張鵬 紀(jì)亮 沈雷 王玉 李萌 劉琰
[摘要] 目的 觀察高糖環(huán)境下,錳超氧化物歧化酶(MnSOD)刺激間充質(zhì)干細(xì)胞(MSC)上清液對人臍靜脈血管內(nèi)皮細(xì)胞(HUVEC)增殖和趨化能力的影響。 方法 高糖MSC培養(yǎng)基條件下,100μg/L MnSOD刺激的MSC為實(shí)驗(yàn)組,未刺激的MSC為對照組,添加Akt阻斷劑5μmol/L Tricirlbine為Akt阻斷劑組,利用各組條件培養(yǎng)基在高糖1640培養(yǎng)基條件下,培養(yǎng)人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(HUVEC),使用MTT法觀察各條件培養(yǎng)基對HUVEC增殖的影響,并利用細(xì)胞劃痕實(shí)驗(yàn)和Transwell細(xì)胞遷移實(shí)驗(yàn)對HUVEC的趨化情況進(jìn)行評(píng)估。 結(jié)果 與對照組相比,MSC實(shí)驗(yàn)組條件培養(yǎng)基促進(jìn)HUVEC增殖;但是Akt阻斷劑組HUVEC增殖能力降低;MSC實(shí)驗(yàn)組條件培養(yǎng)基作用的HUVEC趨化活動(dòng)與對照組相比明顯提高,但MSC實(shí)驗(yàn)組HUVEC趨化活動(dòng)在Akt阻斷劑組明顯被抑制;MSC實(shí)驗(yàn)組條件培養(yǎng)基中VEGF含量比對照組明顯提高。結(jié)論 高糖條件下MnSOD可以通過刺激間充質(zhì)干細(xì)胞旁分泌VEGF等細(xì)胞因子對血管內(nèi)皮細(xì)胞增殖、趨化等能力產(chǎn)生影響。
[關(guān)鍵詞] 間充質(zhì)干細(xì)胞;錳超氧化物歧化酶;旁分泌;人臍靜脈血管內(nèi)皮細(xì)胞
[中圖分類號(hào)] R329.2 [文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼] A [文章編號(hào)] 1673-9701(2014)13-0013-03
全球糖尿病患者到2035年將增加5.92億[1]。高血糖增加活性氧,致使皮膚血管內(nèi)皮細(xì)胞代謝紊亂 [2]。MSC移植到糖尿病足傷口,可以加速傷口愈合[3],MnSOD在對抗活性氧的過程中發(fā)揮重要作用,如果利用MnSOD發(fā)揮對MSC的抗高糖損傷作用,將達(dá)到促進(jìn)潰瘍區(qū)血管新生之目的,促使MSC細(xì)胞療法的廣泛臨床應(yīng)用具有重要意義[4]。
1 材料與方法
1.1 細(xì)胞培養(yǎng)和分組
人骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(MSC)和人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(HUVEC)分別在正?;蚋咛荕SC培養(yǎng)基中培養(yǎng)MSC為對照組,或添加100mmol/L MnSOD為實(shí)驗(yàn)組(MnSOD-MSC),添加5μmol/l Tricirlbine為Akt阻斷劑組。
提取各組細(xì)胞上清液為條件培養(yǎng)基(conditioned medium, CM),分別為MSC對照組、MnSOD-MSC組、Akt阻斷劑組條件培養(yǎng)基。人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(HUVEC)實(shí)驗(yàn)分組按條件培養(yǎng)基而定。
1.2 條件培養(yǎng)基中VEGF、GSHPX、SOD檢測
收集各組MSC條件培養(yǎng)基,使用英國Randox公司生產(chǎn)的ELISA試劑盒測定SOD、GSHPX和VEGF的含量。
1.3 細(xì)胞劃痕試驗(yàn)
HUVEC接種于6孔板,0.1%FBS的RPMI-1640培養(yǎng)基培養(yǎng)24h,1000μL槍頭劃痕,并添加2mM羥基脲(Sigma),培養(yǎng)24h,采用IPP軟件計(jì)算劃痕面積閉合率。
1.4 Transwell細(xì)胞遷移實(shí)驗(yàn)
HUVEC用0.1%FBS的RPMI-1640培養(yǎng)基培養(yǎng)24h,以8×103個(gè)細(xì)胞/孔接種,放置在Transwell細(xì)胞小室內(nèi),孵箱6h,計(jì)算染色的細(xì)胞數(shù)目(100×)。
1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
統(tǒng)計(jì)學(xué)處理采用SPSS18.0軟件包,計(jì)量資料以(x±s)表示,采用t檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2 結(jié)果
2.1 間充質(zhì)干細(xì)胞在高糖環(huán)境下的增殖
正常MSC對照組的OD值為(0.913±0.344),高糖條件下,MSC對照組、MnSOD-MSC組和Akt阻斷劑組的OD值分別為(0.425±0.147)、(1.261±0.579)和(0.635±0.812)。其中正常MSC對照組與高糖條件下MSC對照組、高糖條件下MSC對照組和MnSOD-MSC組、高糖條件下MnSOD-MSC組和Akt阻斷劑組OD值比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。
2.2各組CM對HUVEC增殖影響
高糖條件下,MSC對照組、MnSOD-MSC組和Akt阻斷劑組CM對HUVEC增殖的OD值分別為(0.824±0.176)、(1.590±0.152)和(1.073±0.294),其中前兩組和后兩組分別比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。
2.3 各組CM對HUVEC趨化能力的作用
MnSOD-MSC CM組和MSC CM組HUVEC劃痕閉合面積分別為(0.26±0.15)μm2、(0.19±0.03)μm2,兩者具有顯著差異(P<0.01),見圖1A、B、G;Akt阻斷劑CM組HUVEC劃痕閉合面積為(0.17±0.51)cm2,與MnSOD-MSC CM組比較具有顯著差異(P<0.01),見圖1B、C、G。
MnSOD-MSC CM組和MSC CM組HUVEC遷移數(shù)目分別為(1824.85±10.11)、(928. 64±13.24),兩者具有顯著差異(P<0.01),見圖1D、E、H;Akt阻斷劑CM組HUVEC遷移數(shù)目為(1121.50±21.67),與MnSOD-MSC CM組比較有顯著差異(P<0.01),見圖1E、F、H。
圖1 HUVEC劃痕和遷移結(jié)果
A-C:各組HUVEC細(xì)胞劃痕圖(40×),圖框代表0h劃痕面積;D-F:各組CM組HUVEC細(xì)胞遷移圖(100×);G:HUVEC劃痕統(tǒng)計(jì)圖,*P<0.01;H:HUVEC遷移統(tǒng)計(jì)圖,*P<0.01
2.4 各組CM中細(xì)胞因子的檢測
各組條件培養(yǎng)基中VEGF、GSHPX、SOD的檢測,見表1。
表1 各組條件培養(yǎng)基中VEGF、GSHPX、SOD含量(ng/L,n=9,x±s)
3 討論
血管發(fā)生的有關(guān)細(xì)胞因子和生長因子密切配合,協(xié)調(diào)統(tǒng)一地參與調(diào)節(jié)血管生成[5]。糖尿病足主要病理變化為局部微血管、神經(jīng)的病理變化,并產(chǎn)生大量自由基[2]。糖尿病小鼠皮膚MnSOD等抗氧化酶活性顯著降低[5]。雖然MSC有正常抗氧化酶系統(tǒng),但是糖尿病時(shí)的MSC細(xì)胞活性降低,其分泌的MnSOD等抗自由基酶類降低,影響MSC生物作用[6]。MnSOD基因轉(zhuǎn)染自身骨髓干細(xì)胞可以重建損傷性食管炎內(nèi)膜修復(fù)[7],提示該基因修飾的MSC能夠歸巢到糖尿病傷口,加速傷口愈合[8]。
本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,高血糖條件下,MnSOD可以促使MSC增殖,發(fā)揮了MnSOD的抗自由基保護(hù)細(xì)胞的作用,抗高糖效果非常明顯。MnSOD刺激的MSC改善血管內(nèi)皮細(xì)胞活性,促進(jìn)血管內(nèi)皮細(xì)胞增殖,并發(fā)揮了促使HUVEC遷移等能力,MnSOD刺激的MSC條件培養(yǎng)基中VEGF、SOD等血管活化因子或抗自由基蛋白表達(dá)升高,其機(jī)制可能是由于在MnSOD的刺激下,通過Akt途徑活化MSC,促使MSC旁分泌VEGF、SOD等細(xì)胞因子,分泌的SOD等物質(zhì)保護(hù)血管內(nèi)皮細(xì)胞對抗高血糖環(huán)境,而產(chǎn)生的VEGF等因子則對血管內(nèi)皮細(xì)胞具有促進(jìn)成血管的能力,如果將MnSOD刺激的MSC移植到糖尿病足皮膚區(qū)域,可以發(fā)揮對抗自由基、保護(hù)細(xì)胞、促進(jìn)血管新生的重要功能,將明顯加速傷口愈合,后續(xù)研究我們將會(huì)用MnSOD轉(zhuǎn)染的MSC應(yīng)用于體內(nèi)糖尿病動(dòng)物足實(shí)驗(yàn)?zāi)P停^察MnSOD-MSC對糖尿病足愈合的作用和機(jī)制,為MSC臨床應(yīng)用提供研究基礎(chǔ)和資料。
[參考文獻(xiàn)]
[1] L. Guariguata, DR. Whitingb, I. Hambletonc,et al. Global estimates of diabetes prevalence for 2013 and projections for 2035 for the IDF Diabetes Atlas[J]. Diabetes Research and Clinical Practice,2013, 27(11):1345-1352.
[2] Gray SP, Di ME, Okabe J, et al. NADPH oxidase 1 plays a key role in diabetes mellitus-accelerated atherosclerosis[J]. Circulation, 2013,127(18):1888-1902.
[3] Hodgkinson CP, Gomez JA, Mirotsou M, et al. Genetic engineering of mesenchymal stem cells and its application in human disease therapy[J]. Hum Gene Ther, 2010,21(11):1513-1526.
[4] He T, Peterson TE, Holmuhamedov EL, et al. Human endothelial progenitor cells tolerate oxidative stress due to intrinsically high expression of manganese superoxide dismutase[J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol,2004,24(11):2021-2027.
[5] Marrotte EJ, Chen DD, Hakim JS, et al. Manganese superoxide dismutase expression in endothelial progenitor cells accelerates wound healing in diabetic mice[J]. J Clin Invest,2010,120(12):4207-4219.
[6] Cho KA, Woo SY, Seoh JY, et al. Mesenchymal stem cells restore CCl4-induced liver injury by an antioxidative process[J]. Cell Biol Int, 2012,36(12):1267-1274.
[7] Niu Y, Epperly MW, Shen H, et al. Intraesophageal MnSOD-plasmid liposome enhances engraftment and self-renewal of bone marrow derived progenitors of esophageal squamous epithelium[J]. Gene Ther, 2008,15(5):347-356.
[8] Volarevic V, Arsenijevic N, Lukic ML, et al. Concise review: Mesenchymal stem cell treatment of the complications of diabetes mellitus[J]. Stem Cells, 2011,29(1):5-10.
(收稿日期:2014-02-26)
血管發(fā)生的有關(guān)細(xì)胞因子和生長因子密切配合,協(xié)調(diào)統(tǒng)一地參與調(diào)節(jié)血管生成[5]。糖尿病足主要病理變化為局部微血管、神經(jīng)的病理變化,并產(chǎn)生大量自由基[2]。糖尿病小鼠皮膚MnSOD等抗氧化酶活性顯著降低[5]。雖然MSC有正??寡趸赶到y(tǒng),但是糖尿病時(shí)的MSC細(xì)胞活性降低,其分泌的MnSOD等抗自由基酶類降低,影響MSC生物作用[6]。MnSOD基因轉(zhuǎn)染自身骨髓干細(xì)胞可以重建損傷性食管炎內(nèi)膜修復(fù)[7],提示該基因修飾的MSC能夠歸巢到糖尿病傷口,加速傷口愈合[8]。
本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,高血糖條件下,MnSOD可以促使MSC增殖,發(fā)揮了MnSOD的抗自由基保護(hù)細(xì)胞的作用,抗高糖效果非常明顯。MnSOD刺激的MSC改善血管內(nèi)皮細(xì)胞活性,促進(jìn)血管內(nèi)皮細(xì)胞增殖,并發(fā)揮了促使HUVEC遷移等能力,MnSOD刺激的MSC條件培養(yǎng)基中VEGF、SOD等血管活化因子或抗自由基蛋白表達(dá)升高,其機(jī)制可能是由于在MnSOD的刺激下,通過Akt途徑活化MSC,促使MSC旁分泌VEGF、SOD等細(xì)胞因子,分泌的SOD等物質(zhì)保護(hù)血管內(nèi)皮細(xì)胞對抗高血糖環(huán)境,而產(chǎn)生的VEGF等因子則對血管內(nèi)皮細(xì)胞具有促進(jìn)成血管的能力,如果將MnSOD刺激的MSC移植到糖尿病足皮膚區(qū)域,可以發(fā)揮對抗自由基、保護(hù)細(xì)胞、促進(jìn)血管新生的重要功能,將明顯加速傷口愈合,后續(xù)研究我們將會(huì)用MnSOD轉(zhuǎn)染的MSC應(yīng)用于體內(nèi)糖尿病動(dòng)物足實(shí)驗(yàn)?zāi)P?,觀察MnSOD-MSC對糖尿病足愈合的作用和機(jī)制,為MSC臨床應(yīng)用提供研究基礎(chǔ)和資料。
[參考文獻(xiàn)]
[1] L. Guariguata, DR. Whitingb, I. Hambletonc,et al. Global estimates of diabetes prevalence for 2013 and projections for 2035 for the IDF Diabetes Atlas[J]. Diabetes Research and Clinical Practice,2013, 27(11):1345-1352.
[2] Gray SP, Di ME, Okabe J, et al. NADPH oxidase 1 plays a key role in diabetes mellitus-accelerated atherosclerosis[J]. Circulation, 2013,127(18):1888-1902.
[3] Hodgkinson CP, Gomez JA, Mirotsou M, et al. Genetic engineering of mesenchymal stem cells and its application in human disease therapy[J]. Hum Gene Ther, 2010,21(11):1513-1526.
[4] He T, Peterson TE, Holmuhamedov EL, et al. Human endothelial progenitor cells tolerate oxidative stress due to intrinsically high expression of manganese superoxide dismutase[J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol,2004,24(11):2021-2027.
[5] Marrotte EJ, Chen DD, Hakim JS, et al. Manganese superoxide dismutase expression in endothelial progenitor cells accelerates wound healing in diabetic mice[J]. J Clin Invest,2010,120(12):4207-4219.
[6] Cho KA, Woo SY, Seoh JY, et al. Mesenchymal stem cells restore CCl4-induced liver injury by an antioxidative process[J]. Cell Biol Int, 2012,36(12):1267-1274.
[7] Niu Y, Epperly MW, Shen H, et al. Intraesophageal MnSOD-plasmid liposome enhances engraftment and self-renewal of bone marrow derived progenitors of esophageal squamous epithelium[J]. Gene Ther, 2008,15(5):347-356.
[8] Volarevic V, Arsenijevic N, Lukic ML, et al. Concise review: Mesenchymal stem cell treatment of the complications of diabetes mellitus[J]. Stem Cells, 2011,29(1):5-10.
(收稿日期:2014-02-26)
血管發(fā)生的有關(guān)細(xì)胞因子和生長因子密切配合,協(xié)調(diào)統(tǒng)一地參與調(diào)節(jié)血管生成[5]。糖尿病足主要病理變化為局部微血管、神經(jīng)的病理變化,并產(chǎn)生大量自由基[2]。糖尿病小鼠皮膚MnSOD等抗氧化酶活性顯著降低[5]。雖然MSC有正常抗氧化酶系統(tǒng),但是糖尿病時(shí)的MSC細(xì)胞活性降低,其分泌的MnSOD等抗自由基酶類降低,影響MSC生物作用[6]。MnSOD基因轉(zhuǎn)染自身骨髓干細(xì)胞可以重建損傷性食管炎內(nèi)膜修復(fù)[7],提示該基因修飾的MSC能夠歸巢到糖尿病傷口,加速傷口愈合[8]。
本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,高血糖條件下,MnSOD可以促使MSC增殖,發(fā)揮了MnSOD的抗自由基保護(hù)細(xì)胞的作用,抗高糖效果非常明顯。MnSOD刺激的MSC改善血管內(nèi)皮細(xì)胞活性,促進(jìn)血管內(nèi)皮細(xì)胞增殖,并發(fā)揮了促使HUVEC遷移等能力,MnSOD刺激的MSC條件培養(yǎng)基中VEGF、SOD等血管活化因子或抗自由基蛋白表達(dá)升高,其機(jī)制可能是由于在MnSOD的刺激下,通過Akt途徑活化MSC,促使MSC旁分泌VEGF、SOD等細(xì)胞因子,分泌的SOD等物質(zhì)保護(hù)血管內(nèi)皮細(xì)胞對抗高血糖環(huán)境,而產(chǎn)生的VEGF等因子則對血管內(nèi)皮細(xì)胞具有促進(jìn)成血管的能力,如果將MnSOD刺激的MSC移植到糖尿病足皮膚區(qū)域,可以發(fā)揮對抗自由基、保護(hù)細(xì)胞、促進(jìn)血管新生的重要功能,將明顯加速傷口愈合,后續(xù)研究我們將會(huì)用MnSOD轉(zhuǎn)染的MSC應(yīng)用于體內(nèi)糖尿病動(dòng)物足實(shí)驗(yàn)?zāi)P停^察MnSOD-MSC對糖尿病足愈合的作用和機(jī)制,為MSC臨床應(yīng)用提供研究基礎(chǔ)和資料。
[參考文獻(xiàn)]
[1] L. Guariguata, DR. Whitingb, I. Hambletonc,et al. Global estimates of diabetes prevalence for 2013 and projections for 2035 for the IDF Diabetes Atlas[J]. Diabetes Research and Clinical Practice,2013, 27(11):1345-1352.
[2] Gray SP, Di ME, Okabe J, et al. NADPH oxidase 1 plays a key role in diabetes mellitus-accelerated atherosclerosis[J]. Circulation, 2013,127(18):1888-1902.
[3] Hodgkinson CP, Gomez JA, Mirotsou M, et al. Genetic engineering of mesenchymal stem cells and its application in human disease therapy[J]. Hum Gene Ther, 2010,21(11):1513-1526.
[4] He T, Peterson TE, Holmuhamedov EL, et al. Human endothelial progenitor cells tolerate oxidative stress due to intrinsically high expression of manganese superoxide dismutase[J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol,2004,24(11):2021-2027.
[5] Marrotte EJ, Chen DD, Hakim JS, et al. Manganese superoxide dismutase expression in endothelial progenitor cells accelerates wound healing in diabetic mice[J]. J Clin Invest,2010,120(12):4207-4219.
[6] Cho KA, Woo SY, Seoh JY, et al. Mesenchymal stem cells restore CCl4-induced liver injury by an antioxidative process[J]. Cell Biol Int, 2012,36(12):1267-1274.
[7] Niu Y, Epperly MW, Shen H, et al. Intraesophageal MnSOD-plasmid liposome enhances engraftment and self-renewal of bone marrow derived progenitors of esophageal squamous epithelium[J]. Gene Ther, 2008,15(5):347-356.
[8] Volarevic V, Arsenijevic N, Lukic ML, et al. Concise review: Mesenchymal stem cell treatment of the complications of diabetes mellitus[J]. Stem Cells, 2011,29(1):5-10.
(收稿日期:2014-02-26)