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內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激參與高磷誘導(dǎo)的血管平滑肌細(xì)胞鈣化的作用機(jī)制

2022-07-04 06:43段書(shū)眾馬思佳于文會(huì)王歡歡張華王景福
關(guān)鍵詞:內(nèi)質(zhì)網(wǎng)結(jié)果顯示引物

段書(shū)眾,馬思佳,于文會(huì),王歡歡,張華,王景福

(承德醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院腎臟內(nèi)科,河北 承德 067000)

研究顯示,慢性腎臟病患者血管鈣化的抑制和促進(jìn)因素之間穩(wěn)態(tài)失衡,導(dǎo)致血管平滑肌細(xì)胞(vascular smooth muscle cell,VSMC)向成骨細(xì)胞轉(zhuǎn)分化[1],血管內(nèi)膜、中膜及心臟瓣膜鈣化[2]。血管鈣化是心腦血管疾病的重要危險(xiǎn)因素,與慢性腎衰竭患者心血管并發(fā)癥和全因死亡率相關(guān)[3]。研究[4]顯示高磷血癥是慢性腎臟病患者血管鈣化的決定性因素;高磷血癥導(dǎo)致血管鈣化的機(jī)制包括VSMC向成骨/軟骨細(xì)胞轉(zhuǎn)分化、凋亡小體形成、細(xì)胞外囊泡釋放、細(xì)胞外基質(zhì)蓄積、炎性細(xì)胞因子釋放、氧化應(yīng)激反應(yīng)等。內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激參與VSMC凋亡,導(dǎo)致動(dòng)脈粥樣硬化、高血壓、血管瘤和血管鈣化等血管疾?。?]。目前,仍無(wú)預(yù)防血管鈣化的有效手段,因此需要探索可能的藥物治療靶點(diǎn)[6]。內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激是否參與高磷誘導(dǎo)的VSMC鈣化鮮有報(bào)道。本研究探討內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激是否參與高磷誘導(dǎo)的血管鈣化過(guò)程及其可能的作用機(jī)制。

1 材料與方法

1.1 細(xì)胞培養(yǎng)及分組

人胸主動(dòng)脈VSMC(美國(guó)ScienCell Research Laboratories)于含10%胎牛血清、100 mg/mL鏈霉素、100 U/mL青霉素的DMEM培養(yǎng)基中,37 ℃、5%CO2、濕度70%~80%恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。每2 d更換1次培養(yǎng)液,第5~8代細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。設(shè)置對(duì)照組(正常培養(yǎng))、磷正常濃度(1.3 mmol/L,NP)組、磷高濃度(2.6 mmol/L,HP)組、HP+SP600125組 [應(yīng)用c-Jun氨基末端激酶(c-Jun N-terminal kinase,JNK)抑制劑SP600125(美國(guó)Sigma-Aldrich公司,10 μmol/L)預(yù)處理30 min后,高濃度磷(2.6 mmol/L)培養(yǎng)基培養(yǎng)10 d]、HP+siCHOP組[(C/EBP homologous protein,CHOP)siRNA使CHOP基因沉默,高濃度磷(2.6 mmol/L)培養(yǎng)基培養(yǎng)10 d]。

1.2 方法

1.2.1 茜素紅染色觀察各組VSMC鈣沉積:VSMC接種到6孔板中,生長(zhǎng)至60%時(shí),各組實(shí)施干預(yù)措施,PBS沖洗3次,4%多聚甲醛4 ℃固定10 min,PBS沖洗3次,放入1%茜素紅S溶液內(nèi)染色30 min,然后0.2%醋酸溶液快速?zèng)_洗1次,濾紙吸干后乙醇脫水,二甲苯固定、封片,顯微鏡下觀察并拍照。

1.2.2 實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè)各組內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激及鈣化相關(guān)基因表達(dá):棄去培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)上清液,PBS沖洗,TRIzol法提取總RNA。取RNA 1 μg,用反轉(zhuǎn)錄試劑盒逆轉(zhuǎn)錄獲得cDNA。以cDNA作為PCR擴(kuò)增模板,按照說(shuō)明書(shū)配比反應(yīng)體系,以GAPDH為內(nèi)參基因。引物序列:骨形態(tài)發(fā)生蛋白2(bone morphogenetic protein 2,BMP-2),正向引物 5’-GGGACCCGCTGTCTTCTAGT-3’,反向引物5’-TCAACTCAAATTCGCTGAGGAC-3’;Runt相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子2(Runt-related transcription factor 2,Runx-2),正向引物5’-ACTGTGGTTACCGTCATGGC-3’,反向引物 5’-ACTTGGTTTTTCATAACAGCGGA-3’;CHOP,正向引物5’-GGAAACAGAGTGGTCATTCC C-3’,反向引物5’-CTGCTTGAGCCGTTCATTCTC;RNA依賴(lài)的蛋白激酶樣內(nèi)質(zhì)網(wǎng)激酶(RNA-dependent protein kinase-like endoplasmic reticulum kinase,PERK),正向引物 5’-ACGATGAGACAGAGTTGCGA C-3’,反向引物 5’-ATCCAAGGCAGCAATTCTCCC-3’;肌醇需求因子1(inositol-requiring enzyme1,IRE1),正向引物5’-CATCCCCATGCCGAAGTTCA-3’,反向引物 5’-CTGCTTCTCTCCGGTCAGGA-3’;GAPDH,正向引物 5’-AGAAGGCTGGGGCTCATTTG-3’,反 向引物 5’-AGGGGCCATCCACAGTCTTC-3’。反應(yīng)條件:預(yù)變性95℃、5 min;循環(huán)反應(yīng) 95 ℃、15 s,60℃、30 s,共40個(gè)循環(huán);溶解曲線(xiàn)95 ℃、15 s,60 ℃、1 min,95 ℃、15 s,60 ℃、15 s?;蛳鄬?duì)表達(dá)量采用2-ΔΔCt法進(jìn)行計(jì)算。

1.2.3 Western blotting檢測(cè)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激蛋白CHOP、磷酸化PERK(phosphorylated PERK,p-PERK)、IRE1、磷酸化c-Jun氨基末端激酶(phosphorylated c-Jun N-terminal kinase,p-JNK)及鈣化蛋白BMP-2、Runx-2表達(dá):于75 cm2培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)各組VSMC,PBS洗滌3次,經(jīng)裂解液在4 ℃下裂解30 min,離心、取上清液,BCA試劑盒測(cè)定蛋白含量。SDS-PAGE電泳分離蛋白組分,轉(zhuǎn)至PVDF膜上5%脫脂奶粉封閉60 min,一抗[分別為抗CHOP(1 ∶1 000)、抗BMP-2(1 ∶1 000)、抗IRE1(1 ∶1 000)、抗p-PERK(1 ∶1 000)、抗p-JNK(1 ∶500)、抗Runx-2(1 ∶1 000)和抗-β-actin(1 ∶5 000)]孵育液內(nèi)4 ℃過(guò)夜,TBST洗滌3次,與相應(yīng)辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的二抗結(jié)合,室溫孵育1 h?;瘜W(xué)發(fā)光法顯色發(fā)光,全自動(dòng)凝膠成像系統(tǒng)掃描、拍照,Image J軟件分析數(shù)據(jù)。

1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

2 結(jié)果

2.1 各組VSMC鈣沉積比較

結(jié)果顯示,對(duì)照組與NP組未見(jiàn)鈣化表現(xiàn);HP組VSMC染成深紅色,提示存在細(xì)胞鈣化;HP+SP600125組鈣化較HP組明顯減輕,提示JNK誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡參與了高磷誘導(dǎo)的VSMC鈣化;HP+siCHOP組VSMC鈣化較HP組減輕,提示CHOP誘導(dǎo)的VSMC凋亡也參與了高磷誘導(dǎo)的VSMC鈣化。見(jiàn)圖1。

圖1 各組VSMC鈣沉積比較Fig.1 Comparison of VSMC calcium deposition in each group

2.2 各組VSMC鈣化相關(guān)基因BMP-2、Runx-2和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激相關(guān)基因IRE1、PERK、JNK、CHOP表達(dá)比較

結(jié)果顯示,與對(duì)照組比較,NP組VSMC相關(guān)基因BMP-2、Runx-2表達(dá)無(wú)明顯增加,提示正常濃度磷無(wú)誘導(dǎo)VSMC鈣化的作用;而HP組BMP-2、Runx-2表達(dá)較對(duì)照組及NP組明顯增高(P< 0.05),提示高濃度磷可誘導(dǎo)VSMC鈣化。與對(duì)照組及NP組比較,HP組內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激相關(guān)基因IRE1、PERK、JNK及CHOP表達(dá)均顯著增加(均P< 0.05)。見(jiàn)圖2。

圖2 各組VSMC鈣化相關(guān)基因BMP-2、Runx-2,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激相關(guān)基因IRE1、PERK、JNK、CHOP表達(dá)比較Fig.2 The expression of BMP-2,Runx-2,IRE1,PERK,JNK,and CHOP in each group

2.3 高磷導(dǎo)致VSMC內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激反應(yīng)增強(qiáng)

結(jié)果顯示,與對(duì)照組及NP組比較,HP組內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激蛋白IRE1、p-PERK、CHOP、p-JNK表達(dá)均顯著增高(均P< 0.05),提示高磷培養(yǎng)細(xì)胞可增強(qiáng)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激反應(yīng),并且同時(shí)激活了pPERK-CHOP和IRE1-p-JNK 2條途徑。見(jiàn)圖3。

圖3 各組內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激相關(guān)蛋白IRE1、p-PERK、JNK、CHOP表達(dá)Fig.3 Protein expression of IRE1,p-PERK,JNK,and CHOP in each group

2.4 抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激信號(hào)傳遞可減輕高磷血癥導(dǎo)致的鈣化

Western blotting結(jié)果顯示,與對(duì)照組比較,CHOPsiRNA使CHOP基因沉默后凋亡蛋白CHOP表達(dá)下調(diào),說(shuō)明轉(zhuǎn)染成功敲低了CHOP表達(dá),見(jiàn)圖4。與HP組比較,CHOPsiRNA使CHOP基因沉默后,CHOP表達(dá)減少,說(shuō)明抑制了內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激p-PERK-CHOP途徑。應(yīng)用JNK抑制劑SP600125抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激的IRE1-p-JNK途徑,與HP組比較,siCHOP+HP組與SP600125+HP組鈣化蛋白BMP-2及Runx-2表達(dá)均顯著減少(均P<0.05),提示內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激參與了高磷誘導(dǎo)的VSMC鈣化。見(jiàn)圖5。

圖4 VSMC轉(zhuǎn)染siCHOP后CHOP蛋白表達(dá)Fig.4 Expression of CHOP protein in VSMC transfected with siCHOP

圖5 各組鈣化蛋白BMP-2及Runx-2表達(dá)比較Fig.5 Comparison of expression of calcifying proteins BMP-2 and Runx-2 in each group

3 討論

本研究結(jié)果顯示,高磷可誘導(dǎo)VSMC BMP-2及Runx-2表達(dá)增加,提示VSMC發(fā)生了成骨細(xì)胞表型轉(zhuǎn)分化。血管鈣化是VSMC向成骨細(xì)胞、軟骨細(xì)胞、成脂細(xì)胞及巨噬細(xì)胞表型轉(zhuǎn)分化驅(qū)動(dòng)的主動(dòng)過(guò)程[6]。隨著腎臟功能逐漸減退,腎臟排泄磷功能障礙,慢性腎臟病患者普遍存在高磷血癥。研究[7]顯示,高磷啟動(dòng)和促進(jìn)血管鈣化進(jìn)展的機(jī)制包括:(1)促進(jìn)VSMC向軟骨細(xì)胞表型轉(zhuǎn)變,增加細(xì)胞外基質(zhì)鈣化;(2)誘導(dǎo)VSMC凋亡;(3)抑制單核細(xì)胞/巨噬細(xì)胞向破骨樣細(xì)胞分化;(4)增加成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子23(fibroblast growth factor 23,F(xiàn)GF23)水平;(5)減少Klotho蛋白表達(dá)。已有研究[8]顯示內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激機(jī)制通過(guò)多種機(jī)制誘導(dǎo)血管鈣化。

本研究應(yīng)用高磷培養(yǎng)基刺激VSMC表達(dá)p-JNK等內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激特異性蛋白,探討內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激是否參與高磷誘導(dǎo)的VSMC鈣化。結(jié)果顯示,高磷培養(yǎng)細(xì)胞可增強(qiáng)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激反應(yīng);同時(shí)發(fā)現(xiàn)p-JNK、CHOP等凋亡相關(guān)蛋白表達(dá)增多,提示內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導(dǎo)了VSMC凋亡。已有體外實(shí)驗(yàn)[9]證實(shí)VSMC凋亡先于血管鈣化,凋亡小體含有高濃度鈣,它沉積到細(xì)胞外基質(zhì),作為鈣沉積的內(nèi)核而引起鈣化。內(nèi)質(zhì)網(wǎng)是細(xì)胞內(nèi)負(fù)責(zé)合成蛋白和脂類(lèi)的細(xì)胞器,同時(shí)又是主要的鈣儲(chǔ)存庫(kù),維持細(xì)胞鈣穩(wěn)態(tài);當(dāng)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔內(nèi)未折疊蛋白或者錯(cuò)誤折疊蛋白過(guò)多時(shí),導(dǎo)致內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激穩(wěn)態(tài)破壞、發(fā)生內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激,從而導(dǎo)致多種疾病發(fā)生[10]。內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激主要通過(guò)誘導(dǎo)VSMC凋亡的方式促進(jìn)血管鈣化[11],其誘導(dǎo)凋亡的信號(hào)通路包括:(1)PERK活化后,磷酸化真核細(xì)胞起始因子(eukaryotic initiation factor 2,eIF2)的α亞單位,進(jìn)而促進(jìn)轉(zhuǎn)錄激活因子4(activating transcription factor 4,ATF4)轉(zhuǎn)位入核,激活凋亡蛋白CHOP,誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[12]。(2)IRE1發(fā)生二聚化和自身磷酸化,生成的IRE1α可以募集腫瘤壞死因子受體相關(guān)因子2(TNF receptor associated factor 2,TRAF2),依次激活凋亡信號(hào)調(diào)節(jié)激酶1(apoptosis signal-regulating kinase 1,ASK1)、JNK,JNK通過(guò)抑制B淋巴細(xì)胞瘤-2基因而誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[13]。(3)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激時(shí),caspase-12活化激活caspase家族蛋白而誘導(dǎo)凋亡。內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激除了通過(guò)誘導(dǎo)凋亡的方式參與血管鈣化外,還激活轉(zhuǎn)錄活化因子X(jué)盒結(jié)合蛋白1(X-box binding protein 1,XBP1)結(jié)合Runx-2啟動(dòng)子,促進(jìn)血管平滑肌細(xì)胞轉(zhuǎn)分化[14]。

本研究在沉默CHOP基因后再高磷刺激VSMC,結(jié)果顯示BMP-2及Runx-2表達(dá)均減少,提示內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激的PERK-eIF2-CHOP途徑參與高磷誘導(dǎo)的VSMC鈣化。應(yīng)用JNK抑制劑SP600125預(yù)處理高磷細(xì)胞后發(fā)現(xiàn)預(yù)處理后的VSMC鈣沉積減輕,提示內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激的IRE1-TRAF2-JNK途徑亦參與了高磷誘導(dǎo)的VSMC鈣化。已有研究[15]顯示體外培養(yǎng)子宮頸癌細(xì)胞時(shí),細(xì)胞外液高磷環(huán)境可激活區(qū)細(xì)胞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激,細(xì)胞凋亡蛋白裂解的caspase-3表達(dá)增加,但加入SP600125抑制JNK后表達(dá)減少。研究[16]顯示在糖尿病大鼠模型中,鐵死亡通過(guò)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激參與心肌缺血/再灌注損傷??梢?jiàn)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導(dǎo)凋亡的機(jī)制可能發(fā)生在多種細(xì)胞內(nèi),因此可能成為與凋亡相關(guān)的血管鈣化等疾病的潛在治療靶點(diǎn)。

綜上所述,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激機(jī)制參與了高磷誘導(dǎo)的VSMC鈣化,其作用機(jī)制可能是激活了pPERK-CHOP和IRE1-p-JNK兩條途徑。本研究不足之處:(1)未進(jìn)行SP600125和CHOPsiRNA對(duì)VSMC鈣定量和堿性磷酸酶活性影響的檢測(cè);(2)為體外實(shí)驗(yàn),僅采用細(xì)胞培養(yǎng),今后應(yīng)設(shè)計(jì)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)來(lái)進(jìn)一步論證。

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