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基因轉(zhuǎn)染建立高表達(dá)轉(zhuǎn)化生長因子β1大鼠肝星狀細(xì)胞的實驗研究

2018-09-20 10:09周霞黃效模張一曾德珍
浙江臨床醫(yī)學(xué) 2018年7期
關(guān)鍵詞:脂質(zhì)體質(zhì)粒定量

周霞 黃效模 張一 曾德珍?

肝纖維化的形成機(jī)制是一個有眾多因素參與復(fù)雜的病理過程,肝纖維化實質(zhì)是慢性肝病損傷修復(fù)反應(yīng),肝星狀細(xì)胞(HSC)在肝纖維化過程中起核心作用,各種原因肝損傷時,引起肝臟細(xì)胞外基質(zhì)(ECM)合成增加,降解減少,進(jìn)而造成肝內(nèi)ECM不斷積聚,最后導(dǎo)致肝纖維化甚至肝硬化。TGFβ1是HSC活化最重要的因子之一[1],目前大多數(shù)抗纖維化研究均以HSC為靶標(biāo),2017年3月至12月作者通過實驗研究,擬建立高表達(dá)TGFβ1的HSC陽性克隆,為肝纖維化的防治提供細(xì)胞實驗基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材料 大鼠肝星狀細(xì)胞株HSC-T6由武漢協(xié)和醫(yī)院胃腸病實驗室提供。pcDNA3.1(+)質(zhì)粒、感受態(tài)大腸桿菌DH-5ɑ購自武漢晶賽生物工程技術(shù)公司,限制性核酸內(nèi)切酶 NheI、XbaI、SmaI、Bg1II、EcoRI、T4多聚核苷酸激酶和Taq酶購自TAKARA公司,T4 DNA連接酶購自New England Biolabs,凝膠回收試劑盒和小量質(zhì)粒提取試劑盒購自寧波中鼎公司,寡核苷酸DNA單鏈由上海博亞生物技術(shù)有限公司合成。陽離子脂質(zhì)體Lipofectamine 2000 購自Invitrogen 公司,TRIzolTM Reagent 購自Invitrogen公司,新生SD大鼠由同濟(jì)醫(yī)科大學(xué)實驗中心提供。

1.2 方法 (1)質(zhì)粒構(gòu)建:根據(jù)已知的大鼠TGFβ1基因序列合成目的片段引物:TGFβ1引物: P1:5'-GGAATTCGCCACCATGGGCATGCCGCCCTCGGGG CT-3',P2:5'-CCGCTCGAGTCAGCTGCACTTGCAGGA GCG-3'。TGF 1兩端有EcoRI和XhoI酶切位點。以大鼠cDNA為模板擴(kuò)增TGFβ1基因中1.2kb的目的基因片段,PCR反應(yīng)條件為:94℃變性5min進(jìn)入循環(huán)過程,94℃變性20s,60℃下退火25s,72℃延伸75s,循環(huán)32次后72℃復(fù)性3min,凝膠電泳回收TGFβ1產(chǎn)物,限制性內(nèi)切酶EcoRI和XhoI酶切TGFβ1產(chǎn)物回收1.2kb的酶切產(chǎn)物。(2)表達(dá)載體構(gòu)建:TGFβ1酶切產(chǎn)物通過T4連接酶與EcoRI和XhoI酶切的質(zhì)粒pcDNA3.1(+)連接,轉(zhuǎn)化感受態(tài)DH-5ɑ,新霉素抗性篩選重組子pcDNA3.1(+)-TGFβ1,酶切鑒定成功后,菌液由上海英俊公司進(jìn)行測序分析。同時,用含綠色熒光蛋白的pcDNA3.1(+)-EGFP為陰性對照質(zhì)粒。(3)pcDNA3.1(+)-TGFβ1轉(zhuǎn)染HSC及G418的篩選:大鼠肝星狀細(xì)胞株HSC-T6含15%胎牛血清(FCS)的DMEM液,置于37℃,體積分?jǐn)?shù)為5%CO2孵育箱中培養(yǎng)。轉(zhuǎn)染前1d,將HSC-T6細(xì)胞接種于6孔培養(yǎng)板,每孔2×105個細(xì)胞,過夜培養(yǎng)后,將構(gòu)建的質(zhì)粒轉(zhuǎn)染細(xì)胞,操作按脂質(zhì)體Lipofectamine 2000 轉(zhuǎn)染手冊進(jìn)行。取一試管加入質(zhì)粒2μg,用250μl Opti-MEM 培養(yǎng)基混合稀釋,另一試管加入脂質(zhì)體Lipofectamine 2000 5μl,用250μl Opti-MEM培養(yǎng)基混合稀釋。室溫?zé)o菌條件下放置5min,兩試管混合后放置20min,在6孔板中每孔加入量為500μl混合液培養(yǎng)4h,更換培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng),48h后計算轉(zhuǎn)染率,并改用含400μg/mlG418培養(yǎng)基,15%FCS的DMEM培養(yǎng)液2ml,6d后細(xì)胞大部分凋死,G418濃度減至200μg/ml維持篩選,殘存細(xì)胞約16d后形成陽性克隆,更換為正常培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)和傳代。并將細(xì)胞分為pcDNA3.1(+)-TGFβ1轉(zhuǎn)染組,pcDNA3.1(+)-EGFP轉(zhuǎn)染組,未傳代及轉(zhuǎn)染細(xì)胞為空白組,正常培養(yǎng)傳代21d的空白組細(xì)胞為陰性對照組。(4)熒光定量PCR檢測TGFβ1mRNA的表達(dá):篩選陽性克隆后,繼續(xù)培養(yǎng)48h,用Trizol試劑盒提取細(xì)胞總RNA,熒光定量PCR法分別擴(kuò)增TGFβ1mRNA。按定量RT-PCR試劑盒說明取1μg總RNA逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,然后以Sybr Green I作為熒光標(biāo)記物,在LightCycler熒光實時定量PCR儀(Roche公司,德國)上進(jìn)行PCR反應(yīng)。PCR引物:TGFβ1:5'-GAGGCGGTGCTCGCTTTGTA-3',下游引物 5'-TTGTTGCGGTCCACCATTAGC-3'。反應(yīng)條件如下:預(yù)變性94℃ 3min,50個循環(huán)中94℃ 30s,53℃30s,72℃ 30s,通過融解曲線分析和電泳確定目的條帶,CT法進(jìn)行相對定量。(5)Western blot法測定TGF-β1的表達(dá):收集各組細(xì)胞,消化后加入預(yù)冷的細(xì)胞裂解液,置冰上30min,4℃、12000g離心,取上清液進(jìn)行蛋白分光光度儀定量(考馬斯亮蘭法),每組取20μg蛋白加熱變性后,10%SDS-PAGE電泳分離,電轉(zhuǎn)移至PVDF膜上,含5%脫脂奶粉的Tris鹽溶液封閉2h,加入1:200稀釋的一抗兔抗TGFβ1多克隆抗體,4℃孵育過夜。用含吐溫-20的Tris鹽溶液洗膜3次,加入1:5000稀釋的辣根過氧化物酶標(biāo)記的羊抗兔二抗,室溫下孵育1h?;瘜W(xué)發(fā)光法(ECL)檢測條帶。β-actin作為內(nèi)參。上述實驗均重復(fù)3次,并計算機(jī)掃描電泳圖像。

1.3 統(tǒng)計學(xué)方法 采用SPSS17.0統(tǒng)計軟件。計量資料用(±s)表示,用方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 重組質(zhì)粒的鑒定 重組質(zhì)粒pcDNA3.1(+)-TGFβ1用BamHI酶切,經(jīng)2%瓊脂糖凝膠電泳后可見1.2kb的清晰條帶,進(jìn)行測序結(jié)果與GenBank所提供的序列完全相同,提示含有TGFβ1基因的pcDNA3.1(+)構(gòu)建成功。見圖1。

圖1 重組pcDNA3.1(+)-TGFβ1BamHI單酶切鑒定結(jié)果

2.2 脂質(zhì)體對Lipofectamine 2000對細(xì)胞毒性作用的G418篩選 應(yīng)用轉(zhuǎn)染試劑Lipofectamine 200 pcDNA3.1(+)-TGFβ10轉(zhuǎn)染HSC-T6細(xì)胞后鏡下觀察顯示,在5μl的用量下HSC-T6細(xì)胞轉(zhuǎn)染前、后的形態(tài)和數(shù)目與對照組及空白組無明顯差異,瞬時轉(zhuǎn)染48h后測得轉(zhuǎn)染率為28.2%。篩選結(jié)果顯示,G418篩選試劑的最佳濃度為400μg/ml,應(yīng)用21d后可篩選出穩(wěn)定表達(dá)的細(xì)胞克隆,并能進(jìn)一步培養(yǎng)傳代。見圖2。

圖2 轉(zhuǎn)染48h EGFP的表達(dá)

2.3 TGFβ1mRNA的表達(dá)情況 熒光定量PCR法檢測TGFβ1的mRNA表達(dá),結(jié)果顯示:pcDNA3.1(+)-TGFβ1轉(zhuǎn) 染 組 TGFβ1的 mRNA 表 達(dá) 較 pcDNA3.1(+)-EGFP質(zhì)粒轉(zhuǎn)染組、空白組及對照組明顯增高[(20.220±0.879)vs(9.609±1.607)vs(5.122±3.512)vs(6.213±0.259),P<0.05]。

圖3 Wester blot 法檢測各組TGFβ1蛋白的表達(dá)

2.4 TGFβ1蛋白的表達(dá)情況 Western blot印跡法檢測TGFβ1蛋白表達(dá)。TGFβ1在SDS-PAGE凝膠電泳中表現(xiàn)為46KD的條帶,實驗顯示:pcDNA3.1(+)-TGFβ1轉(zhuǎn)染組TGFβ1蛋白的表達(dá)較pcDNA3.1(+)-EGFP質(zhì)粒轉(zhuǎn)染組、空白組及對照組明顯增高[(0.968±0.822)vs(0.319±0.083)vs(0.211±0.024)vs(0.250±0.086),P<0.05]。見圖 3。

3 討論

肝纖維化指肝臟纖維結(jié)締組織的過度沉積,是ECM合成和降解不平衡的結(jié)果,是各種慢性肝病向肝硬化發(fā)展所共有的病理改變和必經(jīng)途徑。早期肝纖維化經(jīng)治療可以逆轉(zhuǎn)[2],因此深入開展肝纖維化形成機(jī)制的研究有十分重要的意義。目前認(rèn)為HSC的激活是肝纖維化形成機(jī)制的中心環(huán)節(jié)。慢性肝損害過程中,大量細(xì)胞因子通過介導(dǎo)細(xì)胞-細(xì)胞間,基質(zhì)-細(xì)胞間相互作用影響HSC,激活并促使HSC大量合成ECM,導(dǎo)致ECM過分沉積出現(xiàn)肝纖維化。在HSC的激活、致纖維化以及與其他細(xì)胞的相互作用的過程中,多種因素參與該過程的調(diào)節(jié),細(xì)胞因子起重要作用,而TGF-β1是激活 HSC 的最重要促進(jìn)因子[3]。

TGFβ是一種多功能的多肽類細(xì)胞因子,幾乎體內(nèi)所有細(xì)胞都能分泌TGFβ并存在其受體,在細(xì)胞的生長調(diào)節(jié)中起重要作用。自從1983年TGFβ1及隨后其他兩個成員TGFβ2、TGFβ3在哺乳類動物中發(fā)現(xiàn),關(guān)于TGFβ的研究也越來越引起人們的重視。TGFβ家族是已知與纖維化形成關(guān)系最密切的細(xì)胞因子[4],其中,TGFβ1是最重要的致纖維化因子[5],在肝纖維化發(fā)展過程中起重要作用。TGFβ1是啟動鄰近靜息態(tài)HSC激活和轉(zhuǎn)化的初始信號之一,Gressner[6]等在肝纖維化形成的3步激活模式中表明TGFβ1的這種初始激活作用,并已被大量研究證實。Kupper細(xì)胞、單核細(xì)胞、血小板的旁分泌及HSC的自分泌是TGFβ1早期持續(xù)增高并使肝纖維化持續(xù)發(fā)展的重要原因。TGFβ1所介導(dǎo)的信號通道被認(rèn)為在HSC的活化及ECM的產(chǎn)生起重要作用[7]。

HSC 作為肝纖維化發(fā)病的關(guān)鍵環(huán)節(jié)倍受關(guān)注,以HSC 為靶標(biāo)的治療措施逐漸成為抗纖維化的重要方法[8]。因此,構(gòu)建pcDNA3.1(+)-TGFβ1真核表達(dá)載體并轉(zhuǎn)染HSC,建立高表達(dá)TGFβ1的HSC,模擬肝纖維化過程中TGFβ1高表達(dá)的體內(nèi)環(huán)境,并以此為細(xì)胞為基礎(chǔ)進(jìn)行下一步研究。本資料表明,pcDNA3.1(+)-TGFβ1真核表達(dá)載體構(gòu)建成功,并可成功轉(zhuǎn)染HSC,轉(zhuǎn)染率為28.2%,48h后加入G418篩選,約21d可形成陽性克隆,經(jīng)熒光定量PCR及Western blot鑒定,克隆細(xì)胞高表達(dá)TGFβ1mRNA及蛋白,表明高表達(dá)TGFβ1的HSC篩選成功。鑒于HSC在肝纖維化發(fā)病機(jī)制中的主導(dǎo)作用,可應(yīng)用高表達(dá)TGFβ1的HSC開展肝臟疾病,尤其是肝纖維化、肝硬化的研究,可得到更為可信且直接的實驗結(jié)果,為肝纖維化的防治提供理論依據(jù)。

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