周歡粉,魏世輝,李曉明
特發(fā)性脫髓鞘性視神經(jīng)炎(idiopathetic demyelinated optic neuritis,IDON)是視神經(jīng)常見的一種炎性脫髓鞘性疾病,具有自限性,可導(dǎo)致急性視力下降。視神經(jīng)炎的病理特征主要表現(xiàn)為髓鞘脫失。實驗性自身免疫性腦脊髓炎 (experimental autoimmune encephalo-myelitis,EAE)與脫髓鞘性視神經(jīng)炎相比,在視覺誘發(fā)電位(visual evoked potentials,VEP)、磁共振成像和病理方面極其相似,并且EAE中VEP的潛伏期延長,類似多發(fā)性硬化 (mlltiple sclerosis,MS)和視神經(jīng)炎(optic neuritis,ON)[1,2]。 目前,國際上普遍應(yīng)用EAE模型來研究MS和ON,但制作模型的方法多種多樣。本研究首次在國內(nèi)建立MOG35-55多肽誘發(fā)的ON小鼠模型,為下一步廣泛開展IDON發(fā)病機制和治療的研究奠定基礎(chǔ)。
1.1 實驗材料
1.1.1 實驗動物 實驗用C57BL/6(H-2b)小鼠50只,雌雄不限,8~10周齡,由中國人民解放軍總醫(yī)院實驗動物中心提供。動物飼養(yǎng)于室溫24℃的環(huán)境中,維持光/暗12 h循環(huán)交替,并給予充足的食料和潔凈飲水。飼養(yǎng)2~7 d,用于實驗。
1.1.2 主要試劑 鼠源 MOG35-55多肽 (MEVGWYRSPFSRVVHLYRNGK):北京賽百盛基因技術(shù)有限公司合成,采用反高校液相色譜儀(C18柱)分離純化,純度在95%以上;完全弗氏佐劑(CFA)購自美國Sigma公司;百日咳菌苗和結(jié)核桿菌凍干粉均購自北京天壇生物制品研究所。
1.2 實驗方法
1.2.1 實驗動物分組 50只C57BL/6小鼠隨機分為2組:對照組10只、EAE模型組40只。全部實驗小鼠取右眼為實驗對象。
1.2.2 實驗性視神經(jīng)炎小鼠模型的建立及神經(jīng)功能評分 將 300 μg MOG35-55溶于 200 μl PBS液,再與200 μl CFA混合,添加結(jié)合桿菌使其終濃度為2 mg/ml,用電子攪拌棒冰浴下攪拌5~10 min達(dá)到充分乳化(判斷方法:將1滴乳劑滴入水中,如不散開漂在水面則為乳化完全;如立即散開,則未乳化充分)。以上操作盡量在避光、低溫、無菌條件下進(jìn)行。EAE模型組雙側(cè)腹壁分四點皮下注射混合乳劑,對照組直接將 200 μl PBS液和 200 μl CFA充分乳化后分雙側(cè)腹壁分4個點皮下注射。兩組均于免疫前24 h和免疫后24 h每只小鼠腹腔注射100 μl百日咳菌液(含活菌 2×109個)。 每天由觀察者記錄每只小鼠的體重并進(jìn)行神經(jīng)功能評分,直至免疫后的30 d。
神經(jīng)功能評分標(biāo)準(zhǔn):0分:無臨床癥狀;1分:尾部張力降低或輕度步態(tài)笨拙;2分:尾部無張力或中度步態(tài)異常,雙后肢無力,被動翻身后可以恢復(fù);3分:雙后肢癱瘓,被動翻身后不能恢復(fù),但給予刺激后可以挪動;4分:雙后肢癱瘓,前肢癱瘓或肌力減弱伴尿便失禁;5分:瀕死狀態(tài)或死亡。
1.2.3 光鏡下病理形態(tài)學(xué) 在免疫后第7、14、20、30天,對照組取2只小鼠、EAE模型組10只小鼠用4%多聚甲醛溶液經(jīng)心臟灌注,鈍性分類視神經(jīng),暴露視交叉,在視交叉處及球后0.5 mm處剪斷視神經(jīng)。對視神經(jīng)采用HE染色、LFB髓鞘染色和Bielschowsky軸突銀染,分別評估炎性細(xì)胞浸潤、髓鞘脫失和軸突的病理改變。
1.2.4 電鏡超微結(jié)構(gòu)的觀察 對照組和EAE模型組分別于免疫后第7、14、20、30天做完電生理檢查后,各隨機選取1只眼,1%戊苯巴比妥0.15 ml/只腹腔麻醉后,取出視神經(jīng),用于透射電鏡的觀察。
1.3 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS13.0統(tǒng)計軟件包進(jìn)行分析,實驗數(shù)據(jù)采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(x±s)表示。對數(shù)據(jù)進(jìn)行正態(tài)檢驗后,對各獨立樣本的均數(shù)進(jìn)行t檢驗。以P<0.05為有統(tǒng)計學(xué)差異。
2.1 MOG35-55免疫小鼠模型建立、體重變化和神經(jīng)功能評分 本實驗用C57BL/6小鼠,以MOG35-55多肽為抗原制備MS和ON的動物模型,該模型為慢性進(jìn)行型MS的模型。除在免疫后的第7天處死的10只小鼠外,其余EAE模型組30只小鼠全部發(fā)病,免疫后第2天起及隨后的1周時間內(nèi)小鼠體重輕度下降,此間沒有出現(xiàn)運動功能障礙,評分均為0分;實驗小鼠在免疫后的第10天陸續(xù)發(fā)病,平均發(fā)病時間為(14.1±1.48)d。第20天時,小鼠的平均臨床評分達(dá)到高峰。以后小鼠的臨床癥狀有輕微的降低,但是維持在一個較高的水平。患病小鼠表現(xiàn)為精神萎靡、體重下降、尾無力、松弛、下垂,后肢或四肢麻痹、大小便失禁,個別小鼠表現(xiàn)為共濟失調(diào)。對照組無一發(fā)病。
2.2 視神經(jīng)組織形態(tài)學(xué)的改變
2.2.1 光鏡觀察 EAE模型組用于研究發(fā)病率的20只小鼠(40眼)其中有23眼視神經(jīng) LFB染色示不同程度的脫髓鞘改變(雌性小鼠12眼,雄性小鼠11眼,兩組無明顯差異)。對照組小鼠視神經(jīng)縱切面HE染色可見神經(jīng)纖維排列整齊,染色均勻,無炎性細(xì)胞浸潤。LFB染色見髓鞘被染成均勻的藍(lán)色,排列致密整齊。視神經(jīng)橫切面Bielsehowsky軸突銀染顯示軸突被染成黑色,背景呈黃棕色。CON小鼠直至免疫后的第30天視神經(jīng)病理未發(fā)生明顯改變。EAE模型組在免疫后的第7天,小鼠視神經(jīng)HE染色和 Bielsehowsky軸突銀染與對照組對比均無明顯改變;LFB染色可見髓鞘排列紊亂,失去明顯條索結(jié)構(gòu),但無髓鞘脫失。在免疫后的第14天,視神經(jīng)縱切面 HE染色見中度炎性細(xì)胞浸潤。LFB染色示病灶處不規(guī)則片狀髓鞘脫失,髓鞘脫失嚴(yán)重,邊界欠清晰。Bielsehowsky軸突銀染可見視神經(jīng)軸突組織溶解,軸突疏松減少。在免疫后的第20天,EAE模型組視神經(jīng)HE染色和免疫后的第14天無明顯區(qū)別,LFB染色可見大范圍髓鞘脫失,邊界清晰。Bielsehowsky軸突銀染可見視神經(jīng)軸突結(jié)構(gòu)紊亂,疏松減少,空泡化明顯。在免疫后的第30天,視神經(jīng)HE染色炎性細(xì)胞數(shù)目相對減少,LFB染色可見脫失的再生薄層髓鞘,染色較淺。Bielsehowsky軸突銀染仍可見嚴(yán)重的軸突組織溶解減少,間質(zhì)空泡化。
2.2.2 視神經(jīng)超微結(jié)構(gòu)的改變 在透射電鏡下分別觀察對照組組、EAE模型組在免疫后的第7、14、20、30天各1只VEP改變眼的視神經(jīng)超微結(jié)構(gòu)。電鏡所見:對照組C57BL/6小鼠視神經(jīng)超微結(jié)構(gòu)(圖1A):正常視神經(jīng)纖維較細(xì),神經(jīng)軸索為排列整齊的板層髓鞘所包繞,髓鞘完整、密度均勻;軸索內(nèi)可見大量的微絲及呈長橢圓形的少量線粒體。免疫后的第7天大部分有髓纖維結(jié)構(gòu)正常,髓鞘呈板層狀排列,包裹中央的軸突,軸索完整,細(xì)胞器正常;少數(shù)髓鞘層狀結(jié)構(gòu)排列疏松或斷裂,與軸突間有間隙形成,線粒體輕度水腫(圖1B)。免疫后的第14天,髓鞘分層明顯,呈洋蔥皮樣改變,軸突軸膜與髓鞘間有間隙形成,可見不同程度的髓鞘板層狀分離、變薄、脫失。軸索水腫,電子密度低,個別軸索內(nèi)線粒體明顯腫脹,嵴短而少或溶解(圖1C)。免疫后的第20天,脫髓鞘的神經(jīng)纖維增多,軸突與髓鞘間間隙增大,軸索內(nèi)微絲溶解較明顯而呈空泡狀,微管消失(圖1D)。免疫后的第7天,軸突變性、水腫逐漸減輕,軸索周圍髓鞘脫失出現(xiàn)重建的薄層髓鞘,表明少突膠質(zhì)前體細(xì)胞遷移到脫髓鞘區(qū)進(jìn)行髓鞘重建(圖 1E)。
視神經(jīng)炎的動物模型主要包括中樞神經(jīng)系統(tǒng)(central nervous system,CNS)髓鞘抗原免疫誘導(dǎo)的EAE 模型[3]、病毒誘導(dǎo)的脫髓鞘模型[4,5]和抗體誘導(dǎo)的脫髓鞘模型[6]。由于EAE模型與人類特發(fā)性脫髓鞘性視神經(jīng)炎在病理、MRI和VEP方面有許多相似之處,常用來作為MS和ON的實驗?zāi)P汀.?dāng)前,國內(nèi)外主要通過髓鞘蛋白誘發(fā)建立EAE模型,即髓鞘少突膠質(zhì)細(xì)胞糖蛋白 (MOG)、髓鞘堿性蛋白(MBP)和髓鞘蛋白脂蛋白(PLP)。由于MOG存在于髓鞘膜和少突膠質(zhì)細(xì)胞的最外層,具有高度免疫原性,在視神經(jīng)髓鞘上的含量比CNS和脊髓都要多,且已經(jīng)發(fā)現(xiàn)唯有針對MOG的抗體能夠在體內(nèi)和體外造成脫髓鞘[7,8],許多證據(jù)證明MOG和抗MOG抗體在ON的發(fā)病過程中起重要作用。人工合成的MOG35-55多肽片段代表其免疫顯性區(qū)域[9],用于視神經(jīng)炎小鼠模型的建立,效果更明顯。此研究就是用MOG35-55多肽作為唯一的免疫原。
本實驗用MOG35-55誘發(fā)C57BL/6小鼠制備的EAE模型,具有慢性進(jìn)行性特點。EAE實驗組小鼠突出表現(xiàn)為活動性降低、進(jìn)食減少、體重減輕和皮毛不光滑。同時,小鼠出現(xiàn)了明顯的神經(jīng)系統(tǒng)體征:以尾無力下垂、雙后肢癱瘓多見,四肢癱瘓或單肢癱瘓的較少。在此基礎(chǔ)上,筆者進(jìn)行了病理分析:EAE組用于研究發(fā)病率的20只小鼠(40眼)其中有23眼視神經(jīng)LFB染色示不同程度的脫髓鞘改變,VEP檢查結(jié)果發(fā)生明顯改變時處死小鼠,取5個不同切面視神經(jīng)進(jìn)行LFB染色,筆者以此抗原建立的視神經(jīng)炎小鼠模型以眼計算發(fā)病率為57.5%(病理診斷)。一方面,Sbao等[9]應(yīng)用MOG多肽誘導(dǎo)C57BL/6小鼠的發(fā)病率為70%,比筆者建立的視神經(jīng)炎模型發(fā)病率略高,經(jīng)分析筆者認(rèn)為這主要與抗原的純度以及百日咳菌素的活性有關(guān),造成的發(fā)病率差異不會對實驗?zāi)P偷慕a(chǎn)生實質(zhì)影響。另一方面,Bettelli等[1]在MOG-TCR特異的轉(zhuǎn)基因小鼠成功建立單癥狀的視神經(jīng)炎模型,雖然無腦部和脊髓的脫髓鞘改變,比較方便研究視神經(jīng)炎,但費用昂貴,難于大范圍開展普及研究。而使用MOG35-55多肽誘導(dǎo)C57BL/6小鼠誘發(fā)的EAE模型,也是一類國際上公認(rèn)、較成熟的、較理想的EAE模型。國內(nèi)雖然早已用此模型用于研究MS,但尚無建立此模型用于視神經(jīng)炎的研究。目前國內(nèi)對視神經(jīng)的臨床研究報道越來越多,但病因機制的基礎(chǔ)研究較少。筆者建立的小鼠模型易復(fù)制,發(fā)病率高,經(jīng)濟適用,而且普及應(yīng)用的前景比較樂觀,便于對ON以及ON與MS的關(guān)系進(jìn)行系統(tǒng)深入的研究。這和筆者的研究初衷是一致的。
在實驗過程中,筆者發(fā)現(xiàn):在不同的時間點,視神經(jīng)脫髓鞘后的病理變化不盡相同,這主要與本文模型的病理改變呈現(xiàn)節(jié)段性和局灶性,以及各動物的發(fā)病情況各不相同有關(guān)。同時,在光鏡下,還發(fā)現(xiàn):在免疫后的第7天,LFB染色可見髓鞘排列紊亂,但無明顯脫髓鞘表現(xiàn),電鏡下觀察到髓鞘斷裂分層,與軸突分離,可見輕度的線粒體腫脹。這個問題,已有文獻(xiàn)給予過報道,即以MOG或MOG特異T細(xì)胞免疫C57BL/6小鼠的視神經(jīng)病變主要為炎癥反應(yīng)和髓鞘脫失[1],這與筆者這次小鼠模型的建立取得的研究結(jié)果是一致的。本實驗中觀察到EAE組小鼠視神經(jīng)呈現(xiàn)不同程度的髓鞘脫失和軸索的損害,很可能是視神經(jīng)炎視力下降的病理基礎(chǔ),需要進(jìn)行更深一步的研究。綜上所述,筆者這次視神經(jīng)炎小鼠模型,初步模擬了脫髓鞘性視神經(jīng)炎的發(fā)生和發(fā)展過程,各項指標(biāo)也基本符合建模標(biāo)準(zhǔn)和有關(guān)要求。
[1]Estelle Bettelli,Maria Pagany,Howard L,et al.Myelin oligodendrocyte glycoprotein-specific T Cell receptor transgenic mice develop spontaneous autoimmune optic neuritis[J].J Exp Med,2003,197(9):1073-1081.
[2]Raff MC.Glial cell diversification in the rat optic nerve[J].Science,1989,243(12):1450.
[3]Smith CH.Optic neuritis.In:Miller NR,N ewman NJ,Biousse V,et al.eds.Walsh and Hoyt Clinical Neuro-ophthalmology[M].6th eds.Baltimore:Lippincott William s&Wilkins,2005.293-326.
[4]Optic Neuritis Study Group.The 5-year risk of MS after optic neuritis.Exerience of the optic neuritis treatment trial[J].Neurology,1997,49(12):1404-1413.
[5]Beck RW,Trobe JD,Moke PS,et al.High-and low-risk profiles for the development of multiple sclerosis with in 10 years after optic neuritis:experience of the optic neuritis treatment trial[J].Arch Ophthalmol,2003,21(9):944-949.
[6]Foroozan R,Buono LM,Savino PJ,et al.Acute demyelinating optic neuritis[J].Curr Opin Ophthalmol,2002,13(4):375-380.
[7]Bhatti MT,Schm itt NJ,Beatty RL.Acute inflammatory demyelinating optic neuritis:current concepts in diagnosis andmanagement[J].Optometry,2005,76(5):526-535.
[8]Tsoi Veda L,Hill Kenneth E BS,Carlson Noel G,et al.Immunohistochemical evidence of inducible nitric oxide synthase and nitrotyrosine in a case of clinically isolated optic neuritis[J].Neuro-ophthalmology,2006,26(2):87-94.
[9]Sbao H,Huang ZG,Sun SL,et al.Myelin/oligodendrocyte glycoprotein-specific T-cells induce severe optic neuritis in the C57bl/6 mice[J].Invest Ophthalmol Vis Sci,2004,45(11):4060-4065.