王少磊,張倩,宋續(xù)軍,李雪,王麗喆,劉杰
(1.青島大學(xué)附屬醫(yī)院口腔修復(fù)科,山東 青島 266003;2.青島大學(xué)口腔醫(yī)學(xué)院口腔修復(fù)學(xué)教研室,山東 青島 266003)
種植義齒修復(fù)已成為治療牙齒缺失的主要方式。隨著種植義齒的廣泛應(yīng)用,患種植體周圍炎的患者逐年增多。種植體周圍炎是由牙齦卟啉單胞菌(Porphyromonas gingivalis,P.g)為代表的菌斑微生物引發(fā)的炎癥性疾病,牙齦組織充血水腫、牙槽嵴破壞吸收為其典型特點[1]。研究[2]表明,該病5~10年發(fā)病率約為10%~20%,若得不到及時有效的治療將會引發(fā)種植體松動脫落,導(dǎo)致種植失敗。因此,有必要對其發(fā)病機制進行深入研究,以期尋找治療的新方法。
CXCR2是重要的趨化因子受體,屬于G蛋白耦聯(lián)受體家族,在多種炎癥性疾病中發(fā)揮重要作用。研究[3]表明,CXCR2能通過與CXCL1、CXCL2、CXCL3、CXCL5、CXCL6、CXCL7等白細胞介素-8(interleukin-8,IL-8)家族趨化因子結(jié)合,將以中性粒細胞為代表的白細胞、淋巴細胞趨化至炎癥局部,發(fā)揮免疫炎癥調(diào)控作用。研究[4-7]發(fā)現(xiàn),CXCR2結(jié)合其配體IL-8、CXCL1、CXCL2能夠誘導(dǎo)破骨細胞生成,引發(fā)骨質(zhì)吸收。種植體周圍炎作為一種典型的炎癥性骨破壞性疾病,其組織病理特點為炎癥細胞浸潤、破骨細胞生成及骨質(zhì)吸收。鑒于CXCR2在炎癥及骨免疫中的重要作用,推測CXCR2在種植體周圍炎中可能扮演重要角色。因此,本研究利用SB225002抑制CXCR2,初步探討CXCR2在小鼠種植體周圍炎發(fā)病機制中的作用。
1.1.1 實驗動物:36只SPF級4周齡雄性C57BL/6J小鼠購自濟南朋悅動物中心,許可證號SCXK(魯)20190003,體質(zhì)量15~18 g。經(jīng)青島大學(xué)附屬醫(yī)院倫理委員會批準,飼養(yǎng)于青島大學(xué)附屬醫(yī)院中心實驗室動物實驗中心的無菌單元內(nèi),整個實驗過程中可隨意進食無菌水和軟質(zhì)飼料。
1.1.2P.g(ATCC 33277):培養(yǎng)于37 ℃厭氧環(huán)境中(5%H2、5%CO2、90%N2)。采用分光光度計測定菌落集成單位(colony forming unit,CFU),將對數(shù)生長期的細菌稀釋至1×109CFU后進行熱滅活[8],將5-0絲線放入菌液中浸泡30 min,用于后續(xù)實驗。
1.2.1 建立小鼠種植體周圍炎模型:小鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后,腹腔注射氯胺酮(100 mg/kg)和賽拉嗪(5 mg/kg)全身麻醉,拔除右側(cè)上頜第一磨牙,在腭根窩洞內(nèi)即刻植入種植體(定制于威高集團,尺寸為長1.7 mm,主直徑0.7 mm,冠方六邊形邊長0.9 mm,尖端直徑0.4 mm)[9]。愈合4周達骨結(jié)合后,將小鼠隨機分為對照組、模型組及治療組,每組12只。將浸有熱滅活P.g的5-0絲線結(jié)扎在模型組和治療組種植體頸部,對照組不做處理。
1.2.2 注射CXCR2抑制劑SB225002:絲線結(jié)扎后,治療組每天腹腔注射CXCR2抑制劑SB225002(美國Selleck公司)2 mg/kg,對照組及模型組腹腔注射等量生理鹽水。連續(xù)注射14 d后,觀察小鼠生存狀態(tài)及種植體狀況。
1.2.3 獲取標本:每組隨機選取6只小鼠處死,切取腭側(cè)牙齦進行RT-PCR分析,剩余上頜骨標本用于Micro-CT檢測。其余6只小鼠處死后切取上頜骨標本,旋出種植體,常規(guī)制作石蠟切片,用于組織化學(xué)分析。
1.3.1 形態(tài)學(xué)觀察:用顯微組織鑷對種植體進行叩診和松動度檢查。肉眼觀察牙齦的顏色、質(zhì)地及形態(tài),評估種植體周圍組織的炎癥變化。
1.3.2 Micro-CT分 析:使用μCT100(瑞士SCANCO Medical AG公司)掃描上頜骨標本。參數(shù)為工作電壓70 kVp,電流200 μA,分辨率10 μm,曝光時長500 ms,每視圖5幀。獲取數(shù)據(jù)后導(dǎo)入 Mimics Research 20.0 軟件進行三維重建和分析。為量化種植體周圍骨吸收情況,將種植體周圍直徑1.0 mm、高1.7 mm、軸線與種植體長軸重合的圓柱體體積定義為感興趣體積(volume of interest,VOI),計算VOI內(nèi)的骨體積分數(shù)(bone volume/total volume,BV/TV)。
圖5 組織學(xué)分析結(jié)果Fig.5 Histological analysis results
1.3.3 HE、TRAP及免疫熒光染色(immunofluorescence staining,IF):HE及TRAP染色方法參照文獻[9],染色完成后使用配有攝像機的顯微鏡(日本Olmpus公司)觀察采集圖像,通過Cellsens軟件進行分析。在400倍視野下觀察HE染色組織切片,于種植體腭側(cè)纖維結(jié)締組織中隨機選取4個50 μm×50 μm的方形區(qū)域,計算總炎癥細胞密度。對牙槽嵴頂?shù)钠乒羌毎嫈?shù),將TRAP染色組織切片中一邊與種植體長軸重合一邊位于種植體骨內(nèi)第一螺紋的正方形區(qū)域(0.5 mm×0.5 mm)定義為感興趣區(qū)域(region of interest,ROI),將該區(qū)域內(nèi)細胞核呈深藍色、細胞質(zhì)呈粉紅色的TRAP陽性細胞記為破骨細胞。IF中,采用Ly6G(中性粒細胞表面標志物)標記中性粒細胞[10]。石蠟切片脫蠟后,使用胃蛋白酶修復(fù)液進行抗原修復(fù),3%BSA封閉,加入兔抗鼠Ly6G抗體(1 ∶400稀釋,武漢Servicebio公司),4 ℃濕盒內(nèi)孵育12 h,加入熒光二抗,避光室溫孵育50 min,加入DAPI染液復(fù)染細胞,淬滅組織自發(fā)熒光后封片,于熒光顯微鏡下觀察并采集圖像。使用ImageJ軟件計算每張圖片Ly6G平均熒光強度,用于評估中性粒細胞浸潤情況。
1.3.4 RT-PCR分析:將牙齦組織在預(yù)冷的研缽中研磨成粉末狀,用TRIzol抽提總RNA,用PrimeScriptTMRT reagent Kit with gDNA Eraser試劑盒(日本TaKaRa公司)逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,用RT-PCR法檢測Cxcl1及細胞核因子-κB受體活化因子配體(receptor activator of nuclear factor-κB ligand,Rankl)mRNA表達情況。引物序列如下,Cxcl1,F(xiàn)5’-GGGCGCCTATCGCCAATG AG-3’,R5’-GGGAGCTTCAGGGTCAAGGC-3’;Rankl,F(xiàn)5’-ACGTGAGCTATGGAAGGGGGT-3’,R5’-GCAGGTCCCAGCGCAATGTA-3’;Gapdh,F(xiàn)5’-CGTGTTCCTACCCCCAATGT-3’,R5’-TGTCAT CATACTTGGCAGGTTTCT-3’。按照2-△△Ct法計算目的基因相對表達量。
采用SPSS 24.0軟件對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計學(xué)分析,計量資料用表示。采用獨立樣本t檢驗對2組間數(shù)據(jù)進行比較,P< 0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
種植體植入4周后,叩診檢查所有種植體呈清脆金屬音,用顯微組織鑷近中、遠中、頰側(cè)、舌側(cè)方向夾持時均無松動,周圍牙齦粉紅色,質(zhì)地堅韌,無腫脹充血,表明骨結(jié)合成功[11]。炎癥誘導(dǎo)2周,未出現(xiàn)小鼠死亡或種植體脫落。模型組及治療組種植體近中、遠中、頰側(cè)、舌側(cè)方向上均出現(xiàn)松動,牙齦深紅色,質(zhì)地松脆,腫脹充血。治療組牙齦腫脹程度較模型組輕,見圖1。
圖1 炎癥誘導(dǎo)2周時口內(nèi)情況Fig.1 Intraoral conditions after 2 weeks of inflammation induction
模型組及治療組小鼠種植體周圍出現(xiàn)凹形骨吸收,骨密度減低,骨高度下降,見圖2。與對照組相比,模型組的BV/TV顯著降低(P< 0.05),而治療組的BV/TV較模型組顯著升高(P< 0.05),見圖3。
圖2 Micro-CT二維及三維掃描結(jié)果Fig.2 Micro-CT 2D and 3D scan results
圖3 骨體積分數(shù)比較Fig.3 The comparison of bone volume fraction
HE染色及IF染色結(jié)果顯示,相較于對照組,模型組牙齦組織中的總炎癥細胞及中性粒細胞顯著增多,而治療組牙齦組織中的總炎癥細胞及中性粒細胞較模型組顯著減少(P< 0.05),見圖4、5A、5B。TRAP染色結(jié)果顯示,模型組ROI內(nèi)的破骨細胞數(shù)量顯著高于對照組,而抑制CXCR2的治療組ROI內(nèi)的破骨細胞數(shù)量較模型組顯著下降,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P< 0.05),見圖4、5C。
圖4 組織學(xué)染色結(jié)果Fig.4 Histological staining results
RT-PCR結(jié)果顯示,模型組小鼠牙齦組織中Cxcl1、RanklmRNA的相對表達水平較對照組明顯升高;治療組小鼠牙齦中Cxcl1、RanklmRNA的相對表達水平較模型組顯著下降,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P< 0.05),見圖6。
圖6 Cxcl1和Rankl mRNA表達RT-PCR檢測結(jié)果Fig.6 The mRNA expression of Cxcl1 and Rankl detected by RT-PCR
小鼠種植體周圍炎模型是研究種植體周圍炎病理機制的重要工具。本研究采用的即刻種植方式能有效減少對小鼠的創(chuàng)傷并縮短實驗周期,是一種科學(xué)、高效的小鼠種植體植入方法。種植體周圍炎被定義為發(fā)生在已完成骨結(jié)合的種植體周圍組織的炎癥。與人類不同,小鼠種植體植入后愈合4周便能達到理想的骨結(jié)合[11-12]。因此,本研究在愈合4周后對小鼠骨結(jié)合情況進行了確認,并引入了炎癥誘導(dǎo)因素。本研究在前期研究[9]建模方法的基礎(chǔ)上引入熱滅活P.g,比單純結(jié)扎絲線能更好地模擬細菌因素在種植體周圍炎發(fā)病機制中的作用。
種植體周圍炎與牙周炎相似,是一種由細菌引發(fā)、宿主免疫因素參與的感染性疾病[1]。研究[13-15]認為,趨化因子IL-8及其受體CXCR2與種植體周圍炎和牙周炎的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)。本研究中,種植體周圍炎小鼠牙齦中的Cxcl1(人IL-8小鼠同源物)mRNA表達升高,使用CXCR2抑制劑后表達下降,進一步證實了上述觀點。
IL-8與CXCR2結(jié)合后的主要效應(yīng)是募集活化中性粒細胞。中性粒細胞釋放的基質(zhì)金屬蛋白酶、活性氧、胞外誘捕網(wǎng)在殺傷病原微生物的同時也會降解周圍組織,加重組織破壞。通過趨化因子受體調(diào)控中性粒細胞是抗炎治療的重要方式[3]。ALAM等[16]在類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎及特異性皮炎的研究中發(fā)現(xiàn),用抗體阻斷CXCR2能夠抑制小鼠中性粒細胞募集,并減輕炎癥。STEELE等[17]認為基因敲除CXCR2或者使用藥物抑制CXCR2均能有效治療小鼠胰腺炎。ZHU等[18]發(fā)現(xiàn)抑制CXCR2后中性粒細胞釋放的髓過氧化物酶、腫瘤壞死因子-α、白細胞介素-1β等促炎癥介質(zhì)減少,而且CXCR2抑制劑SB225002能夠緩解小鼠潰瘍性結(jié)腸炎。本研究利用SB225002抑制種植體周圍炎小鼠的CXCR2,發(fā)現(xiàn)牙齦組織中總炎癥細胞及中性粒細胞顯著減少,牙齦炎癥減輕,與上述研究結(jié)果一致,證明了抑制CXCR2對種植體周圍牙齦炎癥的治療具有積極作用。
除牙齦軟組織的炎癥外,種植體周圍炎還伴隨活躍的牙槽嵴吸收過程。RANKL在該過程中發(fā)揮關(guān)鍵作用,通過與前破骨細胞上的細胞核因子-κB受體活化因子(receptor activator of nuclear factor-κB,RANK)結(jié)合,誘導(dǎo)破骨細胞分化成熟,進而促進骨質(zhì)吸收[19]。本研究阻斷CXCR2后,RanklmRNA表達量及破骨細胞數(shù)量顯著下降,可能與抑制CXCR2受體導(dǎo)致的中性粒細胞募集減少有關(guān)。中性粒細胞是RANKL的重要來源細胞,不僅可通過表達膜結(jié)合型RANKL直接誘導(dǎo)破骨細胞活化,還可通過分泌彈性蛋白酶對RANKL的競爭性配體骨保護素進行降解,間接促進破骨細胞的生成[20-21]。本研究中,抑制CXCR2受體后引發(fā)的RanklmRNA表達下降、破骨細胞減少還可能與IL-8的生物效能被阻斷有關(guān)。IL-8是一種多效細胞因子,通過與CXCR2結(jié)合,激活下游信號,不僅可以促進RANKL的表達,還可直接誘導(dǎo)破骨細胞生成。KOPESKY等[22]的體外研究證明,即使RANKL持續(xù)存在,向前破骨細胞中添加IL-8抗體或者CXCR2拮抗劑仍能有效抑制破骨細胞的分化。因此,本研究中阻斷CXCR2后出現(xiàn)的RanklmRNA表達下降、破骨細胞減少可能是中性粒細胞募集減少和IL-8功能受阻的綜合表現(xiàn)。
綜上所述,本研究發(fā)現(xiàn),抑制CXCR2能夠減少小鼠種植體周圍炎的中性粒細胞募集和破骨細胞生成,進而緩解小鼠種植體周圍炎,但其具體的病理機制尚需進一步研究。由于研究條件有限,本研究未對在小鼠種植體周圍炎中抑制CXCR2產(chǎn)生的作用進行時序觀察,有待今后進一步探究。