歐亞非,趙彩夢,鄭亞東,毛多斌,魏 濤
(1.上海煙草集團(tuán)技術(shù)中心 北京工作站,北京 101121;2.鄭州輕工業(yè)大學(xué) 食品與生物工程學(xué)院,河南 鄭州 450002)
全反式視黃醛又稱維生素A醛,在食品保健、化妝品、醫(yī)藥化工行業(yè)具有廣泛用途[1-2]。目前報(bào)道的全反式視黃醛一般通過視黃醇氧化反應(yīng)獲得,由于視黃醇的分子結(jié)構(gòu)中具有多個(gè)共軛雙鍵,對熱、光或氧氣等極不穩(wěn)定,在氧化反應(yīng)過程中容易形成多種氧化產(chǎn)物,轉(zhuǎn)化率較低且氧化劑的使用會(huì)產(chǎn)生大量污染物[3-4]。相比化學(xué)合成法,微生物酶轉(zhuǎn)化法制備產(chǎn)物具有專一性強(qiáng)、產(chǎn)物含量高、經(jīng)濟(jì)簡單的特點(diǎn),同時(shí)可以避免化學(xué)合成中環(huán)境污染問題[5-6]。
β-胡蘿卜素是8個(gè)異戊二烯單元相連接且分子兩端各有一個(gè)不飽和己烯環(huán)的四萜化合物,在微生物及其相關(guān)裂解酶水解過程中能產(chǎn)生全反式視黃醛以及其他揮發(fā)性致香物質(zhì)[7-10]。β-胡蘿卜素降解方式分為對稱裂解和不對稱裂解兩種方式:對稱裂解由β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶作用第15個(gè)碳的位置,生成2分子視黃醛;不對稱裂解由β-胡蘿卜素7,8雙加氧酶、β-胡蘿卜素9,10雙加氧酶和β-胡蘿卜素11,12雙加氧酶等催化作用不同位點(diǎn),生成番紅花苷、藏紅花醛、β-紫羅酮、脫落酸等[11-14]。目前對于β-胡蘿卜素不對稱裂解酶研究較多,而對于對稱裂解酶研究較少,來源于海洋細(xì)菌β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶Blh是是唯一報(bào)道微生物來源的β-胡蘿卜素對稱裂解酶[15]。本研究將來自海洋棲熱菌(Thermussp.DN-1)的β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶(β-carotene-15,15’-oxygenase,BCMOTA)基因在大腸桿菌中克隆表達(dá),利用生物酶法催化水解β-胡蘿卜素生成全反式視黃醛,以期獲得一種適用于工業(yè)化生產(chǎn)全反式視黃醛的新型酶催化劑。
1.1.1 菌株
海洋棲熱菌(Thermussp.)DN-1:本實(shí)驗(yàn)室篩選獲得與保存。
1.1.2 試劑
全反式視黃醛標(biāo)準(zhǔn)品(純度>98%):百靈威科技有限公司;β-胡蘿卜素(純度95%):陜西帕尼爾生物科技有限公司;大腸桿菌(Escherichia coli)(DH5α)感受態(tài)細(xì)胞、限制性內(nèi)切酶NdeI和BamHI、PyrobestDNA聚合酶、DNA連接酶、細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒ver.3.0:大連TAKARA公司;大腸桿菌(Escherichia coli)BL21(DE3)、克隆與表達(dá)質(zhì)粒載體pET22b:上海斯信生物科技有限公司。
1.1.3 培養(yǎng)基
LB液體培養(yǎng)基:蛋白胨1%,酵母粉0.5%,NaCl 1%,121 ℃滅菌20 min。
含氨芐青霉素和氯霉素的LB液體培養(yǎng)基:蛋白胨1%,酵母粉0.5%,NaCl 1%,氨芐霉素和氯霉素濃度均為1%,121 ℃滅菌20 min。
Mastercycler X50h型梯度聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)儀:德國Eppendorf公司;LDZX 型立式壓力蒸汽滅菌器:上海申安醫(yī)療器械廠;1-15K低溫離心機(jī):美國Sigma-Aldrich公司;Y92-III超聲波細(xì)胞粉碎機(jī):寧波新芝生物科技股份有限公司;GeneGenius凝膠成相系統(tǒng):英國Syngene公司;QYC 211恒溫培養(yǎng)箱:上海?,攲?shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;2010A/2010C型高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC)儀:日本島津公司。
1.3.1Thermussp.DN-1基因組序列提取
利用細(xì)菌基因組脫氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)提取試劑盒提取Thermussp.DN-1基因組DNA。
1.3.2 引物設(shè)計(jì)與合成
按照目前已經(jīng)報(bào)道β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶保守氨基酸序列,設(shè)計(jì)引物如下:(F)5'-GTGCCGACATATGAACACCGCATCGGCCTATCGGAAG-3'(NdeI)和(R)5'-AATTCAGGGATCCATTGGCACACTGGACTGGCACATCCCG-3'(BamHI),由上海生工公司合成。
1.3.3Thermussp.DN-1β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA的基因克隆
以Thermussp.DN-1基因DNA為模板,PCR技術(shù)擴(kuò)增β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA基因片段,PCR反應(yīng)體系(100 μL):模板1 μL(50 ng),脫氧核糖核苷三磷酸(deoxy-ribonucleoside triphosphate,dNTP)(25 mmol/L)2 μL,引物(100 μmol/L)各1 μL,MgCl2(25 mmol/L)2 μL,10×緩沖液10 μL,ProbestTMDNA聚合酶(5 U/μL)1 μL,超純水82 μL。PCR擴(kuò)增條件:預(yù)變性95 ℃、4 min;變性95 ℃、30 s;退火56 ℃、30 s;延伸72 ℃、2 min,35個(gè)循環(huán)。將目的基因與載體pET22b連接,獲得重組質(zhì)粒,并進(jìn)行雙酶切及測序驗(yàn)證。
1.3.4Thermussp.DN-1β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA的氨基酸序列分析
利用Clustal W 軟件對Thermussp.DN-1β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA與已報(bào)道相關(guān)蛋白序列進(jìn)行氨基酸比對分析。
1.3.5 重組質(zhì)粒在大腸桿菌中的表達(dá)與純化
將測序正確的重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)入大腸桿菌BL21(DE3)中。挑取LB平板上的單菌落于20 mL含氨芐青霉素和氯霉素的LB液體培養(yǎng)基中,培養(yǎng)12~16 h;按2%接種量轉(zhuǎn)接入1 L含氨芐青霉素和氯霉素LB液體培養(yǎng)基中,培養(yǎng)2.5 h,使OD600nm值在0.4~0.6;加入終濃度0.5 mmol/L的異丙基-β-D-硫代半乳糖苷(isopropyl-β-D-thiogalactoside,IPTG)于30 ℃繼續(xù)培養(yǎng)8 h;離心收集的菌體懸浮在30 mL破壁緩沖液(50 mmol/L Tris-HCl,pH 7.5,100 mmol/L NaCl)中,超聲波破碎菌體;12 000×g離心15 min,得到粗酶液。利用鎳柱親和層析和Sephacryl TM S-100 HR column 分子篩柱純化蛋白。分子篩條件:50 mmol/L Tris-HCl,200 mmol/L NaCl緩沖液(pH 7.5)平衡,流速為1 mL/min。十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)檢測收集下來的蛋白。
1.3.6β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶酶活力的測定
檢測β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA活性,采用以下反應(yīng)體系[16-18]:2 mg/mLβ-胡蘿卜素、50 mmol/L NaCl、5 mmol/L FeSO4·7H2O、20 mmol/L三(2-甲酰乙基)膦鹽酸鹽(tris(2-carboxylethyl)phosphine hydrochloride,TCEP)、2%辛基-β-D-硫代吡喃葡萄糖苷(octyl thioglucoside,OTG)、1%Tween 80、5 mmol/L二硫蘇糖醇(dithiothreitol,DTT)、50 mmol/L Tricine-KOH緩沖液(pH 8.0)和0.5 U/mLβ-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA酶液,50 ℃酶解120 min,加入5%的甲醛終止反應(yīng)。以不含有酶液的上述反應(yīng)體系作為對照組。
β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA酶活力單位定義為:在一定條件下,每分鐘生成1 μmol的全反式視黃醛所需要的酶量為一個(gè)活力單位(U)。
高效液相色譜法檢測反應(yīng)產(chǎn)物[19-21],所用色譜柱為Alltech Prevail C18色譜柱(25 cm×4.6 cm),采用日本島津SPD-M10A二極管陣列檢測器,檢測β-胡蘿卜素,流動(dòng)相為正己烷∶甲基叔丁基醚(95∶5,V/V),洗脫速度為1.0 mL/min,在波長460 nm檢測;檢測全反式視黃醛,流動(dòng)相為乙腈∶水(90∶10,V/V),洗脫速度為0.4 mL/min,檢測波長370 nm。以不同質(zhì)量濃度(x)全反式視黃醛標(biāo)準(zhǔn)品(0.005 mg/mL、0.010 mg/mL、0.020 mg/mL、0.040 mg/mL、0.060 mg/mL、0.080 mg/mL、0.100 mg/mL)為橫坐標(biāo),峰面積(y)為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程計(jì)算酶活力。
1.3.7 重組β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA酶學(xué)性質(zhì)研究
(1)最適反應(yīng)溫度
將適量的酶液分別于15~70 ℃溫度條件下與底物混合反應(yīng)30 min,比較酶活性大小,確定最適溫度。
(2)最適反應(yīng)pH值
在不同pH(6.0~10.5)的緩沖液中檢測酶活,并確定最適pH值。所用緩沖液分別為50 mmol/L檸醋酸鈉緩沖液(pH 5.5~6.0)、磷酸鈉緩沖液(pH 6.5~8.0)、Tris-HCl緩沖液(pH 8.5~9.0)和3-環(huán)己胺基苯磺酸(N-cyclohexyl-3-aminopropanesulfonic acid,CAPS)緩沖液(pH 9.5~10.5)。
(3)酶濃度對全反式視黃醛產(chǎn)量的影響
在1 000 mg/L的底物濃度的反應(yīng)體系中分別添加β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA(0~6 U/mL),檢測全反式視黃醛產(chǎn)量。
(4)底物濃度對全反式視黃醛產(chǎn)量的影響
在酶濃度為4 U/mL的反應(yīng)體系中添加不同濃度底物β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA(0~1 000 mg/L),檢測全反式視黃醛產(chǎn)量。
(5)在最佳反應(yīng)條件下全反式視黃醛產(chǎn)量
在以上實(shí)驗(yàn)結(jié)果的基礎(chǔ)上,建立β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA轉(zhuǎn)化β-胡蘿卜素制備全反式視黃醛的最佳反應(yīng)條件,酶濃度4 U/mL,β-胡蘿卜素質(zhì)量濃度1 000 mg/L,反應(yīng)溫度50 ℃,反應(yīng)pH 8.0,其他反應(yīng)條件為標(biāo)準(zhǔn)反應(yīng)體系。
圖1 β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA和Blh氨基酸序列比對Fig.1 Amino acid sequence alignment between β-carotene 15,15'-dioxygenase BCMOTA and Blh
經(jīng)過對重組質(zhì)粒進(jìn)行測序,得到編碼β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA的氨基酸序列如下:共319氨基酸。到目前為止,不可培養(yǎng)海洋細(xì)菌來源Blh(GenBank accession num ber:AAY68319)是唯一報(bào)道微生物來源的β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶[11]。利用軟件Clustal W 2.1比對分析β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA和Blh氨基酸序列,結(jié)果見圖1。由圖1可知,BCMOTA和Blh氨基酸序列具有30%相似性,其中具有LPHGDLDA,HSXXH和TVPHMI三個(gè)保守結(jié)構(gòu)域;H21、H79、H188、H192和H252為預(yù)測的五個(gè)金屬離子結(jié)合位點(diǎn)。
重組質(zhì)粒在大腸桿菌BL21(DE3)表達(dá)后,經(jīng)超聲波破壁、50 ℃熱處理、鎳柱親和層析和分子篩Sephacryl TM S-100,得到純化重組β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶,分子質(zhì)量為35 kDa,結(jié)果如圖2所示。
圖2 十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳檢測β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA純化結(jié)果Fig.2 Purification results of β-carotene 15,15'-dioxygenase BCMOTA detected by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis
HPLC檢測酶反應(yīng)活性,色譜圖如圖3所示。結(jié)果表明,重組β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA具有裂解β-胡蘿卜素15,15’雙鍵的活性,在β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶的酶活性標(biāo)準(zhǔn)反應(yīng)體系中,優(yōu)化催化合成全反式視黃醛產(chǎn)量。
β-胡蘿卜素單加氧酶BCMOTA水解β-胡蘿卜素轉(zhuǎn)化生成全反式視黃醛,反應(yīng)式如下:
圖3 β-胡蘿卜素標(biāo)準(zhǔn)物(a)、全反式視黃醛標(biāo)準(zhǔn)物(b)及BCMOTA酶水解產(chǎn)物(c)HPLC色譜圖Fig.3 HPLC chromatogram of β-carotene standard (a),all-transretinal standard (b) and BCMOTA enzymic hydrolysates (c)
2.4.1β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA最適反應(yīng)溫度
如圖4所示,β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA的最適反應(yīng)溫度為50 ℃,且該酶在35~55 ℃溫度范圍內(nèi)都有80%以上的活性。
圖4 溫度對酶活的影響Fig.4 Effect of temperature on enzyme activity
2.4.2β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA最適反應(yīng)pH
pH值會(huì)改變位于酶活性中心、底物和輔酶的解離狀態(tài),進(jìn)而改變酶與底物的結(jié)合狀態(tài)以及催化水平。研究了不同pH條件對酶活力的影響,如圖5所示,該酶最適反應(yīng)pH為8.0,在pH 7.0~9.5范圍內(nèi),該酶可以保持60%以上的活性。
圖5 pH值對酶活的影響Fig.5 Effect of pH value on enzyme activity
2.4.3 酶濃度對全反式視黃醛產(chǎn)量的影響
如圖6所示,研究了酶濃度(0~6 U/mL)對全反式視黃醛產(chǎn)生的影響。在含有1 000 mg/L底物濃度的反應(yīng)系統(tǒng)中,全反式視黃醛的產(chǎn)生隨著酶濃度先增加后趨于穩(wěn)定的趨勢,在約4 U/mL達(dá)到產(chǎn)物達(dá)到最大量,因此認(rèn)為產(chǎn)生全反式視黃醛的最適酶濃度為4 U/mL。
圖6 酶濃度對全反式視黃醛產(chǎn)量的影響Fig.6 Effect of enzyme concentration on all-trans retinal production
2.4.4 底物濃度對全反式視黃醛產(chǎn)量的影響
研究底物質(zhì)量濃度(0~1 000 mg/L)對全反式視黃醛產(chǎn)生的影響,結(jié)果見圖7。由圖7可知,在4 U/mL酶濃度的反應(yīng)系統(tǒng)中,在底物質(zhì)量濃度600 mg/L條件下檢測到全反式視黃醛的最大產(chǎn)量。
圖7 底物質(zhì)量濃度對全反式視黃醛產(chǎn)量的影響Fig.7 Effect of substrate mass concentration on all-trans retinal production
2.4.5 在最佳反應(yīng)條件下全反式視黃醛產(chǎn)量
如圖8所示,在最佳反應(yīng)條件下反應(yīng)25h,產(chǎn)生569.3mg/L全反式視黃醛,同時(shí)消耗600 mg/Lβ-胡蘿卜素,根據(jù)催化反應(yīng)式,計(jì)算生成全反式視黃醛的轉(zhuǎn)化率達(dá)到89.5%。結(jié)果表明,該酶可以高效催化合成全反式視黃醛,具有較好的工業(yè)應(yīng)用價(jià)值。
圖8 在最佳反應(yīng)條件下全反式視黃醛產(chǎn)量Fig.8 All-trans retinal production under optimal reaction conditions
本研究得到了一種海洋棲熱菌Thermussp.DN-1β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶BCMOTA的基因序列和氨基酸序列,并在E.coliBL21(DE3)中成功克隆表達(dá);通過鎳柱親和層析和分子篩Sephacryl TM S-100,得到純化重組β-胡蘿卜素15,15’雙加氧酶。SDS-PAGE分析表明該酶分子質(zhì)量約35 kDa。酶學(xué)性質(zhì)研究表明該酶的最適溫度和pH分別為50 ℃和8.0;在最佳反應(yīng)條件酶濃度4 U/mL,β-胡蘿卜素質(zhì)量濃度1 000 mg/L,反應(yīng)溫度50 ℃,反應(yīng)pH 8.0,生成569.3 mg/L全反式視黃醛,轉(zhuǎn)化率達(dá)到89.5%,表明該酶可以高效催化合成全反式視黃醛,因此在食品化工領(lǐng)域具有較好的應(yīng)用價(jià)值。