO 時可以通過調(diào)控合成條件得到不同形貌和光催化性能的ZnO;但是, ZnO 的寬帶隙能(3.20~3.37 eV)限制了其對可見光的吸收,并且ZnO 受到光激發(fā)時,其價帶上的電子躍遷到導(dǎo)帶,從而產(chǎn)生電子-空穴對,但導(dǎo)帶上的電子不穩(wěn)定,容易回到價帶,導(dǎo)致光生電子-空穴對復(fù)合率較高[14-15]。研究者采用在ZnO 中摻雜金屬離子[16]或貴金屬[17]、將ZnO 和其它光催化劑進(jìn)行復(fù)合[18]以及通過添加石墨烯及其氧化物[19-21]等方法,改善了ZnO 對可見光的吸收能力,降低了光生電子-空穴對的復(fù)合率。還原氧化石墨烯(rGO)是一種比表面積大且化學(xué)性質(zhì)穩(wěn)定的二維納米材料,廣泛應(yīng)用于電化學(xué)傳感器[22-23]和光電催化[24-27]等領(lǐng)域。Hwa 等[23]采用水熱法合成了摻雜錫(Sn)的氧化鋅(Sn-ZnO),并與rGO 反應(yīng),通過超聲分散的方法得到Sn-ZnO/rGO 復(fù)合納米材料,將其用于電化學(xué)檢測藥物氟他胺,檢出限(LOD)低至7.3 nmol/L。Fadillah 等[26]以醋酸鋅和氧化石墨烯(GO)為前驅(qū)體,通過水熱法合成了ZnO-rGO 納米花狀材料。添加GO 不僅可調(diào)控納米ZnO 的形貌,而且在誘導(dǎo)形成ZnO 固有缺陷方面具有重要作用,所得ZnO-rGO 納米花用于催化降解土壤中的腐殖酸,降解率可達(dá)98.5%。
PEC 傳感器的檢測靈敏度高,但是不具有選擇性;此外,由于食品基質(zhì)成分復(fù)雜,因此需要設(shè)計(jì)一種選擇性高的PEC 方法檢測食品中的抗生素殘留。分子印跡技術(shù)(MIT)可獲得特異性識別目標(biāo)分子的分子印跡聚合物(MIP)[28-29],將MIP 用作識別元件,結(jié)合電化學(xué)[30]、熒光[31-33]和光電檢測[34-35]等方法可測定OTC。Zhang 等[34]采用高溫煅燒葡萄糖酸鋅的方法制備了ZnO/C 復(fù)合納米材料,將ZnO/C 作為光電敏感材料修飾摻雜氟的SnO2 透明導(dǎo)電玻璃(FTO),并通過電聚合的方法制備光電傳感器,對OTC 的LOD低至8.75 pmol/L。Bai 等[35]通過水熱法合成了中空的ZnS-CdS 納米籠狀材料,在ZnS-CdS-FTO 上通過電聚合鄰苯二胺和OTC 的方法制備MIP,將OTC 洗脫后得到的PEC 傳感器能對目標(biāo)分子OTC 進(jìn)行特異性識別,檢測范圍為1 nmol/L~3 μmol/L。目前,將ZnO-rGO 作為光電敏感材料的分子印跡傳感器測定OTC的研究尚未見報(bào)道。
本研究采用水熱法合成了ZnO-rGO 復(fù)合納米材料,采用離心法將ZnO-rGO 修飾到FTO 電極上,然后在ZnO-rGO-FTO 表面通過電聚合吡咯(Py)和OTC 的方法制備分子印跡PEC 傳感器(MIP-ZnO-rGOFTO)。此傳感器靈具有靈敏度高、穩(wěn)定性和抗干擾性能好等優(yōu)點(diǎn),被成功用于市售牛奶和蜂蜜樣品中OTC 的測定。
1 實(shí)驗(yàn)部分
1.1 儀器與試劑
CHI620E 電化學(xué)工作站(上海辰華儀器公司);Crossbeam340/550 掃描電子顯微鏡(德國Zeiss 公司);JEM-1200 EX 透射電子顯微鏡(日本電子);Bruker D8 ADVANCE X 射線衍射儀(德國Bruker 公司);Kratos Axis Ultra DLD X 射線光電子能譜儀(日本島津公司);氘鹵鎢燈光源裝置(北京紐比特公司);Zetasizer Nano ZS 納米粒度分析儀(英國馬爾文公司);Nicolet iS 50 傅里葉紅外光譜儀(美國Thermo Scientific 公司);Lambda 950 紫外可見分光光度儀(美國PerkinElmer 公司)。電化學(xué)測試均采用三電極體系:工作電極為FTO 或修飾FTO(深圳市力科光電玻璃公司),鉑絲和Ag/AgCl 電極分別作為對電極和參比電極。
六水合硝酸鋅、二水合檸檬酸鈉、OTC、氯霉素(Chloramphenicol, CAP)、四環(huán)素(Tetracycline,TC)和金霉素(Chlortetracycline, CTC)購自阿拉丁試劑有限公司。所用試劑均為分析純;實(shí)驗(yàn)用水均為二次蒸餾水。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 ZnO-rGO的合成
采用水熱法[36]制備ZnO-rGO。稱取0.08 g GO 加入到燒杯中,加入25 mL 蒸餾水,超聲1 h 制得分散液;稱取2.97 g 六水合硝酸鋅和0.94 g 二水合檸檬酸鈉置于燒杯中,加入25 mL 蒸餾水溶解;將超聲后得到的GO 分散液緩慢加入到上述含有硝酸鋅和檸檬酸鈉的溶液中,滴加2 mol/L NaOH 調(diào)節(jié)pH=9.0,再繼續(xù)攪拌30 min;將混合液倒入100 mL 反應(yīng)釜中,在180 ℃下反應(yīng)12 h。反應(yīng)結(jié)束后,采用乙醇和蒸餾水對所得材料進(jìn)行洗滌,然后置于真空干燥箱內(nèi),于60 ℃干燥9~10 h,研磨至粉末狀,即得到ZnO-rGO復(fù)合納米材料。ZnO 的制備過程除未加GO 外,其它過程與ZnO-rGO 的制備過程一致。
1.2.2 ZnO-rGO修飾FTO(ZnO-rGO-FTO)的制備
稱取40 mg ZnO-rGO,加入到2 mL異丙醇中,再加入40 μL Nafion,超聲30 min得到ZnO-rGO分散液。將FTO 依次用乙醇和蒸餾水超聲清洗并烘干,將其導(dǎo)電面留出0.5 cm × 0.5 cm 的面積,剩余部分貼上透明膠帶。將FTO 放入到裝有ZnO-rGO 分散液的離心管中離心5 次(離心轉(zhuǎn)速由慢到快,共離心10 min)后晾干,即得到ZnO-rGO-FTO。采用同樣的方法制備ZnO 修飾的FTO(ZnO-FTO)。
1.2.3 分子印跡電極(MIP-ZnO-rGO-FTO)和非印跡電極(NIP-ZnO-rGO-FTO)的制備
以ZnO-rGO-FTO 為工作電極,鉑絲電極為對電極, Ag/AgCl 電極(3 mol/L KCl 溶液)為參比電極,在含2 mmol/L Py 和1 mmol/L OTC 的50 mmol/L 磷酸鹽緩沖溶液(PBS, pH=7.0)中進(jìn)行電化學(xué)聚合,聚合條件為:掃描速率50 mV/s,電位范圍0~0.9 V,掃描15 圈。聚合完成后,用蒸餾水潤洗電極,隨后置于乙第2 期彭友元等:基于納米氧化鋅-還原氧化石墨烯的分子印跡光電化學(xué)傳感器測定土霉素257醇-水(1∶1, V/V)混合溶液中浸泡15 min,對OTC 進(jìn)行洗脫,得到的電極即為MIP-ZnO-rGO-FT。制備NIP-ZnO-rGO-FTO 時,除聚合過程中不加OTC 外,其余制作步驟與MIP-ZnO-rGO-FTO 的制備方法相同。
1.2.4 PEC測試
在三面遮光的石英比色皿中進(jìn)行PEC 測試,工作電極為FTO 電極或修飾FTO 電極,采用可見光作為激發(fā)光。以0.2 mol/L Na2SO4 溶液(50 mmol/L PBS, pH=7.0)作為電解液,電位恒定為0 V, 采用電流-時間曲線法(i-t)進(jìn)行PEC 測試,以40 s 為1 個循環(huán),設(shè)定光電流測定時間,其中20 s 遮光, 20 s 不遮光。在優(yōu)化的實(shí)驗(yàn)條件下,將MIP-ZnO-rGO-FTO 分別在不同濃度的OTC 標(biāo)準(zhǔn)溶液中孵育12 min 后,在0.2 mol/L Na2SO4 溶液(50 mmol/L PBS, pH=7.0)中測定電極的光電流。
1.2.5 實(shí)際樣品分析
牛奶和蜂蜜購自當(dāng)?shù)爻?,按照文獻(xiàn)[33]的方法進(jìn)行處理。首先,在10 mL 離心管中依次加入2.0 mL牛奶、2.0 mL 蒸餾水和1.0 mL 三氯乙酸,或2.0 mL 蜂蜜和3.0 mL PBS(50 mmol/L, pH=7.0),超聲30 min后,將混合物以10000 r/min 離心15 min,上層清液用0.22 μm 濾膜過濾,測定前,采用PBS 進(jìn)行適當(dāng)稀釋。將MIP-ZnO-rGO-FTO在樣品溶液中孵育12 min 后,按照1.2.4 節(jié)方法測定光電流。
2 結(jié)果與討論
2.1 ZnO-rGO的結(jié)構(gòu)和形貌表征
ZnO-rGO 的制備過程如圖1A 所示, ZnO-rGO 的X-射線衍射(XRD)圖見圖1B,其XRD 圖譜與ZnO的特征衍射峰一致(標(biāo)準(zhǔn)卡號:75-0576)。在2θ為31.84°、34.50°、36.34°、47.65°、56.73°、63.01°、66.54°、68.12°、69.26°、72.76°、77.16°、81.61°和89.87°處共觀察到13 個衍射峰,分別對應(yīng)ZnO 的(100)、(002)、(101)、(102)、(110)、(103)、(200)、(112)、(201)、(004)、(202)、(104)和(203)平面。圖1C 為GO、ZnO 和ZnO-rGO 的傅里葉變換紅外(FT-IR)光譜圖, GO 的FT-IR 光譜(曲線a)在3405 cm?1 處的寬峰對應(yīng)于O—H 基團(tuán)[37], 1734 cm?1 處的峰對應(yīng)于C=O 的伸縮振動[38];曲線b 中457 cm?1 處的峰為ZnO 的特征峰,對應(yīng)于Zn—O 鍵[39],在920 cm?1 處的小峰對應(yīng)于Zn 的拉伸振動[40];ZnO-rGO 的FT-IR 光譜(曲線c)在3440 cm?1 處有O—H 基團(tuán)的寬吸收帶,此吸收峰強(qiáng)度弱于GO 中對應(yīng)的吸收峰,在曲線c 中未觀察到C=O 伸縮振動峰(1734 cm?1 左右);1100 cm?1 附近的弱峰歸屬于rGO的C—O 拉伸振動[21]。與GO 的紅外光譜相比, ZnO-rGO 紅外譜圖中的含氧基團(tuán)(O—H 基團(tuán)和C=O 官能團(tuán))的吸收峰強(qiáng)度顯著降低,證明了GO 被有效還原。
通過X-射線光電子能譜(XPS)進(jìn)一步確認(rèn)材料中所含元素以及元素的價態(tài)。圖2A 為ZnO-rGO 的XPS 全譜圖,出現(xiàn)的Zn 2p1、Zn 2p3 和O 1s 譜峰證明存在ZnO。圖2B 為ZnO-rGO 中C 1s 的精細(xì)譜圖,在283.6、285.1、286.7、288.7 和290.6 eV 處的峰分別對應(yīng)C=C、C—C、C—O、C=O 和O—C=O官能團(tuán);圖2C 為O 1s 的精細(xì)譜圖,在530.7 eV 處的峰對應(yīng)ZnO 中的Zn—O 鍵, 531.7 eV 處的峰對應(yīng)rGO 表面的C—OH 或C—O—C 官能團(tuán)[ 41]。圖2D 為GO 中C 1s 的XPS 譜圖,在GO 的C1s 譜中,287.1 eV 處的峰對應(yīng)C—O 官能團(tuán);而在ZnO-rGO 的C 1s 譜中(圖2B),主峰為C—C 官能團(tuán)。在由GO制備ZnO-rGO 的過程中,材料中的含氧官能團(tuán)含量降低, GO 被還原,此結(jié)果與圖1C 的FT-IR 結(jié)果一致。
通過掃描電子顯微鏡(SEM)對ZnO 和ZnO-rGO 的形貌進(jìn)行分析。如圖3A 和圖3B 所示, ZnO 為圓盤狀且大小均勻;由ZnO-rGO 的SEM 圖(圖3C 和圖3D)可見, ZnO 均勻地分散在片狀的rGO 上。通過納米粒度分析儀測得ZnO-rGO 中的ZnO 粒徑在340~620 nm 之間,平均粒徑約為451 nm。
采用透射電子顯微鏡(TEM)進(jìn)一步分析了ZnO 和ZnO-rGO 的形態(tài)特性(圖4)。與ZnO相比(圖4A),在Zn-rGO 的TEM 圖(圖4B 和4C)中可見六邊形的ZnO 沉積在片狀rGO 上;在圖4D 和4E 中可觀察到ZnO 清晰的晶格平面,證實(shí)了ZnO 的高度結(jié)晶性質(zhì), ZnO 晶格間距為0.281 nm,對應(yīng)于ZnO 晶體的(100)晶面。rGO 和ZnO 晶體之間的緊密界面接觸可使光激發(fā)過程中產(chǎn)生的電子快速轉(zhuǎn)移,從而改善材料的光催化性能[25]。Zn-rGO 的元素映射圖(EDS,圖4F~4I)展示了C、O 和Zn 元素的分布情況, EDS 圖譜表明存在Cu,這是由于分析時采用銅網(wǎng)襯底所致;EDS 中不存在其它元素,證明Zn-rGO具有較高的純度。
2.2 ZnO-rGO的紫外-可見吸收光譜分析
ZnO 和ZnO-rGO 的紫外-可見吸收光譜如圖5A 所示,在200~400 nm 波長范圍內(nèi), ZnO(曲線a)和ZnO-rGO(曲線b)均有較強(qiáng)的吸收,但是在400 nm 以上ZnO 的吸收大幅下降。與ZnO 相比, ZnO-rGO 對可見光區(qū)域的光吸收能力顯著增強(qiáng),說明ZnO-rGO 可增強(qiáng)對可見光的利用效率,提高光催化性能。在Tauc 圖[42]中通過外推曲線中的線性區(qū)域分析制備的材料的帶隙能量。ZnO 和ZnO-rGO 的Tauc 曲線如圖5B 所示,可見ZnO 的禁帶寬度為3.26 eV, ZnO-rGO 的禁帶寬度為3.04 eV。以上結(jié)果表明,通過引入rGO 層, ZnO-rGO 的能帶間隙縮小,從而擴(kuò)大了ZnO 的光吸收范圍。
2.3 Py和OTC在ZnO-rGO-FTO上的電聚合
以ZnO-rGO-FTO 為工作電極,在含有Py 和OTC 的溶液中進(jìn)行電化學(xué)聚合(Py 濃度為2 mmol/L,OTC 濃度為1 mmol/L)。在聚合過程中, OTC 通過氫鍵和靜電作用進(jìn)入到聚吡咯(PPy)膜中。采用乙醇-水(1∶1, V/V)混合溶液洗脫OTC 后,得到的電極即為MIP-ZnO-rGO-FTO。NIP-ZnO-rGO-FTO 的制備過程與MIP-ZnO-rGO-FTO 相同,只是在聚合過程中不加OTC。
2.4 分子印跡傳感器的的電化學(xué)阻抗譜(EIS)表征及光電流響應(yīng)
圖6A 為不同電極在[Fe(CN)6]3–/4–溶液中的EIS 譜圖,其中,高頻部分的半圓直徑大小對應(yīng)電極的電子傳遞阻抗,直線部分對應(yīng)擴(kuò)散過程。FTO 的阻抗譜基本為一條直線(曲線a),說明在FTO 上的電化學(xué)過程主要受擴(kuò)散控制,電阻較?。粚nO 修飾到FTO 上時,由于ZnO 是半導(dǎo)體,因此ZnO-FTO 電阻增大(曲線b);與ZnO-FTO 相比, ZnO-rGO-FTO 的電阻(曲線c)降低,說明rGO 具有良好的導(dǎo)電性。當(dāng)形成PPy 聚合物膜后,電極的電阻增大(曲線d);將模板分子OTC 洗脫后, MIP-ZnO-rGO-FTO 電極的電阻再次降低(曲線e),而NIP-ZnO-rGO-FTO 在洗脫前后的電阻變化很小(曲線f 和g)。
圖6B 為不同電極的光電流響應(yīng)。FTO 電極的光電流基本為零。當(dāng)采用ZnO 和ZnO-rGO 修飾FTO后,光電流增大,并且ZnO-rGO-FTO 的光電流顯著高于ZnO-FTO。聚合完成后,電極的光電流顯著降低,這是由于形成了PPy 聚合物膜。將OTC 洗脫后, MIP-ZnO-rGO-FTO 的峰電流顯著升高,這是由于分子印跡電極上存在著與OTC 空間結(jié)構(gòu)和結(jié)合位點(diǎn)相匹配的“印跡孔穴”。將MIP-ZnO-rGO-FTO 置于OTC 溶液中孵育12 min 后,電極上的光電流再次降低,這是由于OTC 占據(jù)了聚合膜中的“印跡孔穴”,阻礙了電子的傳遞,從而使得光電流減弱,這也說明了所制備的MIP-ZnO-rGO-FTO可對OTC 進(jìn)行定量測定。
2.5 實(shí)驗(yàn)條件的優(yōu)化
2.5.1 Py與OTC的比例以及聚合圈數(shù)的選擇
電聚合時功能單體與模板分子的比例會影響MIP 中印跡位點(diǎn)的數(shù)量,從而影響傳感器對模板分子的識別能力。固定OTC 的濃度為1 mmol/L, Py 的濃度分別選擇0.5、1、2、3、4 和5 mmol/L,得到Py與OTC 的摩爾比分別為0.5、1、2、3、4 和5 時制備的MIP-ZnO-rGO-FTO。如圖7A 所示, Py 與OTC的摩爾比為2 時,制備的傳感器在洗脫前后的光電流變化值最大。在電聚合過程中,當(dāng)Py 濃度較低時,形成的聚合物膜不穩(wěn)定;當(dāng)Py 濃度較大時,會使得OTC 在PPy 中嵌入較深,從而不易被洗脫。因此,后續(xù)實(shí)驗(yàn)選擇電聚合時Py 與OTC 的摩爾比為2∶1(OTC 的濃度為1 mmol/L)。
隨著電聚合圈數(shù)增多,形成的PPy厚度增加,穩(wěn)定性提高,并且PPy中嵌入的OTC越多。然而,當(dāng)電聚合圈數(shù)超過15圈時,所制備的MIP-ZnO-rGO-FTO在洗脫前后的光電流變化值反而降低(圖7B),其原因是聚合圈數(shù)過多時, PPy的厚度增加,使得OTC洗脫難度增大。因此,在后續(xù)實(shí)驗(yàn)中電聚合圈數(shù)選擇15圈。
2.5.2 洗脫劑和洗脫時間的選擇
分別選擇蒸餾水、乙醇、乙醇和水的混合溶液、乙腈、乙腈和水的混合溶液進(jìn)行洗脫,結(jié)果表明,乙醇-水(1∶1, V/V)混合溶液可以對PPy 中的OTC 進(jìn)行有效洗脫,并且不會破壞PPy 的穩(wěn)定性。將聚合后的電極浸泡在乙醇-水(1∶1, V/V)中,每隔5 min 將電極取出測定光電流。結(jié)果表明,浸泡15 min 后,光電流的變化值達(dá)到最大(圖7C),因此,選擇在乙醇-水(1∶1, V/V)中浸泡15 min 進(jìn)行OTC 的洗脫。
2.5.3 孵育時間的選擇
將MIP-ZnO-rGO-FTO 在50 nmol/L OTC 溶液中孵育,隨著孵育時間延長,電極的光電流逐漸降低,光電流變化值(ΔI)不斷增大;當(dāng)孵育超過12 min 后,ΔI 基本保持不變(圖7D),說明印跡位點(diǎn)對于OTC 的吸附基本達(dá)到飽和。因此,孵育時間選擇12 min。
2.6 MIP-ZnO-rGO-FTO對OTC的響應(yīng)
在優(yōu)化的實(shí)驗(yàn)條件下,將MIP-ZnO-rGO-FTO 分別在不同濃度的OTC 標(biāo)準(zhǔn)溶液中孵育12 min 后,在0.2 mol/L Na2SO4 溶液(50 mmol/L PBS, pH=7.0)中測定電極的光電流。隨著OTC 濃度增大, MIP-ZnOrGO-FTO 光電流逐漸減?。▓D8A)。在0.1~200 nmoL/L 濃度范圍內(nèi), MIP-ZnO-rGO-FTO 孵育前后光電流的變化值(ΔI)與OTC 濃度的對數(shù)呈線性關(guān)系(圖8B),線性方程為ΔI(μA)=2.444×lg[COTC/(nmol/L)+3.043(R2=0.9809),檢出限(S/N=3)為0.05 nmol/L。rGO 作為電子接受體,可快速地轉(zhuǎn)移光催化過程中ZnO 表面產(chǎn)生的光生電子,有利于光生電子與空穴分離,從而提高ZnO-rGO 的光催化性能;MIP-ZnO-rGO-FTO 中的“印跡孔穴”是電子傳輸?shù)闹匾ǖ?,?dāng)溶液中存在OTC 時, OTC 可進(jìn)入“印跡孔穴”中,阻礙光生電子的傳輸,從而使光電流降低。本方法與文獻(xiàn)報(bào)道的OTC 分子印跡傳感器性能的比較見表1,可見制備的傳感器具有較低的檢出限。
2.7 MIP-ZnO-rGO-FTO的穩(wěn)定性、重現(xiàn)性和選擇性
測試了MIP-ZnO-rGO-FTO 的穩(wěn)定性、重現(xiàn)性和選擇性。連續(xù)光照25 次, MIP-ZnO-rGO-FTO 的光電流響應(yīng)的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為2.8%;將MIP-ZnO-rGO-FTO 于4 ℃避光保存10 d 后,光電流值僅降低3.0%,說明MIP-ZnO-rGO-FTO 具有較好的穩(wěn)定性。在相同的條件下制備7 根MIP-ZnO-rGO-FTO 電極,其光電流響應(yīng)的RSD 為3.6%,說明此傳感器的制備重現(xiàn)性較好。
選取CAP、TC 和CTC 作為結(jié)構(gòu)類似物以考察MIP-ZnO-rGO-FTO 的選擇性,將結(jié)構(gòu)類似物和OTC的濃度比設(shè)為5∶1(OTC 的濃度為50 nmol/L)。當(dāng)MIP-ZnO-rGO-FTO 在OTC 溶液中孵育后,光電流降低值約為7.69 μA,而對其它3 種結(jié)構(gòu)類似物的響應(yīng)僅約為0.60 μA;NIP-ZnO-rGO-FTO 對OTC 和CAP、TC 和CTC 的光電化學(xué)響應(yīng)無明顯差別,均約為0.50 μA。CAP、TC 和CTC 對OTC 的檢測基本沒有影響,原因是在MIP-ZnO-rGO-FTO 上存在可對OTC 進(jìn)行特異性識別的“印跡孔穴”,而NIP-ZnO-rGO-FTO不存在印跡位點(diǎn),僅依靠非特異性吸附結(jié)合,因此對OTC 及其結(jié)構(gòu)類似物響應(yīng)較低且基本接近。
2.8 實(shí)際樣品分析
采用本方法測定了市售牛奶和蜂蜜中的OTC,結(jié)果如表2 所示,樣品中均未檢出OTC。樣品的加標(biāo)回收率在95%~107%之間;采用HPLC-紫外檢測(HPLC-UV)法[33]測定了樣品加標(biāo)后的OTC 含量,所得結(jié)果與MIP-ZnO-rGO-FTO 測定結(jié)果一致,說明本研究制備的傳感器用于測定OTC 具有較高的準(zhǔn)確度。
3 結(jié)論
采用水熱法一步合成了ZnO-rGO,通過引入rGO,縮小了ZnO 的能帶間隙,促進(jìn)了ZnO-rGO 對可見光的吸收;同時, rGO 作為電子接受體,可以快速轉(zhuǎn)移光催化過程中ZnO 表面產(chǎn)生的光生電子,從而提高ZnO-rGO 的光催化性能。在ZnO-rGO-FTO 表面通過電聚合方法制備了MIP 膜,得到MIP-ZnO-rGOFTO,當(dāng)溶液中的OTC 占據(jù)MIP-ZnO-rGO-FTO 上的印跡孔穴時,傳感器的光電流降低,從而可以利用印跡電極上的光電流降低值對OTC 進(jìn)行定量測定。此傳感器制備過程簡單,結(jié)合分子印跡技術(shù)可實(shí)現(xiàn)OTC 的高靈敏和特異性檢測,檢出限(S/N=3)為0.05 nmol/L。將此傳感器用于市售牛奶和蜂蜜中OTC 的測定,結(jié)果令人滿意。本研究制備的的分子印跡PEC 傳感器在食品中抗生素含量監(jiān)測方面具有良好的應(yīng)用前景。
References
[1] NAIK L, SHARMA R, MANN B, LATA K, RAJPUT Y S, SURENDRA NATH B. Food Chem. , 2017, 219: 85-92.
[2] OSIKOYA A Q, GOVENDER P P. Electroanalysis, 2021, 33(2): 412-420.
[3] HUANG H C, HUANG S Y, LIN C I, LEE Y D. Anal. Chim. Acta, 2007, 582(1): 137-146.
[4] GB 31650—2019. National Food Safety Standard-Maximum Residue Limits for Veterinary Drugs in Foods. National Standards of the People′s Republic of China.
食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)-食品中獸藥最大殘留限量. 中華人民共和國國家標(biāo)準(zhǔn). GB 31650—2019.
[5] SALEH H, ELHENAWEE M, HUSSIEN E M, AHMED N, IBRAHIM A E. Food Anal. Methods, 2021, 14(1): 36-43.
[6] GAJDA A, JABLONSKI A, BLADEK T, POSYNIAK A. J. Agric. Food Chem. , 2017, 65(2): 494-500.
[7] WU H, CHEN Y, XU M, LING Y, JU S, TANG Y, TONG C. Sci. Total Environ. , 2023, 860: 160533.
[8] WANNASRI N, UPPACHAI P, SEEHAMART K, JANTRASEE S, BUTWONG N, MUKDASAI K, ISA I M, MUKDASAI S.ACS Omega, 2022, 7(49): 45654-45664.
[9] GASHU M, ARAGAW B A, TEFERA M. J. Food Compos. Anal. , 2023, 117: 105128.
[10] MAHALA C, SHARMA M D, BASU M. ACS Appl. Nano Mater. , 2020, 3(2): 1999-2007.
[11] BAI X, GAO W, ZHOU C, ZHAO D, ZHANG Y, JIA N. Microchim. Acta, 2022, 189(3): 90-98.
[12] DAS A, DEKA T, KUMAR P M, BHAGAVATHIACHARI M, NAIR R G. Adv. Powder Technol. , 2022, 33(2): 103434.
[13] HUANG X, SHEN Q, LIU J, YANG N, ZHAO G. Energy Environ. Sci. , 2016, 9(10): 3161-3171.
[14] YAN Y, LI Q, WANG Q, MAO H. RSC Adv. , 2021, 11(56): 35644-35652.
[15] KANG Z, GU Y, YAN X, BAI Z, LIU Y, LIU S, ZHANG X, ZHANG Z, ZHANG X, ZHANG Y. Biosens. Bioelectron. ,2015, 64: 499-504.
[16] ZIA T H, SHAH A H A. Colloids Surf. , A, 2021, 630: 127586.
[17] GEA S, SITUMORANG S A, PASARIBU N, PILIANG A F R, ATTAURRAZAQ B, SARI R M, PASARIBU K M,GOUTIANOS S. J. Mater. Res. Technol. , 2022, 19: 2730-2741.
[18] BAGAL I V, JUN S, CHOI M, ABDULLAH A, WASEEM A, AHN S, KULKARNI M A, CHO Y H, RYU S W. Appl. Surf.Sci. , 2023, 613: 156091.
[19] LI Y, WANG W, GONG H, XU J, YU Z, WEI Q, TANG D. J. Mater. Chem. B, 2021, 9(34): 6818-6824.
[20] MIRIKARAM N, PEREZ-MOLINA A, MORALES-TORRES S, SALEMI A, MALDONADO-HóDAR F J, PASTRANAMARTINEZ L M. Nanomaterials, 2021, 11(6): 1576-1593.
[21] LI F, NI B, ZHENG Y, HUANG Y, LI G. Surf. Interfaces, 2021, 26: 101375.
[22] YANG S L, LI G, FENG J, WANG P Y, QU L B. Electrochim. Acta, 2022, 412: 140157.
[23] HWA K Y, SANTHAN A, TATA S K S. Microchem. J. , 2021, 160: 105689.
[24] LEE J H, VELMURUGAN P, RAVI A V, OH B T. Environ. Chem. Ecotoxicol. , 2020, 2: 141-149.
[25] JAIN N, SHARMA S, PURI N K. J. Mater. Sci.: Mater. Electron. , 2022, 33(3): 1307-1323.
[26] FADILLAH G, SALEH T A, MUNAWAROH H, WAHYUNINGSIH S, RAMELAN A H. Environ. Sci. Pollut. Res. ,2022, 29(7): 9883-9891.
[27] HUANG M, LIN J, LI R, SU Y, ZHAO X, LIU Y, CHEN W J, LIAN X, CHEN X, PAN X. ACS Appl. Nano Mater. , 2022,5(2): 1828-1835.
[28] CHEN L, WANG X, LU W, WU X, LI J. Chem. Soc. Rev. , 2016, 45(8): 2137-2211.
[29] AHMAD R, GRIFFETE N, LAMOURI A, FELIDJ N, CHEHIMI M M, MANGENEY C. Chem. Mater. , 2015, 27(16): 5464-5478.
[30] YANG Y, SHI Z, CHANG Y, WANG X, YU L, GUO C, ZHANG J, BAI B, SUN D, FAN S. Food Chem. , 2021, 363:130337.
[31] WANG J, ZOU L, XU J, ZHANG R, ZHANG H. Anal. Chim. Acta, 2021, 1161: 338326.
[32] WANG J, LI X, ZHANG R, FU B, CHEN M, YE M, LIU W, XU J, PAN G, ZHANG H. J. Mater. Chem. B, 2022, 10(35):6777-6783.
[33] XU Y, HUANG T, WANG S, YAN Y. J. Food Compos. Anal. , 2022, 108: 104427.
[34] ZHANG H, PAN Q, CAI W, SHI X, YANG D P, LIN H, QIU E. Food Chem. , 2023, 426: 136535.
[35] BAI X, ZHANG Y, GAO W, ZHAO D, YANG D, JIA N. Biosens. Bioelectron. , 2020, 168: 112522.
[36] ZHU Q, ZHANG K, HUANG Y, LIU R, PAN Y, ZHANG H, WANG P, ZHANG S, PAN D, GUO Z. J. Nanostruct. Chem. ,2022, 12(2): 277-289.
[37] LIU X, PAN L, ZHAO Q, LV T, ZHU G, CHEN T, LU T, SUN Z, SUN C. Chem. Eng. J. , 2012, 183: 238-243.
[38] RAVICHANDRAN P K, MUNUSAMY C. Environ. Sci. Pollut. Res. , 2023, 30(10): 28259-28273.
[39] BANO N, HUSSAIN I, EL-NAGGAR A M, ALBASSAM A A. Appl. Phys. A: Mater. Sci. Process. , 2019, 125(3): 215.
[40] SHI L, GUNASEKARAN S. Nanoscale Res. Lett. , 2008, 3(12): 491-495.
[41] HU Shi-Ying, SHEN Jia-Yan, HAN Jun-Shan, HAO Ting-Ting, LI Xing. Chem. J. Chin. Univ. , 2023, 44(2): 20220462.
胡詩穎, 沈佳艷, 韓峻山, 郝婷婷, 李星. 高等學(xué)?;瘜W(xué)學(xué)報(bào), 2023, 44(2): 20220462.
[42] YANG N Q, LI J. Eur. Phys. J. Plus, 2021, 136(9): 965-975.
[43] CHEN Y, TANG Y, LIU Y, ZHAO F, ZENG B. J. Hazard. Mater. , 2022, 434: 128907.
[44] WANG X, CAO Y, HU X, CAI L, WANG H, FANG G, WANG S. Microchem. J. , 2023, 190: 108606.
福建省自然科學(xué)基金項(xiàng)目(No. 2020J01771)資助。